По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 615.281.8 DOI:10.33920/med-08-2201-07

Создание модели изучения противовирусного действия малых интерферирующих РНК in vitro

Пашков Евгений Алексеевич аспирант кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии, ФГАОУ ВО «ПМГМУ имени И.М. Сеченова» (Сеченовский Университет) (119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2), младший научный сотрудник лаборатории молекулярной иммунологии, ФГБНУ «НИИВС имени И.И. Мечникова» (105064, г. Москва, Малый Казенный пер., д. 5А), Е-mail: pashckov.j@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0002-5682-4581
Корчевая Екатерина Романовна младший научный сотрудник лаборатории молекулярной вирусологии, ФГБНУ «НИИВС имени И.И. Мечникова», 105064, г. Москва, Малый Казенный пер., д. 5А, Е-mail: c.korchevaya@gmail.com, https://orcid.org/0000-0002-6417-3301
Файзулоев Евгений Бахтиерович канд. биол. наук, заведующий лабораторией молекулярной вирусологии, ФГБНУ «НИИВС имени И.И. Мечникова», 105064, г. Москва, Малый Казенный пер., д. 5А, Е-mail: faizuloev@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-7385-5083
Пашков Евгений Петрович д-р мед. наук, профессор кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии, ФГАОУ ВО «ПМГМУ имени И.М. Сеченова» (Сеченовский Университет), 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2, Е-mail: 9153183256@mail.ru, https://orcid.org/ 0000-0002-2581-273X
Зайцева Татьяна Александровна канд. мед. наук, старший преподаватель кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии, ФГАОУ ВО «ПМГМУ имени И.М. Сеченова» (Сеченовский Университет), 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2, Е-mail: zat25@yandex.ru, https://orcid.org/ 0000-0001-9205-322X
Ртищев Артем Андреевич младший научный сотрудник лаборатории РНК-содержащих вирусов, ФГБНУ «НИИВС имени И.И. Мечникова», 105064, г. Москва, Малый Казенный пер., д. 5А, Е-mail: rtishchevartyom@gmail.com, https://orcid.org/ 0000-0002-4212-5093
Поддубиков Александр Владимирович канд. биол. наук, заведующий лабораторией микробиологии условно-патогенных бактерий, ФГБНУ «НИИВС имени И.И. Мечникова», 105064, г. Москва, Малый Казенный пер., д. 5А, Е-mail: poddubikov@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0001-8962-4765
Свитич Оксана Анатольевна чл.-корр. РАН, д-р мед. наук, директор ФГБНУ «НИИВС имени И.И. Мечникова», заведующий лабораторией молекулярной иммунологии ФГБНУ «НИИВС имени И.И. Мечникова» (105064, г. Москва, Россия), профессор кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии, ФГАОУ ВО «ПМГМУ имени И.М. Сеченова» (Сеченовский Университет) (119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2), Е-mail: svitichoa@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0003-1757-8389
Зверев Виталий Васильевич академик РАН, д-р биол. наук, научный руководитель, ФГБНУ «НИИВС имени И.И. Мечникова» (105064, г. Москва, Россия), профессор, заведующий кафедрой микробиологии, вирусологии и иммунологии ФГАОУ ВО «ПМГМУ имени И.М. Сеченова» (Сеченовский Университет) (119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2), Е-mail: vitalyzverev@outlook.com, https://orcid.org/0000-0002-0017-1892

