По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 597.553.2:577.125 DOI:10.33920/sel-09-2602-02

Содержание общих липидов и их фракций во внутренних органах ручьевой форели Salmo trutta morpha fario (Salmonidae), обитающей в горных реках Краснодарского края

Нина Иосифовна Силкина канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории иммунологии, Институт биологии внутренних вод имени И.Д. Папанина РАН, Россия, 152742, Ярославская область, Некоузский район, поселок Борок, д. 109, ИБВВ РАН, E-mail: sni@ibiw.yaroslavl.ru, ORCID: 0000-0003-1166-8439, SPIN: 3598-7448
Даниил Вениаминович Микряков канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории иммунологии, Институт биологии внутренних вод имени И.Д. Папанина РАН, Россия, 152742, Ярославская область, Некоузский район, поселок Борок, д. 109, ИБВВ РАН, E-mail: daniil@ibiw.ru, ORCID: 0000-0001-9086-1688, SPIN: 2356-9160

Видовой состав и распределение рыб в речных экосистемах зависят от условий среды обитания. Большое влияние на ихтиофауну оказывают гидробиологические показатели и экологические факторы. Проведено сравнительное исследование содержания общих липидов и их фракций в тканях печени, почки и селезенки ручьевой форели Salmo trutta morfa fario, обитающей в разных по протяженности горных реках Черноморского побережья Кавказа. Половозрелых особей отлавливали в крупной реке Аше и небольшой реке Хобза. Сразу после вылова у рыб отбирали печень, почку и селезенку. Пробирки с образцами тканей органов замораживали. В условиях лаборатории пробы размораживали для дальнейших исследований. В тканях рыб анализировали содержание общих липидов и их фракционный состав. Анализировали относительное содержание структурных фосфолипидов, холестерина, неэстерифицированных жирных кислот, запасных триацилглицеридов, эфиров стеринов и углеводородов + воска в % к общему содержанию липидов. Также рассчитывали соотношение холестерин/фосфолипиды и триацилглицерины/фосфолипиды. Рыбы из более крупной реки отличались от особей из небольшого водотока высокими показателями триацилглицеринов, углеводородов и низкими — общих липидов, холестерина, неэстерифицированных жирных кислот. Установлено, что показатель холестерин/фосфолипиды был ниже, а триацилглицерины/фосфолипиды выше в органах рыб, обитающих в реке Хобза, по сравнению с особями из реки Аше. Обнаруженные различия показателей липидного обмена у рыб из разных водотоков, вероятно, зависели от гидробиологических показателей и экологических факторов. Уровень содержания общих липидов и отдельных фракций у особей из реки Хобза указывают на неблагоприятные условия обитания.

Литература:

1. Аськеев, А.О. Население рыб малых рек бассейнов Меши и Казанки / А.О. Аськеев, О.В. Аськеев, И.В. Аськеев, С.П. Монахов // Российский журнал прикладной экологии. — 2022. — № 2 (30). — С. 4–11. — DOI 10.24852/2411-7374.2022.2.4.11.

2. Веланский, П.В. Липиды морских холодноводных рыб / П.В. Веланский, Э.Я. Костецкий // Биология моря. — 2008. — Т. 34, № 1. — С. 53–57.

3. Гершанович, А.Д. Особенности обмена липидов у рыб / А.Д. Гершанович, В.И. Лапин, М.И. Шатуновский // Успехи соврем. биол. — 1991. — Т. 3. — Вып. 2. — С. 207–219.

4. Горбачева, Е.А. Хлорорганические соединения в атлантической треске (Gadus morhua) и морской камбале (Pleuronectes platessa) Баренцева моря / Е.А. Горбачева, М.А. Новиков // Арктика: экология и экономика. — 2024. — Т. 14, № 4. — С. 562–574. — DOI 10.25283/2223-4594-2024-4-562-574.

5. Карнаухов, Г.И. Биоценозы некоторых черноморских рек / Г.И. Карнаухов // Международный научно-исследовательский журнал. — 2019. — № 4-1 (82). — С. 82–85. — DOI 10.23670/IRJ.2019.82.4.016.

6. Карпова, Е.П. Динамика структуры и разнообразия рыбных сообществ горных рек Крыма на примере реки Альма / Е.П. Карпова // Экология. — 2020. — № 2. — С. 134–140. — DOI 10.31857/S0367059720020067.

7. Кейтс, М. Техника липидологии. Выделение, анализ и идентификация липидов / М. Кейтс. — М.: Мир, 1975. — 322 c.

8. Климов, А.Н. Обмен липидов и липопротеидов и его нарушения / А.Н. Климов, Н.Г. Никульчева. — СПб.: Питер Ком, 1999. — 512 с.

9. Котегов, Б.Г. Особенности видового состава и структуры сообществ рыб малых рек Удмуртской Республики / Б.Г. Котегов // Экология. — 2007. — № 4. — С. 274–282.

10. Микряков, В.Р. Влияние антропогенного загрязнения на иммунологические и биохимические механизмы поддержания гомеостаза у рыб Черного моря / В.Р. Микряков, Н.И. Силкина, Д.В. Микряков // Биология моря. — 2011. — Т. 37, № 2. — С. 142–148.

11. Немова, Н.Н. Биохимическая индикация состояния рыб / Н.Н. Немова, Р.У. Высоцкая. — М.: Наука, 2004. — 215 c.

12. Пашков, А.Н. Сравнительная оценка состояния зообентосных и рыбных сообществ малых рек Черноморского побережья Северо-Западного Кавказа / А.Н. Пашков, С.И. Решетников // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. — 2009. — Т. 11, № 1 (2). — С. 119–122.

13. Плисецкая, Э.М. Гормональная регуляция углеводного обмена у низших позвоночных / Э.М. Плисецкая. — Л.: Наука, 1975. — 215 с.

14. Рыбы в заповедниках России: Пресноводные рыбы / Под ред. Ю.С. Решетникова. — Т. 1. — М.: Т-во научных изданий КМК, 2010. — 627 с.

15. Силкина, Н.И. Морфометрические и биохимические показатели ручьевой форели, обитающей в горных реках Черноморского побережья Кавказа / Н.И. Силкина, Д.В. Микряков // Труды Института биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН. — 2024. — Вып. 106 (109). — С. 86–91. — DOI 10.47021/0320-3557-2024-86-91.

16. Смирнов, Л.П. Липиды в физиолого-биохимических адаптациях эктотермных организмов к абиотическим и биотическим факторам среды / Л.П. Смирнов, В.В. Богдан. — М.: Наука, 2007. — 182 с.

17. Экотоксикологические исследования прибрежной черноморской ихтиофауны в районе Севастополя / Под ред. И.И. Рудневой. — М.: ГЕОС, 2016. — 360 с.

18. Askeyev, O. Extreme temperatures help in identifying thresholds in phenological responses / O. Askeyev, A. Askeyev, I. Askeyev, T. Sparks // Global ecology and biogeography. — 2022. — № 31 (2). — P. 321–331. — DOI 10.1111/geb.13430.

19. Bazarsadueva, S.V. The Comparison of Fatty Acid Composition and Lipid Quality Indices of Roach, Perch, and Pike of Lake Gusinoe (Western Transbaikalia) / S.V. Bazarsadueva, L.D. Radnaeva, V.G. Shiretorova, E.P. Dylenova // J. Environ. Res. Public Health. — 2021. — V. 18. — P. 9032. — https:// doi.org/10.3390/ijerph18179032.

20. Cazenave, J. Deleterious effects of wastewater on the health status of fish: A field caging study / J. Cazenave, C. Bacchetta, A. Rossi // Ecological Indicators. — 2014. — V. 38. — P. 104–112. — https://doi.org/ 10.1016/j.ecolind.2013.10.029.

21. Chesnokova, I.I. Comparative analysis of hepatic biomarkers of black scorpionfish Scorpaena Porcus Linnaeus, 1758 from Sevastopol waters areals (the Black Sea) with different pollution levels / I.I. Chesnokova, T.B. Sigacheva, E.N. Skuratovskaya // Water Resources. — 2020. — V. 47. — № 3. — Р. 486–490. — DOI 10.1134/S0097807820030045.

22. Comte, L. Do stream fish track climate change? Assessing distribution shifts in recent decades / L. Comte, G. Grenouillet // Ecography. — 2013. — № 36 (11). — P. 1236–1246. — DOI 10.1111/j.1600-0587.2013.00282.x.

23. Dane, H. Determination of oxidative, genotoxic, and histopathologic effects of metal pollution on the fish fauna inhabiting Karasu River, Turkey / H. Dane, T. Şişman // Turkish Journal of Zoology. — 2021. — V. 45 (7). — Р. 505–516. — https://doi.org/10.3906/zoo2105-19.

24. Du, S.N.N. Metabolic implications of exposure to wastewater effluent in bluegill sunfish / S.N.N. Du, J.A. Choi, E.S. McCallum [et al.]// Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol. — 2019. — V. 224. — 108562. — https://doi.org/10.1016/j.cbpc.2019.108562.

25. Erdoğan, K. Determination of acute toxicity of sodium pyrithione and its exposure effects on antioxidant enzymes activity, immune status, and histopathological changes in common carp / K. Erdoğan // Chemistry and Ecology. — 2023. — V. 39 (4). — Р. 376–392. — https:// doi.org/10.1080/02757540.2023.2198509.

26. Folch, J. Asimple method for the isolation and purification of total lipids from animals tis sues / J. Folch, M. Lees, G.N. Stenley // J. Biol. Chem. — 1957. — V. 226. — № 3. — P. 497–509.

27. Gusso-Choueri, P.K. Univariate or multivariate approaches for histopathological biomarkers in the context of environmental quality assessments / P.K. Gusso-Choueri, R.B. Choueri, G.S. de Araújo, A.C.F. Cruz, T.O.R. Stremel, S.X. de Campos, D.M. de Souza Abessa, C.A. de Oliveira Ribeiro // Marine Pollution Bulletin. — 2022. — V. 181. — 113828. — https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2022.113828.

28. Javed, M. Assessment of heavy metal (Cu, Ni, Fe Co, Mn, Cr, Zn) pollution in effluent dominated rivulet water and their effect on glycogen metabolism and histology of Mastacembelus armatus / M. Javed, N. Usmani // Springerplus. — 2013. — V. 2. — 390 p. — https://doi.org/10.1186/ 2193-1801-2-390.

29. Kainz, M. Lipids in Aquatic Ecosystems / M. Kainz, M.T. Brett, M.T. Arts. — Springer New York, NY, 2009. — P. 377. — DOI 10.1007/978-0-387-89366-2.

30. Murzina, S.A. Tiny but fatty: lipids and fatty acids in the daubed shanny (leptoclinus maculatus), a small fish in svalbard waters / S.A. Murzina, S.N. Pekkoeva, Z.A. Nefedova et al. // Biomolecules. — 2020. — V. 10. — № 3. — P. 368.

31. Popović, N.T. Fish liver damage related to the wastewater treatment plant effluents / N.T. Popović, L. Čižmek, S. Babić [et al.] // Environmental Science and Pollution Research. — 2023. — V. 30. — P. 48739–48768. — https://doi.org/10.1007/s11356-023-26187-y.

32. Sigacheva, T.B. A comparative analysis of biochemical parameters in the liver of the round goby Neogobius Melanostomus (Pallas, 1814) from two regions of the Taganrog Bay (Sea of Azov) / T.B. Sigacheva, E.N. Skuratovskaya, S.V. Kurshakov, M.S. Ryzhilov // Russian Journal of Marine Biology. — 2022. — Vol. 48. — №. 1. — P. 19–25. — DOI 10.1134/ S1063074022010114.

33. Wang, T. Studies of the mechanism of fatty liver formation in Takifugu fasciatus following copper exposure / T. Wang, X. Wei, T. Chen et al. // Ecotoxicology and Environmental Safety. — 2019. — V. 181. — P. 353–361. — https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2019.06.013.

34. Weinrauch, A.M. Changes to hepatic nutrient dynamics and energetics in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) following exposure to and recovery from hydraulic fracturing fowback and produced water/ A.M. Weinrauch, D.J. Folkerts, D.S. Alessi [et al.] // Science of The Total Environment. — 2021. — V. 764. — 142893. — https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2020.142893.

35. Wendelaar, Bonga. The stress response in fish / Bonga Wendelaar, E. Sjoerd // Physiological Reviews. — 1997. — V. 77 (3). — P. 591–625.

36. Zaman, M. Evaluation of histopathological alterations in the liver and kidney of olive barb (Puntius sarana, Hamilton 1822) as an Indicator of the Surma River’s Pollution / M. Zaman, S.M.I. Khalil, M.Z. Rahman [et al.] // Aquatic Science Engineering. — 2023. — V. 38 (2). — P. 81–88. — https://doi.org/10.26650/ASE20221208209.

1. Askeev, A.O., Askeev, O.V., Askeev, I.V. et al. Fish population of small rivers of the Mesha and Kazanka basins. Rossiiskii zhurnal prikladnoi ekologii, 2022, no. 2 (30), pp. 4–11. DOI 10.24852/2411-7374.2022.2.4.11 (in Russian).

2. Velansky, P.V., Kostetsky, E.Ya. Lipids of marine cold-water fishes. Russian Journal of Marine Biology, 2008, vol. 34, no. 1, pp. 53–57 (in Russian).

3. Gershanovich, A.D., Lapin, V.I., Shatunovsky, M.I. Features of lipid metabolism in fish. Uspekhi sovrem. biol., 1991, v. 3 (2), pp. 207–219 (in Russian).

4. Gorbacheva, E.A., Novikov, M.A. Organochlorine compounds in Atlantic cod (Gadus morhua) and flounder (Pleuronectes platessa) of the Barents Sea. Arctic: Ecology and Economy, 2024, vol. 14, no. 4, pp. 562–574. DOI 10.25283/2223-4594-2024-4-562-574 (in Russian).

5. Karnaukhov, G.I. Biocenoses of some Black Sea rivers. Mezhdunarodnyi nauchnoissledovatel’skii zhurnal, 2019, no. 4-1 (82), pp. 82–85. DOI 10.23670/IRJ.2019.82.4.016 (in Russian).

6. Karpova, E.P. Dynamics of the structure and diversity of fish communities of mountain rivers of Crimea using the Alma River as an example. Ekologiya, 2020, no. 2, pp. 134–140 (in Russian).

7. Keits, M. Techniques of Lipidology, 3rd Revised Edition: Isolation, Analysis, and Identification of Lipids. Newport Somerville Innovation, Limited, 2010. 422 p. (in Russian).

8. Klimov, A.N. Obmen lipidov i lipoproteidov i ego narusheniya [Lipid and lipoprotein metabolism and its disorders]. Saint Petersburg, 1999. 512 p. (in Russian).

9. Kotegov, B.G. Features of the species composition and structure of fish communities in small rivers of the Udmurt Republic. Ekologiya, 2007, no. 4, pp. 274–282 (in Russian).

10. Mikryakov, V.R., Silkina, N.I., Mikryakov, D.V. The influence of anthropogenic pollution on the immunological and biochemical mechanisms of maintaining homeostasis in Black Sea fish. Biologiya moray, 2011, vol. 37, no. 2, pp. 142–148 (in Russian).

11. Nemova, N.N. Biochemical indication of fish condition. Moscow, 2004. 215 p. (in Russian).

12. Pashkov, A.N., Reshetnikov, S.I. Comparative assessment of the state of zoobenthic and fish communities of small rivers of the Black Sea coast of the northwestern Caucasus. Izvestiya Samarskogo nauchnogo tsentra Rossiiskoi akademii nauk, 2009, vol. 11, no. 1 (2), pp. 119–122 (in Russian).

13. Plisetskaya, E.M. Hormonal regulation of carbohydrate metabolism in lower vertebrates. Nauka, Leningrad, 1975. 215 p. (in Russian).

14. Reshetnikov, Yu.S. (Ed.) Fish in Russian Nature Reserves: Freshwater Fish, vol. 1., Moscow, 2010. 627 p. (in Russian).

15. Silkina, N.I., Mikryakov, D.V. Morphometric and biochemical parameters of brook trout living in mountain rivers of the Black Sea coast of the Caucasus. Transactions of the Papanin institute for biology of inland waters RAS, 2024, no. 106 (109), pp. 86–91. DOI 10.47021/03203557-2024-86-91 (in Russian).

16. Smirnov, L.P. Lipids in physiological and biochemical adaptations of ectothermic organisms to abiotic and biotic environmental factors. Moscow, 2007. 182 p. (in Russian). https://search.rsl.ru/ru/record/01003379401.

17. Rudneva, I.I. (Ed.) Ecotoxicological studies of the coastal Black Sea ichthyofauna in the Sevastopol region. Moscow, 2016. 360 p. (in Russian).

18. Askeyev, O., Askeyev, A., Askeyev, I. et al. Extreme temperatures help in identifying thresholds in phenological responses. Global ecology and biogeography, 2022, no. 31 (2), pp. 321–331. DOI 10.1111/geb.13430.

19. Bazarsadueva, S.V., Radnaeva, L.D., Shiretorova, V.G. et al. The Comparison of Fatty Acid Composition and Lipid Quality Indices of Roach, Perch, and Pike of Lake Gusinoe (Western Transbaikalia). International Journal of Environmental Research and Public Health, 2021, vol. 18, pр. 9032. DOI 10.3390/ijerph18179032.

20. Cazenave, J., Bacchetta, C., Rossi, A. Deleterious effects of wastewater on the health status of fish: A field caging study. Ecological Indicators, 2014, vol. 38, pp. 104–112. DOI 10.1016/j.ecolind.2013.10.029.

21. Chesnokova, I.I., Sigacheva, T.B., Skuratovskaya, E.N. Comparative analysis of hepatic biomarkers of black scorpionfish Scorpaena porcus Linnaeus, 1758 from Sevastopol waters areals (the Black Sea) with different pollution levels. Water Resources, 2020, vol. 47, no. 3, pp. 486–490. DOI 10.1134/S0097807820030045.

22. Comte, L., Grenouillet, G. Do stream fish track climate change? Assessing distribution shifts in recent decades. Ecography, 2013, no. 36 (11), pp. 1236‒1246. DOI 10.1111/j.16000587.2013.00282.x.

23. Dane, H., Şişman, T. Determination of oxidative, genotoxic, and histopathologic effects of metal pollution on the fish fauna inhabiting Karasu River, Turkey. Turkish Journal of Zoology, 2021, vol. 45 (7), pp. 505‒516. DOI 10.3906/zoo-2105-19.

24. Du, S.N.N., Choi, J.A., McCallum, E.S. et al. Metabolic implications of exposure to wastewater effluent in bluegill sunfish. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 2019, vol. 224, 108562. DOI 10.1016/j.cbpc.2019.108562.

25. Erdoğan, K. Determination of acute toxicity of sodium pyrithione and its exposure effects on antioxidant enzymes activity, immune status, and histopathological changes in common carp. Chemistry and Ecology, 2023, vol. 39 (4), pp. 376–392. DOI 10.1080/02757540.2023.2198509.

26. Folch, J., Lees, M., Stenley, G.N. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animals tissues. Journal of Biological Chemistry, 1957, vol. 226, no. 3, pp. 497–509.

27. Gusso-Choueri, P.K., Choueri, R.B., de Araújo, G.S. et al. Univariate or multivariate approaches for histopathological biomarkers in the context of environmental quality assessments. Marine Pollution Bulletin, 2022, vol. 181, 113828. DOI 10.1016/j.marpolbul.2022.113828.

28. Javed, M., Usmani, N. Assessment of heavy metal (Cu, Ni, Fe Co, Mn, Cr, Zn) pollution in effluent dominated rivulet water and their effect on glycogen metabolism and histology of Mastacembelus armatus. SpringerPlus, 2013, vol. 2, 390 p. DOI 10.1186/2193-1801-2-390.

29. Kainz, M., Brett, M.T., Arts, M.T. In: Lipids in Aquatic Ecosystems. Springer New York, NY. 2009, рр. 377. DOI 10.1007/978-0-387-89366-2.

30. Murzina, S.A., Pekkoeva, S.N., Nefedova, Z.A. [et al.] Tiny but fatty: lipids and fatty acids in the daubed shanny (Leptoclinus maculatus), a small fish in svalbard waters. Biomolecules, 2020, vol. 10, no. 3, pр. 368.

31. Popović, N.T., Čižmek, L., Babić, S. et al. Fish liver damage related to the wastewater treatment plant effluents. Environmental Science and Pollution Research, 2023, vol. 30, pp. 48739–48768. DOI 10.1007/s11356-023-26187-y.

32. Sigacheva, T.B., Skuratovskaya, E.N., Kurshakov, S.V. et al. A comparative analysis of biochemical parameters in the liver of the round goby Neogobius melanostomus (Pallas, 1814) from two regions of the Taganrog Bay (Sea of Azov). Russian Journal of Marine Biology, 2022, vol. 48, no. 1. pp. 19–25. DOI 10.1134/S1063074022010114.

33. Wang, T., Wei, X., Chen, T. et al. Studies of the mechanism of fatty liver formation in Takifugu fasciatus following copper exposure. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2019, vol. 181, pp. 353–361. DOI 10.1016/j.ecoenv.2019.06.013.

34. Weinrauch, A.M., Folkerts, D.J., Alessi, D.S. et al. Changes to hepatic nutrient dynamics and energetics in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) following exposure to and recovery from hydraulic fracturing flowback and produced water. Science of The Total Environment, 2021, vol. 764, 142893. DOI 10.1016/j.scitotenv.2020.142893.

35. Wendelaar, Bonga, Sjoerd, E. The stress response in fish. Physiological Reviews, 1997, vol. 77 (3), pp. 591–625.

36. Zaman, M., Khalil, S.M.I., Rahman, M.Z. et al. Evaluation of histopathological alterations in the liver and kidney of olive barb (Puntius sarana, Hamilton 1822) as an Indicator of the Surma River’s Pollution. Aquatic Science Engineering, 2023, vol. 38 (2), pp. 81–88. DOI 10.26650/ASE20221208209.

Видовой состав и распределение рыб в речных экосистемах зависят от условий среды обитания. Кроме гидробиологических показателей и экологических факторов (протяженность реки, глубина, скорость течения, тип грунта, температура и прозрачность воды, содержание кислорода, кормовая база и т.д.), большое влияние на ихтиофауну оказывают климатические изменения и уровень антропогенного загрязнения [18; 22].

На территории Кавказского биосферного заповедника Краснодарского края протекает большое количество разнотипных по условиям обитания рек. Особенность данного региона России — повышение температуры воды во второй половине лета. В связи с этим усиливается процесс разложения органических веществ, приводящий к дефициту кислорода в воде. Происходящие изменения в совокупности с воздействием человека (загрязнение воды, вырубка лесов, отбор грунта, урбанизация ландшафтов, автомобильный туризм, браконьерство) негативно влияют на экосистему водоемов [5; 12]. Антропогенное влияние отражается на рыбах, обитающих в малых реках, протяженность которых не более 100 км. Такие водотоки отличаются от более крупных рек гидрологическими характеристиками и высокой чувствительностью на изменение биотических и абиотических показателей. Ухудшение условий окружающей среды отражается на физиологическом состоянии рыб и происходящих в организме биохимических процессах [10; 11; 17; 21; 32]. Поллютанты из воды и с пищей попадают в организм рыб, вызывая повреждение структуры и функции органов, нарушение нормального метаболизма и индукцию окислительного стресса. Происходящие изменения вызывают патологии и морфологические аномалии [23; 36], негативно влияют на темпы роста и развития [15], а также снижают адаптационный потенциал и могут привести к гибели рыб. Как следствие, в таких водоемах происходит изменение видового состава и структуры рыбного населения [1; 6; 9].

Ручьевая форель Salmo trutta morpha fario Linnaeus, 1758 — один из наиболее распространенных и ценных видов, обитающих в реках Кавказского биосферного заповедника. Это пресноводная форма морской проходной лососевой рыбы — черноморской кумжи S. trutta labrax Pallas, 1814 [14]. Данные особи никогда не уходят в море, обладают более низкой интенсивностью роста и плодовитостью по сравнению с исходным морским видом. Молодь питается мелкими ракообразными и личинками насекомых, взрослые особи — личинками насекомых, хирономидами, гаммарусами, мелкими моллюсками, падающими в воду насекомыми, икрой (часто собственной), рыбой (бычками-подкаменщиками, гольяном), головастиками, лягушками и даже мелкими млекопитающими (грызунами). Нерест ручьевой форели в данных водоемах происходит в октябре-ноябре при температуре воды 6–8 °С.

Для Цитирования:
Нина Иосифовна Силкина, Даниил Вениаминович Микряков, Содержание общих липидов и их фракций во внутренних органах ручьевой форели Salmo trutta morpha fario (Salmonidae), обитающей в горных реках Краснодарского края. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2026;2.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: