В предыдущей работе был описан стартовый механизм процессов нейроэндокринной регуляции размножения рыб в форме «миграционного импульса», где впервые в мировой литературе на основе эколого-гистофизиологического метода исследований был показан комплексный синхронный эффект участия гипоталамо-гипофизарной нейросекреторной системы (НС) в инициировании миграций рыб. Целью настоящего исследования явилось выяснение степени участия НС в процессе размножения ценных видов промысловых рыб (осетровых и лососевых) с различными биологическими особенностями нереста. Участие НС в осуществлении нерестового процесса было показано с применением гистоморфологических, иммуногистохимических и электронно-микроскопических методик с использованием количественной морфометрии. Активация процессов синтеза и выведения нонапептидных нейрогормонов в начале нерестового процесса и последующее снижение функциональной активности НС после его завершения выявлены у каждого вида рыб независимо от сезона нереста (весенние, осенние и зимние нерестующие: Acipenser, Oncorhynchus, Lota). Подобная реакция НС прослеживается и в экспериментах при стресс-воздействии гипертонической среды на взрослых рыб Acipenseridae. Двухфазная реакция нейросекреторной системы, соответствующая стадиям тревоги и стрессоустойчивости, рассматривается как отражение участия НС в обеспечении защитно-приспособительных реакций организма на физиологический стресс, возникающий в период размножения полициклических рыб. У моноциклических видов сразу после нереста происходит блокада выведения нонапептидных нейрогормонов из заднего нейрогипофиза, соответствующая запредельному торможению системы при стрессорном воздействии. В начале нереста рыб независимо от его сезона нейросекреторная система инициирует нерестовое поведение и завершает нерест участием в защитно-приспособительных реакциях организма на естественный физиологический стресс.

Представлены данные по скорости роста австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) в условия УЗВ «Лобстер Черноземья» в Воронежской области на двух видах кормов: рацион предприятия и рецептуры комбикорма «Новосибирск ШП». Опыт проводился в течение 29 дней. Для проведения работ было отобрано по шесть раков средней массой 30 г для оценки каждого вида корма. Особей разместили в двух аквариумах (100,5×26×40 см), подключенных к основной системе установки замкнутого водообеспечения (УЗВ). В оборотной системе температурный режим и количество растворенного в воде кислорода определялись инструментальными методами, фиксировались специализированными электронными датчиками, в аквариумах — термооксиметром («Самара-2»). Кормление на всем протяжении опыта проводилось 1 раз в день из расчета 1% от общей биомассы в аквариуме. Для раков первой контрольной группы использовался традиционный рацион, составленный на предприятии «Лобстер Черноземья». Раки второй опытной группы получали комбикорм рецептуры «Новосибирск ШП». В контрольной группе, содержащейся на основном рационе, абсолютный прирост составил 0,87 г/шт.; абсолютная скорость роста — 0,03 г/шт.; относительный прирост — 0,098%; относительная скорость роста — 0,098%; коэффициент массонакопления — 0,0031. Затраты корма составили 14,7 кг/кг прироста. Абсолютные и относительные, среднесуточные приросты и коэффициент массонакопления в опытной группе, получавшей комбикорм «Новосибирск ШП», выше: так, абсолютный прирост составил 2,35 г/шт.; абсолютная скорость роста — 0,81 г/шт.; относительный прирост — 0,256%; относительная скорость роста — 0,256%; коэффициент массонакопления — 0,0081. Затраты корма в этой группе составили 5,7 кг/кг.

Описаны случаи спонтанного возникновения новообразований семенников у четырех самцов карпа кои (Cyprinus carpio var. koi). Проведено макро- и микроскопическое исследование опухолей, а также прилегающих тканей (печени и селезенки). Размер новообразований варьировался от 8 до 12 см при весе 30–45 г. Выявлено два гистологических типа строения неоплазий. Первый тип характеризовался мультилобулярным строением с плотноклеточными и умеренноклеточными участками, выраженным плеоморфизмом клеток и наличием участков некроза. Второй тип отличался наличием параллельных тяжей плеоморфных клеток с крупными мультифокальными очагами некроза и толстой соединительнотканной капсулой. Средний размер ядер в первом типе опухоли был 6,9×5,9 мкм (длинна × ширина), во втором — 6,8×5,9. Дополнительно в ткани опухоли второго типа были выявлены скопления базофильных клеток с выраженной кариомегалией, формирующих мультифокальные очаги в виде изогнутых тяжей. Во всех рассмотренных случаях при микро- и макроскопическом исследовании признаков развития метастазов обнаружено не было. Исходя из полученных результатов исследуемые новообразования могут быть классифицированы как герминогенные опухоли с преобладанием семиномы (гонадобластома). Не удалось установить различия в гистогенезе или стадиях развития изученных опухолей. Обнаружены гистопатологические изменения в печени (вакуолизация гепатоцитов, фиброз) и селезенке (нарушение структуры пульпы, аденоматозные образования), вероятно, связанные с прогрессированием опухоли. Среди возможных этиологических факторов канцерогенеза были выделены: генетическая предрасположенность, условия содержания и применение гонадотропных препаратов.

В статье представлены результаты экспериментального выращивания стерляди, также проведена оценка эффективности введения в рацион осетровых рыб комплексного пробиотического препарата «Флорин форте», представляющего собой комплекс бифидобактерий и лактобактерий, сорбированных на активированном угле. В результате проведенных исследований было выявлено положительное воздействие препарата на рыбоводно-биологические показатели и физиологическое состояние выращиваемых рыб, наиболее благоприятной для роста и развития стерляди являлась дозировка препарата «Флорин форте» 6 г/кг комбикорма. Введение в рацион комплексного препарата в данной дозировке способствовало увеличению линейно-весовых показателей (абсолютный прирост составлял 28,44 г, среднесуточная скорость роста — 1,20%, коэффициент упитанности по Фультону — 0,31%, коэффициент массонакопления — 0,05), что на 9,4% выше значений, полученных в контрольной группе. Также применение комплексного пробиотического препарата «Флорин форте» оказывало положительное влияние на показатели крови осетровых рыб, выраженное в повышении уровня гемоглобина до 54,36 г/л, общего белка до 23,35 г/л, а также в снижении скорости оседания эритроцитов до 2,3 мм/ч, концентрации триглицеридов до 4,78 ммоль/л и холестерина до 1,08 ммоль/л. Применение пробиотического препарата «Флорин форте» в рационе осетровых рыб совместно со сбалансированными продукционными комбикормами способствовало улучшению качества получаемой продукции осетровых рыб благодаря комплексному воздействию как пробиотической части препарата, так и сорбента-носителя, которые могут не только улучшать функционирование кишечного тракта рыб, но и способствовать очищению организма от продуктов метаболизма, тяжелых металлов, радионуклидов и различных токсинов.

Представлены результаты совместного выращивания карасей, перловиц с томатами и болгарскими перцами на плавающей грядке, размещенной непосредственно в рыбоводной емкости, в искусственной экосистеме при эксплуатации установок с замкнутым водоиспользованием с целью выявления особенностей их совместного культивирования. На первом этапе в одной емкости объемом 20 л, оснащенной циркуляцией воды, содержали монокультуру перловиц (9 экз.), во второй такой же емкости находились девять перловиц и четыре сеголетка карася, в третьей — только четыре сеголетка карася. Во все три емкости вносили сухой гранулированный комбикорм из расчета 1,0–1,2% от массы живых организмов в сутки. При совместном содержании рыб и моллюсков комбикорм вносили в пересчете на ихтиомассу. На втором этапе использовали два 200-литровых аквариума с циркуляцией воды, где содержалось по 7 шт. карасей и размещались плавающие грядки, на которые высадили по пять кустов томатов и три куста болгарского перца. В опытный аквариум дополнительно подсаживали 20 перловиц. Отмечено, что масса тела рыб, содержавшихся совместно с перловицами, увеличилась на 69,7% от начальной массы, в то время как масса рыб в группе без моллюсков возросла только на 41,1%. Выживаемость перловиц в присутствии карасей достигала 100% против 56% в монокультуре моллюсков, что можно объяснить появлением экскрементов рыб и связанного с ними детрита — источника пищи для моллюсков. Одновременно затраты корма на прирост массы рыб сократились на 20%. Кроме того, в поликультуре получена дополнительная продукция биомассы перловиц в количестве 752 г, увеличив общую биопродукцию в 3,5 раза. Несмотря на многократное увеличение общей биомассы гидробионтов, растения на плавающих грядках обеспечивали поддержание допустимых гидрохимических параметров. Соотношение биомассы гидробионтов и биомассы растений в варианте с поликультурой составляло 5:1.

Основой для использования отолитов в качестве носителя меток является последовательное формирование регистрирующих структур, состоящих из нарастающих на их поверхности кальций-протеиновых слоев. Скорость формирования этих слоев зависит от физических и химических свойств среды, в которой происходит развитие организма, что позволяет активно влиять на структуру отолита при образовании метки. Существующие методы мечения отолитов условно можно разделить на две группы — химические и физические. Химические методы основаны на отложении в поверхностном слое отолита флуоресцирующих соединений — флуорохромов, к которым относятся формы тетрациклина и соединения ализарина. Их введение в организм с последующей трансформацией в виде слоистых отложений на отолите обеспечивается за счет временного погружения икры, личинок или молоди рыб в соответствующий раствор, при поступлении с пищей или при помощи инъекций. Регистрация химической метки осуществляется за счет флуоресценции помеченных слоев отолита при определенной длине волны. К физической группе методов относится термическое мечение. При этом метка формируется за счет направленного периодического изменения температурного режима развития. При идентификации метки анализируют уникальное чередование светлых и темных концентрических образований на шлифованном срезе отолита, соответствующих периодам воздействия на организм физических факторов среды при мечении. Перечисленные методы мечения апробированы на сиговых рыбах. Специфика сиговых рыб — сравнительно мелкие размеры отолитов в период эмбриогенеза и личиночного развития, что технически осложняет регистрацию меток, полученных физическими методами. Наиболее перспективным методом массового маркирования отолитов этой группы рыб является мечение при помощи флуорохромов, в частности соединений ализарина.