Грипп — широко распространенная респираторная инфекция, сопровождающаяся поражением нижних отделов дыхательных путей человека и способная повлечь за собой тяжелые осложнения вплоть до летального исхода. Существующие на сегодняшний день терапевтические средства и вакцины не обеспечивают полностью эффективной защиты от вирусов гриппа. Разработка и создание препаратов, основанных на механизме РНК-интерференции в контексте данной проблемы, является многообещающим направлением. Целью настоящего исследования является выбор и экспериментальное обоснование клеточных генов-мишеней для миРНК, нокдаун которых подавляет вирусную репродукцию. Клетки А549 (аденокарцинома легкого человека) трансфицировались малыми интерферирующими РНК. Через 4 часа трансфицированные клетки заражались вирусом гриппа при MOI = 0,1; 0,01 и 0,001. Вируссодержащую жидкость отбирали в течение трех дней с момента трансфекции и производили оценку интенсивности динамики вирусной репродукции методом титрования по ЦПД. Применение всех малых интерферирующих РНК при MOI = 0,1 приводило к достоверно значимому снижению вирусного титра относительно неспецифического контроля. Аналогичные результаты были получены при MOI = 0,01 и 0,001. Наиболее эффективной миРНК является siNup98, поскольку при ее использовании при MOI = 0,1 значения вирусного титра максимально снижались на 1,7 lg ТЦД50/мл и на 3 lg ТЦД50/мл при MOI = 0,01 на 3-и сутки. Полученные результаты показали, что миРНК, направленные к клеточным генам человека FLT4, Nup98 и Nup205, чьи производные играют важную роль в жизненном цикле вируса гриппа, эффективно снижают его репродукцию in vitro. Таким образом, исследованные гены и их продукты являются потенциальными мишенями для разработки противогриппозных препаратов.

Литература:

1. Hussain M., Galvin H.D., Haw T.Y., Nutsford A.N., Husain M. Drug resistance in influenza A virus: the epidemiology and management. Infect Drug Resist. 2017 Apr 20; (10): 121–134. DOI: 10.2147/IDR.S105473.

2. ICTV (2020). Available at: https: //talk.ictvonline.org/taxonomy/vonline.org (release 2020).

3. Taubenberger J.K., Kash J.C. Influenza virus evolution, host adaptation, and pandemic formation. Cell Host Microbe. 2010 Jun 25; 7 (6): 440–1. DOI: 10.1016/j.chom.2010.05.009.

4. Rezkalla S.H., Kloner R.A. Viral myocarditis: 1917–2020: From the Influenza A to the COVID-19 pandemics. Trends Cardiovasc Med. 2021 Apr; 31 (3): 163–169. DOI: 10.1016/j.tcm.2020.12.007.

5. Nguyen J.L., Yang W., Ito K., Matte T.D., Shaman J, Kinney PL. Seasonal Influenza Infections and Cardiovascular Disease Mortality. JAMA Cardiol. 2016 Jun 1; 1 (3): 274–81. DOI: 10.1001/jamacardio.2016.0433.

6. Ekstrand J.J. Neurologic complications of influenza. Semin Pediatr Neurol. 2012 Sep; 19 (3): 96–100. DOI: 10.1016/j.spen.2012.02.004.

7. Edet A., Ku K., Guzman I., Dargham H.A. Acute Influenza Encephalitis/Encephalopathy Associated with Influenza A in an Incompetent Adult. Case Rep Crit Care. 2020 Dec 22; 2020: 6616805. DOI: 10.1155/2020/6616805.

8. Err H., Wiwanitkit V. Emerging H6N1 influenza infection: renal problem to be studied. RenFail. 2014 May; 36 (4): 662. DOI: 10.3109/0886022X.2014.883934.

9. Ленева И.А., Егоров А.Ю., Фалынскова И.Н., Махмудова Н.Р., Карташова Н.П., Глубокова Е.А., Вартанова Н.О., Поддубиков А.В. Индукция вторичной бактериальной пневмонии у мышей при заражении пандемическим и лабораторным штаммами вируса гриппа H1N1 // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2019; 1.

10. Metersky M.L., Masterton R.G., Lode H., File T.M. Jr, Babinchak T. Epidemiology, microbiology, and treatment considerations for bacterial pneumonia complicating influenza. Int J Infect Dis. 2012 May; 16 (5): e321–31. DOI: 10.1016/j.ijid.2012.01.003.

11. Vanderbeke L., Spriet I., Breynaert C., Rijnders B.J. A., Verweij P.E., Wauters J. Invasive pulmonary aspergillosis complicating severe influenza: epidemiology, diagnosis and treatment. Curr Opin Infect Dis. 2018 Dec; 31 (6): 471–480. DOI: 10.1097/QCO.0000000000000504.

12. Wang J., Wu Y., Ma C., Fiorin G., Wang J., Pinto L.H., Lamb R.A., Klein M.L., Degrado W.F. Structure and inhibition of the drug-resistant S31N mutant of the M2 ion channel of influenza A virus. Proc Natl Acad Sci U S A. 2013 Jan 22; 110 (4): 1315–20. DOI: 10.1073/pnas.1216526110.

13. Leneva I.A., Russell R.J., Boriskin Y.S., Hay A.J. Characteristics of arbidol-resistant mutants of influenza virus: implications for the mechanism of anti-influenza action of arbidol. Antiviral Res. 2009 Feb; 81 (2): 132–40. DOI: 10.1016/j.antiviral.2008.10.009.

14. Hurt A.C., Ernest J., Deng Y.M., Iannello P., Besselaar T.G., Birch C., Buchy P., Chittaganpitch M., Chiu S.C., Dwyer D., Guigon A., Harrower B., Kei I.P., Kok T., Lin C., McPhie K, Mohd A, Olveda R, Panayotou T, Rawlinson W, Scott L, Smith D, D’Souza H, Komadina N., Shaw R., Kelso A., Barr I.G. Emergence and spread of oseltamivir-resistant A (H1N1) influenza viruses in Oceania, South East Asia and South Africa. Antiviral Res. 2009 Jul; 83 (1): 90–3. DOI: 10.1016/j.antiviral.2009.03.003.

15. Hurt A.C. The epidemiology and spread of drug resistant human influenza viruses. Curr Opin Virol. 2014 Oct; 8: 22–9. DOI: 10.1016/j. coviro.2014.04.009.

16. Lampejo T. Influenza and antiviral resistance: an overview. Eur J ClinMicrobiol Infect Dis. 2020 Jul; 39 (7): 1201–1208. DOI: 10.1007/ s10096-020-03840-9.

17. Fire A.Z. Gene silencing by double-stranded RNA (Nobel Lecture). Angew Chem Int Ed Engl. 2007; 46 (37): 6966–84. DOI: 10.1002/ anie.200701979.

18. Пашков Е.А., Файзулоев Е.Б., Свитич О.А., Сергеев О.В., Зверев В.В. Перспектива создания специфических противогриппозных препаратов на основе синтетических малых интерферирующих РНК. Вопросы вирусологии. 2020; 65 (4): 182–190. DOI: https://doi. org/10.36233/0507-4088-2020-65-4-182-190

19. McManus M. T., Sharp P.A. Gene silencing in mammals by small interfering RNAs. Nat Rev Genet. 2002 Oct; 3 (10): 737–47. DOI: 10.1038/ nrg908.

20. Adams D., Surhr O. Patisiran, an investigational RNAi therapeutic for patients with hereditary transthyretin-mediated (hATTR) amyloidosis: Results from the phase 3 APOLLO study. Revue Neurologique. 2018. DOI: 10.1016/j.neurol.2018.01.085.

21. Zhao L., Wang X., Zhang X., Liu X., Ma N., Zhang Y., Zhang S. Therapeutic strategies for acute intermittent porphyria. Intractable Rare Dis Res. 2020 Nov; 9 (4): 205–216. DOI: 10.5582/irdr.2020.03089.

22. van der Ree M.H., van der Meer A.J., van Nuenen A.C., de Bruijne J., Ottosen S., Janssen H.L., Kootstra N.A., Reesink H.W. Miravirsen dosing in chronic hepatitis C patients results in decreased microRNA-122 levels without affecting other microRNAs in plasma. Aliment Pharmacol Ther. 2016 Jan; 43 (1): 102–13. DOI: 10.1111/apt.13432.

23. DeVincenzo J., Lambkin-Williams R., Wilkinson T., Cehelsky J., Nochur S., Walsh E., Meyers R., Gollob J., Vaishnaw A. A randomized, doubleblind, placebo-controlled study of an RNAi-based therapy directed against respiratory syncytial virus. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010 May 11; 107 (19): 8800–5. DOI: 10.1073/pnas.0912186107.

24. Qureshi A., Tantray V.G., Kirmani A.R., Ahangar A.G. A review on current status of antiviral siRNA. Rev Med Virol. 2018 Jul; 28 (4): e1976. DOI: 10.1002/rmv.1976. Epub 2018 Apr 15. PMID: 29656441.

25. Lesch M., Luckner M., Meyer M., Weege F., Gravenstein I., Raftery M., Sieben C., Martin-Sancho L., Imai-Matsushima A., Welke R.W., Frise R., Barclay W., Schönrich G., Herrmann A., Meyer T.F., Karlas A. RNAi-based small molecule repositioning reveals clinically approved ureabased kinase inhibitors as broadly active antivirals. PLoS Pathog. 2019 Mar 18; 15 (3): e1007601. DOI: 10.1371/journal.ppat.1007601.

26. Estrin M.A., Hussein I.T. M., Puryear W.B., Kuan A.C., Artim S.C., Runstadler J.A. Host-directed combinatorial RNAi improves inhibition of diverse strains of influenza A virus in human respiratory epithelial cells. PLoS One. 2018 May 18; 13 (5): e0197246. DOI: 10.1371/journal. pone.0197246.

27. Karlas A., Machuy N., Shin Y., Pleissner K.P., Artarini A., Heuer D., Becker D., Khalil H., Ogilvie L.A., Hess S., Mäurer A.P., Müller E., Wolff T., Rudel T., Meyer T.F. Genome-wide RNAi screen identifies human host factors crucial for influenza virus replication. Nature. 2010 Feb 11; 463 (7282): 818–22. DOI: 10.1038/nature08760.

28. Ramakrishnan M.A. Determination of 50% endpoint titer using a simple formula. World J Virol. 2016 May 12; 5 (2): 85–6. DOI: 10.5501/ wjv.v5.i2.85.

29. Eierhoff T., Hrincius E.R., Rescher U., Ludwig S., Ehrhardt C. The epidermal growth factor receptor (EGFR) promotes uptake of influenza A viruses (IAV) into host cells. PLoS Pathog. 2010 Sep 9; 6 (9): e1001099. DOI: 10.1371/journal.ppat.1001099.

30. Shaw M.L., Stertz S. Role of Host Genes in Influenza Virus Replication. Curr Top Microbiol Immunol. 2018; 419: 151–189. DOI: 10.1007/82_2017_30.

31. Watanabe T., Watanabe S., Kawaoka Y. Cellular networks involved in the influenza virus life cycle. Cell Host Microbe. 2010 Jun 25; 7 (6): 427–39. DOI: 10.1016/j.chom.2010.05.008.

32. Das A.T., Brummelkamp T.R., Westerhout E.M., Vink M., Madiredjo M., Bernards R., Berkhout B. Human immunodeficiency virus type 1 escapes from RNA interference-mediated inhibition. J Virol. 2004 Mar; 78 (5): 2601–5. DOI: 10.1128/jvi.78.5.2601–2605.2004.

33. Pashkov E.A., Faizuloev E.B., Svitich O.A., Sergeev O.V., Zverev V.V. [The potential of synthetic small interfering RNA-based antiviral drugs for influenza treatment]. VoprVirusol. 2020 Sep 16; 65 (4): 182–190. Russian. DOI: 10.36233/0507-4088-2020-65-4-182-190.

1. Hussain M., Galvin H.D., Haw T.Y., Nutsford A.N., Husain M. Drug resistance in influenza A virus: the epidemiology and management. Infect Drug Resist. 2017; (10): 121–134. DOI: 10.2147/IDR.S105473.

2. ICTV (2020). Available at: https://talk.ictvonline.org/taxonomy/vonline.org (release 2020).

3. Taubenberger J.K., Kash J.C. Influenza virus evolution, host adaptation, and pandemic formation. CellHostMicrobe. 2010; 7 (6): 440–51. DOI: 10.1016/j.chom.2010.05.009.

4. Rezkalla S.H., Kloner R.A. Viral myocarditis: 1917–2020: From the Influenza A to the COVID-19 pandemics. Trends Cardiovasc Med. 2021; 31 (3): 163–169. DOI: 10.1016/j.tcm.2020.12.007.

5. Nguyen J.L., Yang W., Ito K., Matte T.D., Shaman J, Kinney PL. Seasonal Influenza Infections and Cardiovascular Disease Mortality. JAMA Cardiol. 2016; 1 (3): 274–81. DOI: 10.1001/jamacardio.2016.0433.

6. Ekstrand J.J. Neurologic complications of influenza. SeminPediatr Neurol. 2012; 19 (3): 96–100. DOI: 10.1016/j.spen.2012.02.004.

7. Edet A., Ku K., Guzman I., Dargham H.A. Acute Influenza Encephalitis/Encephalopathy Associated with Influenza A in an Incompetent Adult. Case Rep Crit Care. 2020; 2020: 6616805. DOI: 10.1155/2020/6616805.

8. Err H., Wiwanitkit V. Emerging H6N1 influenza infection: renal problem to be studied. Ren Fail. 2014; 36 (4): 662. DOI: 10.3109/0886022X.2014.883934.

9. Leneva I.A., EgorovA.Yu., Falynskova I.N. et. al. Induction of secondary bacterial pneumonia in mice infected with pandemic and laboratory strains of the H1N1 influenza virus. Journal of the Microbiology, Immunology and Virology. 2019; (1): 68–74. (in Russian)

10. Metersky M.L., Masterton R.G., Lode H., File T.M. Jr, Babinchak T. Epidemiology, microbiology, and treatment considerations for bacterial pneumonia complicating influenza. Int J Infect Dis. 2012; 16 (5): e321–31. DOI: 10.1016/j.ijid.2012.01.003.

11. Vanderbeke L., Spriet I., Breynaert C., Rijnders B.J. A., Verweij P.E., Wauters J. Invasive pulmonary aspergillosis complicating severe influenza: epidemiology, diagnosis and treatment. Curr Opin Infect Dis. 2018; 31 (6): 471–480. DOI: 10.1097/QCO.0000000000000504.

12. Wang J., Wu Y., Ma C., Fiorin G., Wang J., Pinto L.H., Lamb R.A., Klein M.L., Degrado W.F. Structure and inhibition of the drug-resistant S31N mutant of the M2 ion channel of influenza A virus. Proc Natl Acad Sci USA. 2013; 110 (4): 1315–20. DOI: 10.1073/pnas.1216526110.

13. Leneva I.A., Russell R.J., Boriskin Y.S., Hay A.J. Characteristics of arbidol-resistant mutants of influenza virus: implications for the mechanism of anti-influenza action of arbidol. Antiviral Res. 2009; 81 (2): 132–40. DOI: 10.1016/j.antiviral.2008.10.009.

14. Hurt A.C., Ernest J., Deng Y.M., Iannello P., Besselaar T.G., Birch C., Buchy P., Chittaganpitch M., Chiu S.C., Dwyer D., Guigon A., Harrower B., Kei I.P., Kok T., Lin C., McPhie K, Mohd A, Olveda R, Panayotou T, Rawlinson W, Scott L, Smith D, D’Souza H, Komadina N., Shaw R., Kelso A., Barr I.G. Emergence and spread of oseltamivir-resistant A (H1N1) influenza viruses in Oceania, South East Asia and South Africa. Antiviral Res. 2009; 83 (1): 90–3. DOI: 10.1016/j.antiviral.2009.03.003.

15. Hurt A.C. The epidemiology and spread of drug resistant human influenza viruses. Curr Opin Virol. 2014; 8: 22–9. DOI: 10.1016/j.coviro.2014.04.009.

16. Lampejo T. Influenza and antiviral resistance: an overview. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2020; 39 (7): 1201–1208. DOI: 10.1007/ s10096-020-03840-9.

17. Fire A.Z. Gene silencing by double-stranded RNA (Nobel Lecture). Angew Chem Int Ed Engl. 2007; 46 (37): 6966–84. DOI: 10.1002/ anie.200701979.

18. Pashkov E.A., Faizuloev Е.B., Svitich О.А., Sergeev O.V., Zverev V.V. The potential of synthetic small interfering RNA-based antiviral drugs for influenza treatment. Problems of Virology (Voprosy Virusologii). 2020; 65 (4): 182–190. DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-2020-65-4 -182-190 (in Russian)

19. McManus M. T., Sharp P.A. Gene silencing in mammals by small interfering RNAs. Nat Rev Genet. 2002 Oct; 3 (10): 737–47. DOI: 10.1038/nrg908.

20. Adams D., Surhr O. Patisiran, an investigational RNAi therapeutic for patients with hereditary transthyretin-mediated (hATTR) amyloidosis: Results from the phase 3 APOLLO study. Revue Neurologique. 2018. DOI: 10.1016/j.neurol.2018.01.085.

21. Zhao L., Wang X., Zhang X., Liu X., Ma N., Zhang Y., Zhang S. Therapeutic strategies for acute intermittent porphyria. Intractable Rare Dis Res. 2020; 9 (4): 205–216. DOI: 10.5582/irdr.2020.03089.

22. van der Ree M.H., van der Meer A.J., van Nuenen A.C., de Bruijne J., Ottosen S., Janssen H.L., Kootstra N.A., Reesink H.W. Miravirsen dosing in chronic hepatitis C patients results in decreased microRNA-122 levels without affecting other microRNAs in plasma. Aliment Pharmacol Ther. 2016; 43 (1): 102–13. DOI: 10.1111/apt.13432.

23. DeVincenzo J., Lambkin-Williams R., Wilkinson T., Cehelsky J., Nochur S., Walsh E., Meyers R., Gollob J., Vaishnaw A. A randomized, doubleblind, placebo-controlled study of an RNAi-based therapy directed against respiratory syncytial virus. Proc Natl Acad Sci USA. 2010; 107 (19): 8800–5. DOI: 10.1073/pnas.0912186107.

24. Qureshi A., Tantray V.G., Kirmani A.R., Ahangar A.G. A review on current status of antiviral siRNA. Rev Med Virol. 2018; 28 (4): e1976. DOI: 10.1002/rmv.1976. Epub 2018 Apr 15. PMID: 29656441.

25. Lesch M., Luckner M., Meyer M., Weege F., Gravenstein I., Raftery M., Sieben C., Martin-Sancho L., Imai-Matsushima A., Welke R.W., Frise R., Barclay W., Schönrich G., Herrmann A., Meyer T.F., Karlas A. RNAi-based small molecule repositioning reveals clinically approved urea-based kinase inhibitors as broadly active antivirals. PLoS Pathog. 2019; 15 (3): e1007601. DOI: 10.1371/journal.ppat.1007601.

26. Estrin M.A., Hussein I.T. M., Puryear W.B., Kuan A.C., Artim S.C., Runstadler J.A. Host-directed combinatorial RNAi improves inhibition of diverse strains of influenza A virus in human respiratory epithelial cells. PLoS One. 2018; 13 (5): e0197246. DOI: 10.1371/journal.pone.0197246.

27. Karlas A., Machuy N., Shin Y., Pleissner K.P., Artarini A., Heuer D., Becker D., Khalil H., Ogilvie L.A., Hess S., Mäurer A.P., Müller E., Wolff T., Rudel T., Meyer T.F. Genome-wide RNAi screen identifies human host factors crucial for influenza virus replication. Nature. 2010; 463 (7282): 818–22. DOI: 10.1038/nature08760.

28. Ramakrishnan M.A. Determination of 50% endpoint titer using a simple formula. World J Virol. 2016; 5 (2): 85–6. DOI: 10.5501/wjv.v5.i2.85.

29. Eierhoff T., Hrincius E.R., Rescher U., Ludwig S., Ehrhardt C. The epidermal growth factor receptor (EGFR) promotes uptake of influenza A viruses (IAV) into host cells. PLoS Pathog. 2010; 6 (9): e1001099. DOI: 10.1371/journal.ppat.1001099.

30. Shaw M.L., Stertz S. Role of Host Genes in Influenza Virus Replication. Curr Top Microbiol Immunol. 2018; 419: 151–189. DOI: 10.1007/82_2017_30.

31. Watanabe T., Watanabe S., Kawaoka Y. Cellular networks involved in the influenza virus life cycle. Cell Host Microbe. 2010; 7 (6): 427–39. DOI: 10.1016/j.chom.2010.05.008.

32. Das A.T., Brummelkamp T.R., Westerhout E.M., Vink M., Madiredjo M., Bernards R., Berkhout B. Human immunodeficiency virus type 1 escapes from RNA interference-mediated inhibition. J Virol. 2004; 78 (5): 2601–5. DOI: 10.1128/jvi.78.5.2601–2605.2004.

33. Pashkov E.A., Faizuloev E.B., Svitich O.A., Sergeev O.V., Zverev V.V. [The potential of synthetic small interfering RNA-based antiviral drugs for influenza treatment]. Vopr Virusol. 2020; 65 (4): 182–190. Russian. DOI: 10.36233/0507-4088-2020-65-4-182-190.

Грипп — одна из наиболее значимых проблем мирового здравоохранения на сегодняшний день. По данным Всемирной организации здравоохранения, ежегодно отмечается до 1 млрд новых случаев гриппа, до 5 млн случаев тяжелых заболеваний и до 500 тыс. смертей во всем мире [1]. Особой клинической значимостью обладают вирусы рода Alpha influenza virus (Influenza A virus) (вирус гриппа А, ВГА), относящиеся к семейству Orthomyxoviridae, поскольку они являются причиной тяжелых заболеваний и имеют высокий эпидемический и пандемический потенциал [2, 3]. Помимо поражения органов дыхательной системы, гриппозная инфекция также способна поражать органы центральной нервной, мочеполовой и сердечно-сосудистой систем. В некоторых случаях имеется риск развития тяжелых бактериальных и грибковых осложнений [4–11].

На сегодняшний день для профилактики и терапии гриппа используется ряд этиотропных, симптоматических и специфических препаратов. В настоящее время большинство штаммов вируса гриппа имеет практически полную резистентность (≈95%) к препаратам адамантанового ряда [12]. Также известно, что некоторые циркулирующие штаммы резистентны к ингибиторам слияния [13]. В разные эпидемические сезоны чувствительность штаммов вирусов гриппа А и В была неоднозначной по отношению к ингибиторам нейраминидазы. В сезоне 2008–2009 гг. все циркулирующие вирусы гриппа А (H1N1) были устойчивы к озельтамивиру, однако в 2018 г. циркулирующие вирусы гриппа A H1N1 были полностью восприимчивы к озельтамивиру, перамивиру и занамивиру [14–16]. Таким образом, несмотря на широкую осведомленность о молекулярной биологии, структурной организации и патогенезе вируса гриппа, по-настоящему эффективных средств терапии и профилактики гриппозной инфекции не существует. Исходя из этого, в данный момент особо актуальным является проблема поиска и разработки альтернативных лекарственных препаратов для профилактики и терапии гриппа.

РНК-интерференция (РНКи, RNAi) — последовательность регуляторных реакций в клетках эукариот, вызванных экзогенной двухцепочечной молекулой РНК [17]. Механизм РНКи состоит в разделении экзогенной двухцепочечной РНК на небольшие последовательности, от 21 до 25 пар нуклеотидов, которые являются малыми интерферирующими РНК (миРНК, siRNA). После образования миРНК происходит ее связывание с комплексом RISC, состоящим из трех белков: Ago2, PACT и TRBP. Образовавшийся комплекс распознает и расщепляет мРНК-мишень [18, 19].

Для Цитирования:
Пашков Евгений Алексеевич, Корчевая Екатерина Романовна, Файзулоев Евгений Бахтиерович, Пашков Евгений Петрович, Зайцева Татьяна Александровна, Ртищев Артем Андреевич, Поддубиков Александр Владимирович, Свитич Оксана Анатольевна, Зверев Виталий Васильевич, Создание модели изучения противовирусного действия малых интерферирующих РНК in vitro. Санитарный врач. 2022;1.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: