По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 616.72-002.772

Цитруллинирование в патогенезе ревматоидного артрита — современный взгляд

Астахова Анна Дмитриевна аспирант кафедры терапии, кардиологии и функциональной диагностики с курсом нефрологии ФГБУ «УНМЦ»; E-mail: astakhovaad@gmail.com
Пожаров Иван Владимирович врач отделения нефрологии и ревматологии ЦКБ с поликлиникой УД РФ; E-mail: pojarov@yandex.ru
Мутовина Зинаида Юрьевна зав. отд. нефрологии и ревматологии ЦКБ с поликлиникой УД РФ, к.м.н., доцент кафедры терапии, кардиологии и функциональной диагностики с курсом нефрологии ФГБУ «УНМЦ»; E-mail: zmutovina@mail.ru

В работе представлен обзор литературы, посвященный современному взгляду на участие процессов цитруллинирования в патогенезе ревматоидного артрита. Приводится новая концепция патогенеза ревматоидного артрита с участием легочной ткани.

Литература:

1. Bongartz et al. 2007; Bongartz T., Cantaert T., Atkins S.R., Harle P., Myers J. L., Turesson C. et al. (2007) Citrullination in extra-articular manifestations of rheumatoid arthritis. Rheumatology (Oxford) 46 (1):70–75.

2. Chang et al. 2005; Chang X., Yamada R., Sawada T., Suzuki A., Kochi Y., Yamamoto K. (2005) The inhibition of antithrombin by peptidylarginine deiminase 4 may contribute to pathogenesis of rheumatoid arthritis. Rheumatology (Oxford) 44:293–298.

3. Chang et al. 2005a; Chang X., Yamada R., Suzuki A., Sawada T., Yoshino S., Tokuhiro S. et al. (2005a) Localization of peptidylarginine deiminase 4 (PADI4) and citrullinated protein in synovial tissue of rheumatoid arthritis. Rheumatology 44 (1):40–50.

4. Clavel et al. 2008; Clavel C., Nogueira L., Laurent L., Iobagiu C., Vincent C., Sebbag M. et al. (2008) Induction of macrophage secretion of tumor necrosis factor alpha through Fcgamma receptor IIa engagement by rheumatoid arthritis-specifi c autoantibodies to citrullinated proteins complexed with fi brinogen. Arthritis Rheum 58 (3):678–688.

5. Demoruelle and Deane 2011; Demoruelle M.K., Deane K. (2011). Antibodies to citrullinated protein antigens (ACPAs): clinical and pathophysiologic signifi cance. Curr Rheumatol Rep 13 (5):421–430, Research Support, N. I. H., Extramural Research Support, Non-U. S. Gov’t Review.

6. Ding et al. 2009; Ding B., Padyukov L., Lundstrom E., Seielstad M., Plenge R.M., Oksenberg J.R. et al. (2009). Different patterns of associations with anti-citrullinated protein antibody-positive and anti-citrullinated protein antibody-negative rheumatoid arthritis in the extended major histocompatibility complex region. Arthritis Rheum 60 (1):30–38.

7. Dissick et al. 2010; Dissick A., Redman R. S., Jones M., Rangan B.V., Reimold A., Griffi ths GR. et al. (2010). Association of periodontitis with rheumatoid arthritis: a pilot study. J Periodontol 81 (2):223–230, Multicenter Study.

8. Foulquier et al. 2007; Foulquier C. et al. (2007). Peptidyl arginine deiminase type 2 (PAD 2) and PAD 4 but not PAD 1, PAD 3, and PAD 6 are expressed in rheumatoid arthritis synovium in close association with tissue infl ammation. Arthritis Rheum 56 (11):3541–3553.

9. Gyorgy et al. 2006; Gyorgy B., Toth E., Tarcsa E., Falus A., Buzas E. I. (2006). Citrullination: a posttranslational modifi cation in health and disease. Int J Biochem Cell Biol 38 (10):1662–1677.

10. Harre et al. 2012; Harre U., Georgess D., Bang H., Bozec A., Axmann R., Ossipova E. et al. (2012). Induction of osteoclastogenesis and bone loss by human autoantibodies against citrullinated vimentin. J Clin Invest 122 (5):1791–1802.

11. Heliovaara et al. 1993; Heliovaara M., Aho K., Aromaa A., Knekt P., Reunanen A. (1993). Smoking and risk of rheumatoid arthritis. J Rheumatol 20 (11):1830–1835, Comparative Study.

12. Hill et al. 2003; Hill J.A., Southwood S., Sette A., Jevnikar A.M., Bell D.A., Cairns E. (2003a). Cutting edge: the conversion of arginine to citrulline allows for a high-affi nity peptide interaction with the rheumatoid arthritisassociated HLA-DRB1*0401 MHC class II molecule. J Immunol 171:538–541.

13. Holmqvist et al. 2009, 2010; Holmqvist M. E., Wedren S., Jacobsson L. T. H., Klareskog L., Nyberg F., RantapaaDahlqvist S. et al. (2009). No increased occurrence of ischemic heart disease prior to the onset of rheumatoid arthritis results from two Swedish population-based rheumatoid arthritis cohorts. Arthritis Rheum 60 (10):2861–2869.

14. Holmqvist M. E., Wedren S., Jacobsson L. T. H., Klareskog L., Nyberg F., Rantapaa-Dahlqvist S. et al. (2010). Rapid increase in myocardial infarction risk following diagnosis of rheumatoid arthritis amongst patients diagnosed between 1995 and 2006. J Intern Med 268 (6):578–585.

15. Huizinga et al. 2005; Huizinga T.W., Amos C. I., van der Helm-van Mil A.H., Chen W., van Gaalen F.A., Jawaheer D. et al. (2005). Refi ning the complex rheumatoid arthritis phenotype based on specifi city of the HLADRB1 shared epitope for antibodies to citrullinated proteins. Arthritis Rheum 52:3433–3438.

16. Johnsen et al. 2011; Johnsen A.K., Valdar W., Golden L., Ortiz-Lopez A., Hitzemann R., Flint J. et al. (2011). Genomewide and species-wide dissection of the genetics of arthritis severity in heterogeneous stock mice. Arthritis Rheum 63 (9):2630–2640.

17. Kallberg et al. 2007; Kallberg H., Padyukov L., Plenge R.M., Ronnelid J., Gregersen P.K., van der Helm-van Mil A.H. M.,

18. Kallberg et al. 2011; Kallberg H., Ding B., Padyukov L., Bengtsson C., Ronnelid J., Klareskog L. et al. (2011). Smoking is a major preventable risk factor for rheumatoid arthritis: estimations of risks after various exposures to cigarette smoke. Ann Rheum Dis 70 (3):508–511, Multicenter Study Research Support, N. I. H., Extramural Research Support, Non-U. S. Gov’t.

19. Karlson et al. 1999; Karlson E.W., Lee I.M., Cook N.R., Manson J. E., Buring J. E., Hennekens C.H. (1999). A retrospective cohort study of cigarette smoking and risk of rheumatoid arthritis in female health professionals. Arthritis Rheum 42 (5):910–917, Clinical Trial Randomized Controlled Trial Research Support, Non-U.S. Gov’t Research Support, U. S. Gov’t, P.H. S.

20. Klareskog et al. 2006; Klareskog L., Stolt P., Lundberg K., Kallberg H., Bengtsson C., Grunewald J. et al. (2006). A new model for an etiology of rheumatoid arthritis: smoking may trigger HLA-DR (shared epitope) — restricted immune reactions to autoantigens modifi ed by citrullination. Arthritis Rheum 54 (1):38–46.

21. Klareskog et al. 2009; Klareskog L., Catrina A. I., Paget S. (2009). Rheumatoid arthritis. Lancet 373 (9664):659–672.

22. Lopez-Longo et al. 2009; Lopez-Longo F.J., Oliver-Minarro D., de la Torre I., Gonzalez-Diaz de Rabago E., SanchezRamon S., Rodriguez-Mahou M. et al. (2009). Association between anti-cyclic citrullinated peptide antibodies and ischemic heart disease in patients with rheumatoid arthritis. Arthritis Rheum 61 (4):419–424, Research Support, Non-U. S. Gov’t.

23. Lu et al. 2010; Lu M.C., Lai N. S., Yu H.C., Huang H.B., Hsieh S.C., Yu C. L. (2010). Anti-citrullinated protein antibodies bind surface-expressed citrullinated Grp78 on monocyte/macrophages and stimulate tumor necrosis factor alpha production. Arthritis Rheum 62 (5):1213–1223, Research Support, Non-U. S. Gov’t.

24. Lundstrom et al. 2009; Lundstrom E., Kallberg H., Alfredsson L., Klareskog L., Padyukov L. (2009). Gene-environment interaction between the DRB1 shared epitope and smoking in the risk of anti-citrullinated protein antibodypositive rheumatoid arthritis. Arthritis Rheum 60 (6):1597–1603.

25. Makrygiannakis et al. 2008; Makrygiannakis D., Hermansson M., Ulfgren A. K., Nicholas A. P., Zendman A.J., Eklund A. et al. (2008). Smoking increases peptidylarginine deiminase 2 enzyme expression in human lungs and increases citrullination in BAL cells. Ann Rheum Dis 67 (10):1488–1492, Research Support, Non-U. S. Gov’t.

26. Mechin et al. 2005; Mechin M.C., Enji M., Nachat R., Chavanas S., Charveron M., Ishida-Yamamoto A. et al. (2005). The peptidylarginine deiminases expressed in human epidermis differ in their substrate specifi cities and subcellular locations. Cell Mol Life Sci 62 (17):1984–1995, Comparative Study Research Support, Non-U.S. Gov’t.

27. Nakayama-Hamada et al. 2005; Nakayama-Hamada M., Suzuki A., Kubota K., Takazawa T., Ohsaka M., Kawaida R. et al. (2005). Comparison of enzymatic properties between hPADI2 and hPADI4. Biochem Biophys Res Commun 327 (1):192–200.

28. Nicholas Anthony P., Bhattacharya Sanjoy K. (2014). Editors Protein Deimination in Human Health and Disease. Springer New York Heidelberg Dordrecht London. Doi: 10.1007/978-1-4614-8317-5.

29. Pedersen et al. 2006; Pedersen M., Jacobsen S., Klarlund M., Pedersen B.V., Wiik A., Wohlfahrt J. et al. (2006). Environmental risk factors differ between rheumatoid arthritis with and without auto-antibodies against cyclic citrullinated peptides. Arthritis Res Ther 8 (4):R 133.

30. Pedersen et al. 2007; Pedersen M., Jacobsen S., Garred P., Madsen H.O., Klarlund M., Svejgaard A. et al. (2007). Strong combined gene — environment effects in anti-cyclic citrullinated peptide-positive rheumatoid arthritis: a nationwide case — control study in Denmark. Arthritis Rheum 56 (5):1446–1453, Research Support, Non-U. S. Gov’t.

31. Rohrbach et al. 2012; Rohrbach A. S., Slade D.J., Thompson P.R., Mowen K.A. (2012). Activation of PAD4 in NET formation. Front Immunol 3:360. doi: 10.3389/fi mmu.2012.00360.

32. Ronnelid et al. 2005; Ronnelid J., Wick M.C., Lampa J., Lindblad S., Nordmark B., Klareskog L. et al. (2005). Longitudinal analysis of citrullinated protein/peptide antibodies (anti-CP) during 5 year follow up in early rheumatoid arthritis: anti-CP status predicts worse disease activity and greater radiological progression. Ann Rheum Dis 64 (12):1744–1749.

33. Schwab et al. 2002; Schwab B. L., Guerini D., Didszun C., Bano D., Ferrando-May E., Fava E. et al. (2002). Cleavage of plasma membrane calcium pumps by caspases: a link between apoptosis and necrosis. Cell Death Differ 9 (8):818–831, Research Support, Non-U. S. Gov’t.

34. Silman et al. 1996; Silman A.J., Newman J., MacGregor A. J. (1996). Cigarette smoking increases the risk of rheumatoid arthritis. Results from a nationwide study of disease-discordant twins. Arthritis Rheum 39 (5):732– 735.

35. Snir et al. 2009; Snir O., Widhe M., von Spee C., Lindberg J., Padyukov L., Lundberg K. et al. (2009). Multiple antibody reactivities to citrullinated antigens in sera from patients with rheumatoid arthritis: association with HLADRB1 alleles. Ann Rheum Dis 68 (5):736–743.

36. Stolt et al. 2003; Stolt P., Bengtsson C., Nordmark B., Lindblad S., Lundberg I., Klareskog L. et al. (2003). Quantifi cation of the infl uence of cigarette smoking on rheumatoid arthritis: results from a population based case — control study, using incident cases. Ann Rheum Dis 62 (9):835–841.

37. Suzuki et al. 2007; Suzuki A., Yamada R., Yamamoto K. (2007). Citrullination by peptidylarginine deiminase in rheumatoid arthritis. Ann N Y Acad Sci 1108:323–339.

38. Syversen et al. 2010; Syversen S.W., Goll G. L., van der Heijde D., Landewe R., Lie B.A., Odegard S. et al. (2010). Prediction

39. Takahara et al. 1986; Takahara H., Okamoto H., Sugawara K. (1986). Calcium-dependent properties of peptidylarginine deiminase from rabbit skeletal muscle. Agric Biol Chem 50:2899–2904.

40. Tarcsa et al. 1996; Tarcsa E., Marekov L.N., Mei G., Melino G., Lee S.C., Steinert P.M. (1996). Protein unfolding by peptidylarginine deiminase. Substrate specifi city and structural relationships of the natural substrates trichohyalin and fi laggrin. J Biol Chem 271:30709–30716.

41. Toes REM et al. (2007). Gene-gene and gene-environment interactions involving HLA-DRB1, PTPN22, and smoking in two subsets of rheumatoid arthritis. Am J Hum Genet 80 (5):867–875. doi: 10.1086/516736.

42. Van de Sande et al. 2011; van de Sande M.G., de Hair M.J., van der Leij C., Klarenbeek P. L., Bos W.H., Smith M.D. et al. (2011) Different stages of rheumatoid arthritis: features of the synovium in the preclinical phase. Ann Rheum Dis 70 (5):772–777, Research Support, Non-U. S. Gov’t.

43. Van der Helm-van Mil et al. 2005; van der Helm-van Mil A.H., Verpoort K.N., Breedveld F.C., Toes R. E., Huizinga T.W. (2005). Antibodies to citrullinated proteins and differences in clinical progression of rheumatoid arthritis. Arthritis Res Ther 7 (5):R949 — R958, Comparative Study.

44. Van Venrooij and Pruijn 2000; van Venrooij W.J., Pruijn G.J. (2000). Citrullination: a small change for a protein with great consequences for rheumatoid arthritis. Arthritis Res 2 (4):249–251.

45. Vessey et al. 1987; Vessey M.P., Villard-Mackintosh L., Yeates D. (1987). Oral contraceptives, cigarette smoking and other factors in relation to arthritis. Contraception 35 (5):457–464, Research Support, Non-U. S. Gov’t.

46. Vossenaar et al. 2003; Vossenaar E.R., Zendman A.J. W., van Venrooij W.J., Pruijn G.J. M. (2003). PAD, a growing family of citrullinating enzymes: genes, features and involvement in disease. Bioessays 25 (11): 1106–1118. doi: 10.1002/bies.10357.

ВВЕДЕНИЕ

Цитруллинирование — посттрансляционная модификация белка, в ходе которой происходит преобразование аргинина в цитруллин. Это ферментативная реакция, катализируемая пептидиларгинин дезаминазами (ПАД), протекает внеклеточно либо в везикулах внутри клетки. При модификации каждого остатка аргинина происходит уменьшение веса молекулы на 1 Да. В результате этой реакции происходит изменение заряда белков и их изоэлектрических точек, что отражается на возможности белков формировать ионные и водородные связи [9, 44, 40].

В настоящее время выявлено пять типов ПАД ферментов. ПАД-2 экспрессируется повсеместно, в то время как остальные ферменты ткань-специфичны. ПАД-1 экспрессируется в коже и матке, ПАД-3 — в волосяных фолликулах, ПАД-4 экспрессируется нейтрофилами и эозинофилами, ПАД-6 — тканями яйца, яичников, эмбриона [46] Синовиальная мембрана экспрессирует только ПАД-2 и ПАД-4 ферменты [27, 3].

ВКЛАД АЦЦП В ПАТОГЕНЕЗ РЕВМАТОИДНОГО АРТРИТА (РА)

Плазма и образцы синовиальной жидкости у пациентов с РА содержат высокие уровни цитруллинированных белков. Предполагается, что у пациентов с РА нарушена толерантность к цитруллинированным эпитопам [37].

Выявление цитруллинированных белков в пораженных тканях пациентов с РА, воспалительными заболеваниями кишечника, полимиозитом, в отличие от здоровой контрольной группы, выступает в пользу существования связи дезамини рования с воспалением [25]. ПАД-2 и ПАД4 являются единственными изоформами, выявленными в гематопоэтических клетках и синовиальной оболочке при РА [8]. Большинство ПАД-2 и ПАД-4 экспрессирующих клеток в синовиальной оболочке позитивны по CD68, характерный маркер макрофагов, нейтрофилов, тучных клеток [8, 2].

Предполагается, что ПАД-ферменты участвуют в РА не только в образовании аутоантигенов, но и в эффекторных механизмах заболевания — вербовке иммунных клеток и деструкции суставов. Недавно было показано участие АЦЦП, особенно реактивного в отношении виментина, в стимуляции остеокластогенеза и резорбтивной активности кости, что говорит о том, что АЦЦП непосредственно вносят вклад в патогенез РА [10].

КЛИНИЧЕСКИЕ АССОЦИАЦИИ АЦЦП И РА

Появление АЦЦП может происходить за годы до развития первых клинических проявлений РА. В большинстве случаев перед развитием дебюта РА происходит существенное повышение концентрации АЦЦП в сыворотке [28].

Наличие АЦЦП ассоциировано с более высокой клинической активностью РА [28], более выраженной деструкцией суставов [23]. Выявление АЦЦП к моменту установления диагноза РА свидетельствует о более агрессивном течении болезни и более высокой частоте развития внесуставных проявлений РА [28].

Сохранение выработки IgM АЦЦП у пациентов с РА можно интерпретировать как продолжающуюся активацию В-лимфоцитов в ходе течения заболевания. АЦЦП преимущественно синтезируются в воспаленном суставе, как в основной мишени заболевания [28].

ГЕНЕТИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ И ФАКТОРЫ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ

Эпидемиологические исследования выделили курение как один из наиболее важных факторов риска развития РА более 20 лет назад [11, 34, 19, 36, 45]. В более поздних исследованиях выявлена связь курения только с отдельной группой пациентов с серопозитивным на тот момент по ревматоидному фактору РА [36], а затем с АЦЦП-позитивным вариантом РА [20, 29, 18]. Дальнейшие гистологические исследования легких здоровых людей показали, что у курильщиков уровни цитруллинирования и экспрессии ПАД-ферментов выше, чем у некурящих людей [20, 1, 25]. Интересно, что курение продолжает оставаться фактором риска даже после 10–19 лет прекращения до дебюта заболевания.

На основании этих данных можно предположить, что патологическое цитруллинирование вне суставов может являться инициирующим событием, запускающим патогенный аутоиммунный процесс, приводящий к артриту. Однако одного индуцированного курением цитруллинирования в легких недостаточно для объяснения всех случаев АЦЦП-позитивного РА, так как у некурящих людей этот тип болезни также развивается.

ЛЕГКИЕ

С помощью масс-спектрометрии выявлены цитруллинированные пептиды, общие для легких и суставов у пациентов с РА, которые являются таргетными для иммунной системы пациентов при РА [28]. Также имеются данные о наличии субклинического воспаления легочной ткани с локальным образованием АЦЦП в легких у пациентов с РА на момент дебюта заболевания [28]. Предполагается, что факторы окружающей среды (курение, бактериальные инфекции) индуцируют внесуставное цитруллинирование у человека, являющегося носителем определенной аллели HLA типа II с последующим распространением антител, их циркулированием в периферической крови, не вызывающее патологических изменений. В этом случае необходим «второй удар» (что им может являться, на данный момент не выяснено), индуцирующий локальные изменения в суставе, что приводит к цитруллинированию в синовиальной ткани, непосредственно перед клиническим дебютом заболевания. Преодоление критического порога цитруллинирования и накопления специфических иммуно-доминантных белков ведет к локализации АЦЦП в суставе и инициации синовиального хронического воспаления.

ГИПОТЕТИЧЕСКАЯ МОДЕЛЬ ПАТОГЕНЕЗА РА

Резюмируя накопленные к настоящему времени данные, теоретическую модель патогенеза ревматоидного артрита можно представить в виде 3 последовательных стадий:

Стадия 1. Курение и другие триггеры приводят к увеличению экспрессии ПАД-2 в альвеолах легких, нарастанию апоптоза клеток бронхо-альвеолярного лаважа, что, вероятно, происходит вследствие нарастания концентрации кальция. Это приводит к дальнейшей активации ПАД-2 с последующим цитруллинированием белков. При наличии генетической предрасположенности вышеуказанный процесс ведет к увеличению антиген-презентирования [12] и активации аутореактивных Т-лимфоцитов с последующей их миграцией в региональные лимфоузлы, стимулированием В-лимфоцитов и выработке АЦЦП. Таким образом, инициация продукции АЦЦП происходит вне синовиальной оболочки.

Стадия 2. Происходит непосредственно в суставе и требует дополнительного неспецифического события, такого как инфекция, травма, избыточная физическая нагрузка, приводящего к развитию клинического или субклинического воспаления в суставе, выбросу воспалительных клеток, активации ПАД- ферментов, в результате чего происходит цитруллинирование белков синовиальной оболочки. Цитруллинирование специфичными для РА аутоантигенами стимулирует переход АЦЦП из кровотока непосредственно в сустав с формированием иммунных комплексов [28].

Стадия 3. Иммунные комплексы, содержащие АЦЦП, связываются с Fcрецепторами или коплементом, что приводит к высвобождению провоспалительных цитокинов [4], а также дальнейшей стимуляции антиген-презентирующих клеток. Антиген-презентирующие клетки, в свою очередь, приводят к дальнейшей стимуляции Т- и В-лимфоцитов и перемещению основного места продукции АЦЦП из микроциркуляторного русла в сустав.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Порочный круг с продолжающейся продукцией АЦЦП, провоспалительных цитокинов, привлечением воспалительных клеток в сустав и дальнейшей активизацией ПАД с продолжающимся цитруллинированием белков приводит к хронизации и дальнейшему поддержанию системного воспаления при РА.

Таким образом, помимо использования АЦЦП в диагностических целях, клинические и экспериментальные данные свидетельствуют о непосредственном участии данных аутоантител в патогенезе РА.

Язык статьи:
Действия с выбранными: