По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.3.053:597.553.2 DOI:10.33920/sel-09-2504-06

Перспективы массового мечения сиговых рыб с использованием регистрирующих структур отолитов (обзор)

Н.В. Смешливая Тюменский филиал ФГБНУ «ВНИРО» (Госрыбцентр), Россия, Тюмень, E-mail: n.smeshlivaya@gosrc.vniro.ru
С.М. Семенченко Тюменский филиал ФГБНУ «ВНИРО» (Госрыбцентр), Россия, Тюмень; Государственный аграрный университет Северного Зауралья, Россия, Тюмень

Основой для использования отолитов в качестве носителя меток является последовательное формирование регистрирующих структур, состоящих из нарастающих на их поверхности кальций-протеиновых слоев. Скорость формирования этих слоев зависит от физических и химических свойств среды, в которой происходит развитие организма, что позволяет активно влиять на структуру отолита при образовании метки. Существующие методы мечения отолитов условно можно разделить на две группы — химические и физические. Химические методы основаны на отложении в поверхностном слое отолита флуоресцирующих соединений — флуорохромов, к которым относятся формы тетрациклина и соединения ализарина. Их введение в организм с последующей трансформацией в виде слоистых отложений на отолите обеспечивается за счет временного погружения икры, личинок или молоди рыб в соответствующий раствор, при поступлении с пищей или при помощи инъекций. Регистрация химической метки осуществляется за счет флуоресценции помеченных слоев отолита при определенной длине волны. К физической группе методов относится термическое мечение. При этом метка формируется за счет направленного периодического изменения температурного режима развития. При идентификации метки анализируют уникальное чередование светлых и темных концентрических образований на шлифованном срезе отолита, соответствующих периодам воздействия на организм физических факторов среды при мечении. Перечисленные методы мечения апробированы на сиговых рыбах. Специфика сиговых рыб — сравнительно мелкие размеры отолитов в период эмбриогенеза и личиночного развития, что технически осложняет регистрацию меток, полученных физическими методами. Наиболее перспективным методом массового маркирования отолитов этой группы рыб является мечение при помощи флуорохромов, в частности соединений ализарина.

Литература:

1. Акинчева, Е.Г. Опыт мечения лососей на рыбоводных заводах посредством термического маркирования / Е.Г. Акинчева, А.Ю. Рогатных // Вопросы ихтиологии. — 1996. — Т. 36, № 5. — С. 693–698.

2. Зиничев, В.В. Теория и практика сохранения биоразнообразия при разведении тихоокеанских лососей / В.В. Зиничев, В.Н. Леман, Л.А. Животовский, Г.А. Ставенко // Тихоокеанские лососи: Состояние. Проблемы. Решения. — М.: ВНИРО, 2012. — 240 с.

3. Костюничев, В.В. Искусственное воспроизводство рыб на Северо-Западе России / В.В. Костюничев, В.А. Богданова, А.К. Шумилина, И. Н. Остроумова // Труды ВНИРО. — 2015. — Т. 153. — С. 26–41.

4. Литвиненко, А.И. Искусственное воспроизводство ценных видов рыб Урала и Сибири: состояние, проблемы и перспективы / А.И. Литвиненко, С.М. Семенченко, Я.А. Капустина // Труды ВНИРО. — 2015. — Т. 153. — С. 74–84.

5. Мякишев, М.С. К вопросу о мечении молоди тихоокеанских лососей и эффективности работы рыбоводных заводов / М.С. Мякишев, М.А. Иванова, О.В. Зеленников // Биология моря. — 2019. — Т. 45, № 5. — С. 342–348.

6. Смешливая, Н.В. Использование ализарина красного при мечении эмбрионов и личинок сиговых рыб / Н.В. Смешливая, С.М. Семенченко // Водные биологические ресурсы России: состояние, мониторинг, управление: сборник материалов II Всероссийской научной конференции, посвященной 90-летию КамчатНИРО (4–6 апреля 2022 г., Петропавловск-Камчатский). — Петропавловск-Камчатский: КамчатНИРО, 2022. — С. 240–246.

7. Смешливая, Н.В. Мечение молоди муксуна ализарином красным / Н.В. Смешливая, С.М. Семенченко // Лососевые рыбы: биология, воспроизводство, промысел: материалы всероссийской научно-практической конференции (г. Мурманск, 23–24 марта 2023 г.). — Мурманск: ПИНРО им. Н.М. Книповича, 2023. — С. 394–401.

8. Широбоков, И.И. Предварительные результаты мечения лососевых рыб тетрациклиновыми метками / И.И. Широбоков // VI Всесоюзная конференция по раннему онтогенезу рыб: тез. докл. — Мурманск, 1988. — Ч. 2. — С. 140–141.

9. Baer, J. Mass-marking of brown trout (Salmo trutta L.) larvae by alizarin: method and evaluation of stocking: Mass-marking of brown trout larvae by alizarin / J. Baer, R. Rosch // Journal of Applied Ichthyology. — 2008. — V. 24. — № 1. — P. 44–49. — DOI: 10.1111/j.1439-0426.2007.01038.x.

10. Baer, J. Quantification of alizarin red S uptake in coregonid eggs after mass‐marking / J. Baer, C. Becke, H.M. Bentele, F. Habedank, A. Brinker // Journal of Fish Biology. — 2021. — V. 98. — № 3. — P. 895–897. — DOI: 10.1111/jfb.14628.

11. Barker, J.M. Immersion Marking of Juvenile Midas Cichlids with Oxytetracycline / J.M. Barker, K.R. McKaye // North American Journal of Fisheries Management. — 2004. — V. 24. — № 1. — P. 262–269. — DOI: 10.1577/M02-144.

12. Beltran, R.R. Mass-marking of bone tissue of Coregonus lavaretus L. and its potential application to monitoring the spatio-temporal distribution of larvae, fry and juveniles of lacustrine fishes / R.R. Beltran, A. Champigneulle, G. Vincent // Hydrobiologia. — 1995. — № 300/301. — P. 399–407. — DOI: 10.1007/BF00024481.

13. Bevelander, G. Influence of tetracycline on calcification in normal and regenerating teleost scales / G. Bevelander, R.J. Goss // Nature (London). — 1962. — V. 193. — № 4820. — P. 1098–1099. — DOI: 10.1038/1931098b0.

14. Campana, S.E. Microstructure of fish otoliths / S.E. Campana, J.D. Neilson // Canadian Journal Fisheries and Aquatic Sciences. — 1985. — V. 42. — № 1. — P. 1014–1032. — DOI: 10.1139/f85-127.

15. Campana, S.E. Chemistry and composition of fish otoliths: pathways, mechanisms and applications / S.E. Campana // Marine Ecology Progress Series. — 1999. — V. 188. — P. 263–297. — DOI: 10.3354/meps188263.

16. Caraguel, J.M. Mass marking of stocked European glass eels (Anguilla anguilla) with alizarin red S / J.M. Caraguel, F. Charrier, V. Mazel, E. Feunteun // Ecology of Freshwater Fish. — 2015. — V. 24. — P. 435–442. — DOI: 10.1111/eff.12158.

17. Dabrowski, K. Tetracycline tagging in coregonid embryos and larvae / K. Dabrowski, K. Tsukamoto // Journal of Fish Biology. — 1986. — V. 29. — № 6. — P. 691–698. — DOI: 10.1111/j.1095-8649.1986.tb04985.x.

18. Eckmann, R. Alizarin marking of whitefish, Coregonus lavaretus otoliths during egg incubation / R. Eckmann // Fisheries Management and Ecology. — 2003. — V. 10. — № 4. — P. 233–239. — DOI: 10.1046/j.1365-2400.2003.00345.x.

19. Eckmann, R. Evaluating the effectiveness of stocking vendace (Coregonus albula (L.) eleutheroembryos by alizarin marking of otoliths / R. Eckmann, P. Czerkies, C. Helms, K. Kleibs // Advances in Limnology. — 1998. — V. 50. — P. 457–463.

20. Hettler, W.F. Marking Otoliths by immersion of marine fish larvae in tetracycline / W.F. Hettler // Transactions of the American Fisheries Society. — 1984. — V. 113. — № 3. — P. 370–373. — DOI: 10.1577/1548-8659(1984)113<370:MOBIOM>2.0.CO;2.

21. Hendricks, M.L. Multiple Marking of American Shad Otoliths with Tetracycline Antibiotics / M.L. Hendricks, T.R. Bender, V.A. Mudrak // North American Journal of Fisheries Management. — 1991. — V. 11 — № 2. — P. 212–219. — DOI: 10.1577/1548-8675(1991)011<0212: MMOASO>2.3.CO;2.

22. Jacobsen, J.A. Internal and External Tags / J.A. Jacobsen, L.P. Hansen // Stock Identification Methods: Elsevier. — 2005. — P. 415–433. — DOI: 10.1016/B978-0121543518/50021-6.

23. Lorson, R.D. Use of tetracycline to mark otoliths of American Shad fry / R.D. Lorson, V.A. Mudrak // North American Journal of Fisheries Management. — 1987. — V. 7. — № 3. — P. 453–455. — DOI: 10.1577/1548-8659(1987)7<453:UOTTMO>2.0.CO;2.

24. Lu, H. Marking Fish with Fluorochrome Dyes / H. Lu// Reviews in Fisheries Science & Aquaculture. — 2019. — V. 28. — № 1. — P. 117–135. — DOI: 10.1080/23308249.2019.1681358.

25. Munk, K.M. Thermal marking of otoliths: the RBr coding structure of thermal marks / K.M. Munk, H.J. Geiger // CWT & Otolith Processing Lab., Alaska Department of Fish and Game, Juneau, Alaska, US, 1998. — 19 p.

26. Nagiec, M. Marking of juvenile whitefish Coregonus lavaretus (L.) with tetracycline antibiotics / M. Nagiec // Acta Ichthyologica Et Piscatoria. — 1983. — V. 13. — № 2. — P. 47–57. — DOI: 10.3750/AIP1983.13.2.03.

27. Nagiec, M. Persistence of tetracycline mark in the otoliths of whitefish (Coregonus lavaretus) / M. Nagiec // Bulletin Sea Fish Institute. — 1992. — № 3. — P. 77–80.

28. Nagiȩć, M. Mass-marking of coregonid larvae and fry by tetracycline tagging of otoliths / M. Nagiȩć, K. Ḑabrowski, C. Nagieogoéá, E. Mu Rrawska // Aquaculture and Fisheries Management. — 1988. — V. 19. — P. 171–178. — DOI: 10.1111/j.1365-2109.1988.tb00420.x.

29. Poczyczyсski, P. Marking and return method for evaluating the effects of stocking larval vendace, Coregonus albula (L.), into Lake Wigry in 2000–2001 / P. Poczyczyсski, K. Kozіowski, J. Kozіowski, A. Martyniak // Archives of Polish Fisheries. — 2011. — V. 19. — № 4. — P. 259–265. — DOI: 10.2478/v10086-011-0032-5.

30. Ruhle, Ch. Tetracycline marking of coregonids at the time of egg fertilization / Ch. Ruhle, C. Winecki-Kuhn // Aquatic Sciences. — 1992. — V. 54. — № 2. — P. 165–175. — DOI: 10.1007/BF00880281.

31. Stanczak, K. Mass marking of Leuciscus idus larvae using Artemia salina as a vector of fluorescent dyes / K. Stanczak, S. Krejszeff, M. Debowska [et al.] // Journal of Fish Biology. — 2015. — V. 87. — № 3. — P. 799–804. — DOI: 10.1111/jfb.12753.

32. Tsukamoto, K. Otolith tagging of ayu embryo with fluorescent substances / K. Tsukamoto // Nippon Suisan Gakkaishi. — 1988. — V. 54. — № 8. — P. 1289–1295. — DOI: 10.2331/suisan.54.1289.

33. Volk, E.C. Inducement of unique otolith banding patterns as a practical means to massmark juvenile Pacific salmon / E.C. Volk, S.L. Schroder, K.L. Fresh // American Fisheries Society Symposium. — 1990. — V. 7. — P. 203–215.

34. Volk, E.C. Otolith thermal marking / E.C. Volk, S.L. Schroder, J.G. Grimm // Fisheries Research. — 1999. — V. 43. — № 1–3. — P. 205–219. — DOI: 10.1016/S01657836(99)00073-9.

35. Warren-Myers, F. Otolith mass marking techniques for aquaculture and restocking: benefits and limitations / F. Warren-Myers, T. Dempster, S.E. Swearer// Reviews on Fish Biology and Fisheries. — 2018. — V. 28. — № 3. — P. 485–501. — DOI: 10.1007/s11160-018-9515-4.

36. Weber, D.D. The Deposition of Tetracycline Drugs in Bones and Scales of Fish and its Possible Use for Marking / D.D. Weber, G.J. Ridgway // The Progressive Fish-Culturist. — 1962. — V. 24. — № 4. — P. 150–155. — DOI: 10.1577/1548-8659(1962)24[150:TDOTDI]2.0.CO;2.

37. Weber, D.D. Marking pacific salmon with tetracycline antibiotics / D.D. Weber, G.J. Ridgway // Journal of Fisheries Research Board of Canada. — 1967. — V. 24. — P. 849–865. — DOI: 10.1139/f67-072.

38. Wzicitek, B. Optimization of the method for thermal marking of coregonid fish otoliths / B. Wzicitek, P. Hliwa, J. Krol [et al.] // Advances in Limnology. — 2007. — V. 60. — P. 369–376.

39. Yamada, U. Vital staining of the hard tissues of carp Cyprinus carpio Linnie with tetracycline-HCL, calcein and alizarin red S / U. Yamada // Bulletin Seikai Regional Fisheries Research Laboratory. — 1971. — № 41. — P. 107–116.

1. Akincheva, E.G., Rogatnykh, A.Yu. Experience of tagging salmon in fish farms through thermal labelling. Journal of Ichthyology, 1996, vol. 36, no. 5, pp. 693–698 (in Russian).

2. Zinichev, V.V., Lehman, V.N., Zhivotovsky, L.A., Stavenko, G.A. Theory and practice of biodiversity conservation in pacific salmon farming. Pacific salmon: Status. Problems. Solutions. VNIRO, Moscow, 2012. 240 p. (in Russian).

3. Kostuynichev, V.V. Bogdanova, V.A., Shumilina, A.K., Ostroumova, I.N. Artificial reproduction of fishes in the Northwest of Russia. Trudy VNIRO, 2015, vol. 153, pp. 26–41 (in Russian).

4. Litvinenko, A.I., Semenchenko, S.M., Kapustina, Ya.A. Artificial reptoduction of the valuable fish species of Ural and Siberia: current status, problems and perspectives. Trudy VNIRO, 2015, vol. 153, pp. 74–84 (in Russian).

5. Myakishev, M.S., Ivanova, M.A., Zelennikov, O.V. Marking of salmon juveniles and the efficiency of fish farming. Russian Journal of Marine Biology, 2019, vol. 45, no. 5, pp. 363–369 (in Russian). DOI: 10.1134/S1063074019050080.

6. Smeshlivaya, N.V., Semenchenko, S.M. Marking of whitefish embryos and larvae with alizarin red. In: Aquatic biological resources of Russia: state, monitoring, management: Proceedings of the II All-Russian scientific conference dedicated to the 90th anniversary of the Kamchatka branch of the All-Russian Research Institute of Fisheries and Oceanography. KamchatNIRO, Petropavlovsk-Kamchatsky, 2022, pp. 240–246 (in Russian).

7. Smeshlivaya, N.V., Semenchenko, S.M. Labelling of juvenile muksun with alizarin red. In: Salmonoids: biology, reproduction, fisheries. Papers from the Russian national scientific conference. PINRO, Murmansk, 2023, pp. 394–401 (in Russian).

8. Shirobokov, I.I. Preliminary results of tetracycline tagging of salmonid fishes. In: VI AllUnion Conference on early fish ontogenesis: abstracts. Murmansk, 1988, ch. 2, pp. 140–141 (in Russian).

9. Baer, J., Rosch, R. Mass-marking of brown trout (Salmo trutta L.) larvae by alizarin: method and evaluation of stocking: Mass-marking of brown trout larvae by alizarin. Journal of Applied Ichthyology, 2008. vol. 24, no. 1, pp. 44–49. DOI: 10.1111/j.1439-0426.2007.01038.x.

10. Baer, J.C., Becke, H.M., Bentele, F., Habedank, A. Brinker Quantification of alizarin red S uptake in coregonid eggs after mass‐marking. Journal of Fish Biology, 2021, vol. 98, no. 3, pp. 895–897. DOI: h10.1111/jfb.14628.

11. Barker, J.M., McKaye, K.R. Immersion Marking of Juvenile Midas Cichlids with Oxytetracycline. North American Journal of Fisheries Management, 2004, vol. 24, no. 1, pp. 262–269. DOI: 10.1577/M02-144.

12. Beltran, R.R., Champigneulle, A., Vincent, G. Mass-marking of bone tissue of Coregonus lavaretus L. and its potential application to monitoring the spatio-temporal distribution of larvae, fry and juveniles of lacustrine fishes. Hydrobiologia, 1995, no. 300/301, pp. 399–407. DOI: 10.1007/BF00024481.

13. Bevelander, G., Goss, R.J. Influence of tetracycline on calcification in normal and regenerating teleost scales. Nature (London), 1962, vol. 193, no. 4820, pp. 1098–1099. DOI: 10.1038/1931098b0.

14. Campana, S.E. Chemistry and composition of fish otoliths: pathways, mechanisms and applications. Marine Ecology Progress Series, 1999, vol. 188, pp. 263–297. DOI: 10.3354/ meps188263.

15. Campana, S.E., Neilson, J.D. Microstructure of fish otoliths. Canadian Journal Fisheries and Aquatic Sciences, 1985, vol. 42, no. 1, pp. 1014–1032. DOI: 10.1139/f85-127.

16. Caraguel, J.M., Charrier, F., Mazel, V., Feunteun, E. Mass marking of stocked European glass eels (Anguilla anguilla) with alizarin red S. Ecology of Freshwater Fish, 2015, vol. 24, pp. 435–442. DOI: 10.1111/eff.12158.

17. Dabrowski, K., Tsukamoto, K. Tetracycline tagging in coregonid embryos and larvae. Journal of Fish Biology, 1986, vol. 29, no. 6, pp. 691–698. DOI: 10.1111/j.1095-8649.1986. tb04985.x.

18. Eckmann, R. Alizarin marking of whitefish, Coregonus lavaretus otoliths during egg incubation. Fisheries Management and Ecology, 2003, vol. 10, no. 4, pp. 233–239. DOI: 10.1046/j.1365-2400.2003.00345.x.

19. Eckmann, R., Czerkies, P., Helms, C., Kleibs, K. Evaluating the effectiveness of stocking vendace (Coregonus albula (L.) eleutheroembryos by alizarin marking of otoliths. Advances in Limnology, 1998, vol. 50, pp. 457–463.

20. Hettler, W.F. Marking Otoliths by immersion of marine fish larvae in tetracycline. Transactions of the American Fisheries Society, 1984, vol. 113, no. 3, pp. 370–373. DOI: 10.1577/1548-8659(1984)113<370:MOBIOM>2.0.CO;2.

21. Hendricks, M.L., Bender, T.R., Mudrak, V.A. Multiple Marking of American Shad Otoliths with Tetracycline Antibiotics. North American Journal of Fisheries Management, 1991, vol. 11, no. 2, pp. 212–219. DOI: 10.1577/1548-8675(1991)011<0212:MMOASO>2.3.CO;2.

22. Jacobsen, J.A., Hansen, L.P. Internal and External Tags. In: Stock Identification Methods. Elsevier, 2005, pp. 415–433. DOI: 10.1016/B978-012154351-8/50021-6.

23. Lorson, R.D., Mudrak, V.A. Use of tetracycline to mark otoliths of American Shad fry. North American Journal of Fisheries Management, 1987, vol. 7, no. 3, pp. 453–455. DOI: 10.1577/1548-8659(1987)7<453:UOTTMO>2.0.CO;2.

24. Lu, H. Marking Fish with Fluorochrome Dyes. Reviews in Fisheries Science & Aquaculture, 2019, vol. 28, no. 1, pp. 117–135. DOI: 10.1080/23308249.2019.1681358.

25. Munk, K.M., Geiger, H.J. Thermal marking of otoliths: the RBr coding structure of thermal marks. CWT & Otolith Processing Lab., Alaska Department of Fish and Game, Juneau, Alaska, US, 1998. 19 p.

26. Nagiec, M. Marking of juvenile whitefish Coregonus lavaretus (L.) with tetracycline antibiotics. Acta Ichthyologica Et Piscatoria, 1983, vol. 13, no. 2, pp. 47–57. DOI: 10.3750/ AIP1983.13.2.03.

27. Nagiec, M. Persistence of tetracycline mark in the otoliths of whitefish (Coregonus lavaretus). Bulletin Sea Fish Institute, 1992, no. 3, pp. 77–80.

28. Nagiec, M., Ḑabrowski, K., Nagieogoéá, C., Mu Rrawska, E. Mass-marking of coregonid larvae and fry by tetracycline tagging of otoliths. Aquaculture and Fisheries Management, 1988, vol. 19, pp. 171–178. DOI: 10.1111/j.1365-2109.1988.tb00420.x.

29. Poczyczyсski, P., Kozіowski, K., Kozіowski, J., Martyniak, A. Marking and return method for evaluating the effects of stocking larval vendace, Coregonus albula (L.), into Lake Wigry in 2000–2001. Archives of Polish Fisheries, 2011, vol. 19, no. 4, pp. 259–265. DOI: 10.2478/ v10086-011-0032-5.

30. Ruhle, Ch., Winecki-Kuhn, C. Tetracycline marking of coregonids at the time of egg fertilization. Aquatic Sciences, 1992, vol. 54, no. 2, pp. 165–175. DOI: 10.1007/BF00880281.

31. Stanczak, K., Krejszeff, S., Debowska, M., Mierzejewska, K., Wozniak, M., Hliwa, P. Mass marking of Leuciscus idus larvae using Artemia salina as a vector of fluorescent dyes. Journal of Fish Biology, 2015, vol. 87, no. 3, pp. 799–804. DOI: 10.1111/jfb.12753.

32. Tsukamoto, K. Otolith tagging of ayu embryo with fluorescent substances. Nippon Suisan Gakkaishi, 1988, vol. 54, no. 8, pp. 1289–1295. DOI: 10.2331/suisan.54.1289.

33. Volk, E.C., Schroder, S.L., Fresh, K.L. Inducement of unique otolith banding patterns as a practical means to mass-mark juvenile Pacific salmon. American Fisheries Society Symposium, 1990, vol. 7, pp. 203–215.

34. Volk, E.C., Schroder, S.L., Grimm, J.G. Otolith thermal marking. Fisheries Research, 1999, vol. 43, no. 1–3, pp. 205–219. DOI: 10.1016/S0165-7836(99)00073-9.

35. Warren-Myers, F., Dempster, T., Swearer, S.E. Otolith mass marking techniques for aquaculture and restocking: benefits and limitations. Reviews on Fish Biology and Fisheries, 2018, vol. 28, no. 3, pp. 485–501. DOI: 10.1007/s11160-018-9515-4.

36. Weber, D.D., Ridgway, G.J. The Deposition of Tetracycline Drugs in Bones and Scales of Fish and its Possible Use for Marking. The Progressive Fish-Culturist, 1962, vol. 24, no. 4, pp. 150–155. DOI: 10.1577/1548-8659(1962)24[150:TDOTDI]2.0.CO;2.

37. Weber, D.D., Ridgway, G.J. Marking pacific salmon with tetracycline antibiotics. Journal of Fisheries Research Board of Canada, 1967, vol. 24, pp. 849–865. DOI: 10.1139/f67-072.

38. Wzicitek, B., Hliwa, P., Krol, J., Stabinski, R., Kozlowski, J., Nagiec, M., Gomulka, P. Optimization of the method for thermal marking of coregonid fish otoliths. Advances in Limnology, 2007, vol. 60, pp. 369–376.

39. Yamada, U. Vital staining of the hard tissues of carp Cyprinus carpio Linnie with tetracycline-HCL, calcein and alizarin red S. Bulletin Seikai Regional Fisheries Research Laboratory, 1971, no. 41, pp. 107–116.

Сиговые рыбы (Coregonidae) относятся к наиболее важным объектам промысла и искусственного воспроизводства во внутренних водоемах России. Устойчивое снижение в текущий период промысловых запасов сиговых в основных бассейнах Сибири и северо-запада европейской части Российской Федерации обусловливает необходимость наращивания масштабов искусственного воспроизводства [3; 4]. Оценка эффективности рыбоводных мероприятий — неотъемлемый элемент комплексного подхода при реализации рационального рыбного хозяйства. Как показывает практика прежде всего дальневосточного лососеводства, наиболее корректные оценки результатов работы рыбоводных заводов позволяет дать массовое мечение выпускаемой молоди. В частности, тотальное мечение заводской молоди лососей позволяет оценить соотношение искусственного и естественного воспроизводства, а также определить вклад отдельных заводов в пополнение промысловых запасов популяций с последующей оптимизацией объемов выпуска и элементов биотехники [2]. Под мечением понимается процедура направленного формирования устойчивых отличительных признаков у отдельной особи или группы рыб. Индивидуальное мечение обеспечивается за счет введения полимерных красителей под кожу, чипирования, прикрепления навесных, магнитных, радиотелеметрических, кодированных проволочных меток [2; 22]. При массовом мечении группы рыб за счет физико-химического воздействия на организм добиваются появления меток на регистрирующих структурах отолитов, чешуи, позвонков и лучей плавников [2; 35]. Метки условно можно разделить на простые, только подтверждающие факт мечения, и сложные, позволяющие закодировать определенную информацию. Маркирование можно рассматривать как вариант индивидуального или массового мечения, при котором у рыб формируются сложные метки, уникальная структура которых может содержать информацию, например, о конкретном рыбоводном заводе, месте, дате выпуска и т.д. В частности, маркирование системно организовано при искусственном воспроизводстве дальневосточных лососей [1; 2], что может являться ориентиром при развитии сиговодства в естественных водоемах. Несмотря на многолетнюю историю и значительные объемы искусственного воспроизводства сиговых в России, работы по массовому мечению этой группы рыб практически не проводились. К особенностям сиговых рыб, методически осложняющим применение методов маркирования на ранних стадиях онтогенеза, можно отнести сравнительно малые размеры икринок, ранних личинок и, соответственно, отолитов, которые на порядок меньше, чем у лососей. Мелкие размеры отолитов в момент мечения и получаемых меток технически усложняют подготовительные манипуляции с ними и анализ регистрирующих структур. Отсутствие отработанных методов массового мечения сиговых рыб, пригодных для промышленного применения, является актуальной отраслевой проблемой, требующей решения.

Для Цитирования:
Н.В. Смешливая, С.М. Семенченко, Перспективы массового мечения сиговых рыб с использованием регистрирующих структур отолитов (обзор). Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2025;4.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: