По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.3.034.2 DOI:10.33920/sel-09-2111-03

Прижизненное получение и оценка спермы самцов клариевого сома для искусственного воспроизводства

Галина Иозеповна Пронина д-р биол. наук, профессор кафедры аквакультуры и пчеловодства, Российский государственный аграрный университет — МСХА им. К.А. Тимирязева (РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева), 142400, Московская область, г. Ногинск, ул. Декабристов, д. 3Б, 49, E-mail: gidrobiont4@yandex.ru, ORCID: 0000-00020805-6784
Алексей Александрович Пантелеев аспирант, Российский государственный аграрный университет — МСХА им. К.А. Тимирязева (РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева), 127550, Москва, ул. Тимирязевская, д. 49, E-mail: alexalwayswin@yandex.ru, ORCID: 0000-0002-2757-9329
Елена Евгеньевна Сусова студент, Российский государственный аграрный университет — МСХА им. К.А. Тимирязева (РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева), Московская область, г. Красногорск, ул. Вилора Трифонова, д. 7, кв. 16, 143409, E-mail: alena199905@gmail.com, ORCID: 0000-0002-5554-609X

Клариевый сом является ценным объектом разведения, неприхотливым в содержании. В условиях умеренного климата его с успехом выращивают в замкнутых системах водоснабжения. Однако при искусственном воспроизводстве клариевого сома возникают проблемы с отбором качественной спермопродукции для осеменения икры. Абдоминальный массаж не дает результатов даже после соответствующей гормональной стимуляции: сперма выделяется малого объема, часто с примесью мочи и крови. При этом практически все сперматозоиды оказываются неподвижными. Это происходит вследствие морфологических особенностей строения гонад: семенные канальцы перкоидного типа, в которых находятся семенные пузырьки, препятствующие выходу спермы. При разведении сома в основном используется метод забоя самцов с последующим извлечением гонад, их измельчением и отцеживанием через марлю или сито. Поэтому актуальной задачей является разработка приемов получения качественной спермы от самцов клариевого сома in vivo. В настоящем сообщении показаны техника гонадэктомии и приемы проведения операции по извлечению одной или обеих гонад. Общая анестезия осуществлялась погружением рыбы в емкость с раствором гвоздичного масла, определена оптимальная доза гвоздичного масла для наркоза: 0,10–0,20 мл/л. Операционное поле обрабатывалось раствором антисептика. Кожа препарировалась и отделялась от мышц брюшной стенки. После торзирования семенниковых сосудов гонада иссекалась целиком, так как при частичной резекции оставшаяся часть паренхимы сочится, вызывая воспаление брюшной полости и нарушения заживления операционной раны. Прерывистые восьмеркообразные швы накладывались отдельно на брюшину с мышечным слоем брюшной стенки и кожу для создания дополнительных анастомозов и предотвращения осложнений.

Литература:

1. Власов, В.А. Рекомендации по воспроизводству и выращиванию клариевого сома с использованием установок с замкнутым циклом водообеспечения: инструктивно-методическое издание / В.А. Власов, А.П. Завьялов, Ю.И. Есавкин. — М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2010. — 48 с.

2. Власов, В.А. Воспроизводство и выращивание клариевого сома (Clarias gariepinus) в установках с замкнутым водообеспечением / В.А. Власов, А.П. Завьялов // Зоотехния. — 2014. — № 12. — С. 22–24.

3. Патент № 2683511 РФ; МПК А01К 61/00(2006.01). Способ искусственного воспроизводства африканского клариевого сома (Clarias gariepinus): № 2018108227, заявл. 06.03.2018: опубл. 28.03.2019 / Е.Д. Шинкаревич, Н.Б. Рыбалова: ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный аграрный университет» (RU). — Бюлл. 2019. — № 10. — С. 6.

4. Петрушин, А.Б. Сборник методик по разведению и выращиванию обыкновенного (Silurus glanis L.) и клариевого (Clarias gariepinus) сомов: Инструктивно-методическое издание / А.Б. Петрушин, Н.И. Маслова, В.А. Власов [и др.]. — М.: Изд-во РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева, 2012. — 80 с.

5. Подушка, С.Б. Использование хирургических методов в рыбоводстве / С.Б. Подушка // Состояние и перспективы развития пресноводной аквакультуры: доклады Международной научно-практической конференции (Москва, ВВЦ, 5–6 февраля 2013 года). — М.: Изд-во РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева, 2013. — С. 393–396.

6. Романова, Е.М. Инновационные подходы к получению половых продуктов африканского сома в бассейновой аквакультуре / Е.М. Романова, В.Н. Любомирова, В.В. Романов [и др.] // Вестник Ульяновской ГСХА. — 2017. — № 92. — С. 1–6.

7. Романова, Е.М. Репродуктивная биотехнология африканского клариевого сома / Е.М. Романова, В.Н. Любомирова, М.Э. Мухитова [и др.] // Рыбоводство и рыбное хозяйство. — 2017. — № 12 (143). — С. 49–57.

8. Шатохина, И.С. Исследование эякулята / И.С. Шатохина, В.С. Кузнецова. — М.: МОНИКИ, 2014. — 20 с.

9. Ярмош, В.В. Влияние гормональных препаратов на созревание половых продуктов клариевого сома (Clarias gariepinus B., 1868) / В.В. Ярмош, А.В. Астренков, А.В. Козырь [и др.] // Вестник Полесского государственного университета. Серия природоведческих наук. — 2017. — № 2. — С. 99–104.

10. Diyaware, M.Y. Determination of testes regeneration period for African catfish (Clarias anguillaris) after milt (semen) collection through ablation / M.Y. Diyaware, A.B. Haruna, K.A. Abubakar // Current Research Journal of Biological Sciences. — 2010. — Vol. 2 (6). — P. 375–379.

11. Kristan, J. Comparison of the effects of four anaesthetics on haematological and blood biochemical profiles in pikeperch (Sander lucioperca L.) / J. Kristan, A. Stara, J. Turek [et al.] // Neuroendocrinology Letters. — 2012. — Vol. 33 (3). — P. 66–71.

12. Kucharczyk, D. Optimization of artificial insemination outcomes of African catfish (Clarias gariepinus) with differing hatchery conditions / D. Kucharczyk, D.J. Kucharczyk, J. Nowosad [et al.] // Animal reproduction science. — 2019. — Vol. 211. — Р. 106–222. — URL: http://www.sciencedirect.com/science/journal/03784320 (дата обращения: 22.07.2020).

13. Park, I.S. Anesthetic effects of clove oil and lidocaine-HCl on marine medaka (Oryzias dancena) / I.S. Park, S.J. Park, H.W. Gil [et al.] // Lab Animal. — 2011. — Vol. 40. — P. 45–51. — URL: http://www.nature.com/laban/ (дата обращения: 22.07.2020).

14. Pronina, G.I. Techniques for in vivo extraction of gonads of male European catfish (Silurus glanis) for the artificial reproduction / G.I. Pronina, A.B. Petrushin // Aquaculture, Aquarium, Conservation & Legislation — International Journal of the Bioflux Society. — 2019. — Vol. 12 (4). — P. 1316–1322. — URL: http://www.bioflux.com.ro/aacl (дата обращения: 02.05.2020).

15. Romanova, E.M. Seasonal studies of caviar production and the growth rate of the African catfish (Clarias gariepinus, Burchell, 1822) / E.M. Romanova, V.N. Lyubomirova, V.V. Romanov [et al.] // The Egyptian Journal of Aquatic Research. — 2018. — Vol. 44 (4). — P. 315–319. — DOI: 10.1016/j.ejar.2018.09.005.

16. Rożyński, M. Impact of inducing general anesthesia with Propiscin (etomidate) on the physiology and health of European perch (Perca fluviatilis L.) / M. Rożyński, K. DemskaZakęś, A. Sikora [et al.] // Fish Physiology and Biochemistry. — 2018. — Vol. 44 (11). — P. 927–937. — DOI: 10.1007/s10695-018-0482-4.

17. Sanap, B.N. Post-dissection survival, conservation and reutilization of Clarias batrachus (Linnaeus, 1758) male broodstock / B.N. Sanap, R.S. Ambulkar, S.D. Kamble [et al.] // International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. — 2018. — Vol. 7 (2). — P. 2010–2017.

18. Tkacheva, I. Intravital method for the obtaining genital products from the male african catfish / I. Tkacheva, A. Kuzov, S. Polenko [et al.] // E3S Web of Conferences 210, 07011. ITSE-2020. — 2020. — P. 1–10. — DOI: 10.1051/e3sconf/202021007011.

19. Viveiros, A.T. Effects of oxytocin on semen release response in African catfish (Clarias gariepinus) / A.T. Viveros, A. Jatzkowski, J. Komen // Theriogenology. — 2003. — Vol. 59 (9). — P. 1905–1917. — DOI: 10.1016/s0093-691x(02)01290-6.

20. Weber, R.A. Efficacy of 2-phenoxyethanol, metomidate, clove oil and MS-222 as anaesthetic agents in the Senegalese sole (Solea senegalensis Kaup 1858) / R.A. Weber, J.B. Peleteiro, L.O. García Martín [et al.] // Aquaculture. — 2009. — Vol. 288. — P. 147–150. — DOI: 10.1016/j.aquaculture.2008.11.024.

1. Vlasov, V.A., Zav’jalov, A.P., Esavkin, Ju.I. Rekomendacii po vosproizvodstvu i vyrashhivaniju klarievogo soma s ispol’zovaniem ustanovok s zamknutym ciklom vodoobespechenija: instruktivno-metodicheskoe izdanie [Recommendations for the reproduction and cultivation of clary catfish using installations with a closed water supply cycle]. FGNU «Rosinformagroteh», Moscow, 2010. 48 p. (in Russian).

2. Vlasov, V.A., Zav’jalov, A.P. Vosproizvodstvo i vyrashhivanie klarievogo soma (Clarias gariepinus) v ustanovkah s zamknutym vodoobespecheniem [Reproduction and cultivation of Clarias catfish (Clarias gariepinus) in installations with closed water supply]. Zootehnija, 2014, no. 12, pp. 22–24 (in Russian).

3. Shinkarevich, E.D., Rybalova, N.B. Sposob iskusstvennogo vosproizvodstva afrikanskogo klarievogo soma (Clarias gariepinus) [Method of artificial reproduction of African catfish (Clarias gariepinus)]. Russian Federation patent no. 2683511. 2019 (in Russian).

4. Petrushin, A.B., Maslova, N.I., Vlasov, V.A., Labenec, A.V., Petrushin, V.A., Smolin, V.V., Pronina, G.I., D’jakonov, A.N. Sbornik metodik po razvedeniju i vyrashhivaniju obyknovennogo (Silurus glanis L.) i klarievogo (Clarias gariepinus) somov: Instruktivno-metodicheskoe izdanie [Collection of methods for breeding and growing common (Silurus glanis L.) and Clarias gariepinus (Clarias gariepinus) catfish]. RGAU-MSHA im. K.A. Timirjazeva, Moscow, 2012. 80 p. (in Russian).

5. Podushka, S.B. Ispol’zovanie hirurgicheskih metodov v rybovodstve [The use of surgical methods in fish farming]. In: Sostojanie i perspektivy razvitija presnovodnoj akvakul’tury: doklady Mezhdunarodnoj nauchno-prakticheskoj konferencii (Moskva, VVC, 5–6 fevralja 2013 g.) [State and prospects for the development of freshwater aquaculture: thesis of the international conference (Moscow, VVC, 5–6 feb. 2013)]. RGAU MSHA im. K.A. Timirjazeva, Moscow, 2013. Pp. 393–396 (in Russian).

6. Romanova, E.M., Ljubomirova, V.N., Romanov V.V., Muhitova M.Je. Innovacionnye podhody k polucheniju polovyh produktov afrikanskogo soma v bassejnovoj akvakul’ture [Innovative approaches to obtaining sexual products of African catfish in basin aquaculture]. Vestnik Uljanovskoj GSHA, 2017, no. 92, pp. 1–6 (in Russian).

7. Romanova, E.M., Lyubomirova, V.N., Mukhitova, M.E., Romanov, V.V., Shadyeva, L.A., Shlenkina, T.M., Galushko, I.S. Reproduktivnaja biotehnologija afrikanskogo klarievogo soma [Reproductive biotechnology of the african sharptooth catfish]. Fish beeding and Fisheries, 2017, no. 12 (143), pp. 49–57 (in Russian).

8. Shatohina, I.S., Kuznecova, V.S. Issledovanie jejakuljata: uch. posobie [Ejaculate study]. MONIKI, Moscow, 2014. 20 p. (in Russian).

9. Yarmosh, V.V., Ostrenko, A.V., Kozyr, A.V., Manoilo, T.V. Vlijanie gormonal’nyh preparatov na sozrevanie polovyh produktov klarievogo soma (Clarias gariepinus B., 1868) [The effect of hormonal drugs on the maturation of sexual products of the Clarias catfish (Clarias gariepinus B., 1868)]. Bulletin of the Polessky State University. A series of natural sciences, 2017, no. 2, pp. 99–104 (in Russian).

10. Diyaware, M.Y., Haruna, A.B., Abubakar, K.A. Determination of testes regeneration period for African catfish (Clarias anguillaris) after milt (semen) collection through ablation, Current Research Journal of Biological Sciences, 2010, vol. 2 (6), pp. 375–379.

11. Kristan, J., Stara, A., Turek, J., Policar, T., Velisek, J. Comparison of the effects of four anaesthetics on haematological and blood biochemical profiles in pikeperch (Sander lucioperca L.). Neuroendocrinology Letters, 2012, vol. 33 (3), pp. 66–71.

12. Kucharczyk, D., Kucharczyk, D.J., Nowosad, J., Omirzhanova, N. Optimization of artificial insemination outcomes of African catfish (Clarias gariepinus) with differing hatchery conditions. Animal reproduction science, 2019, vol. 211, рр. 106–222. Available from: http:// www.sciencedirect.com/science/journal/03784320 (accessed: 22.07.2020).

13. Park, I.S., Park, S., Gil, H. et al. Anesthetic effects of clove oil and lidocaine-HCl on marine medaka (Oryzias dancena). Lab Animal, 2011, vol. 40, pp. 45–51. Available from: http://www.nature.com/laban/ (accessed: 22.07.2020).

14. Pronina, G.I., Petrushin, A.B. Techniques for in vivo extraction of gonads of male European catfish (Silurus glanis) for the artificial reproduction. Aquaculture, Aquarium, Conservation & Legislation — International Journal of the Bioflux Society, 2019, vol. 12 (4), pp. 1316–1322. Available at: http://www.bioflux.com.ro/aacl (accessed: 02.05.2020).

15. Romanova, E.M., Lyubomirova, V.N., Romanov, V.V., Mukhitova, M.E., Shlenkina, T.M. Seasonal studies of caviar production and the growth rate of the African catfish (Clarias gariepinus, Burchell, 1822). The Egyptian Journal of Aquatic Research, 2018, vol. 44 (4), pp. 315–319. DOI: 10.1016/j.ejar.2018.09.005.

16. Rożyński, M., Demska-Zakęś, K., Sikora, A., Zakęś, Z. Impact of inducing general anesthesia with Propiscin (etomidate) on the physiology and health of European perch (Perca fluviatilis L.). Fish Physiology and Biochemistry, 2018, vol. 44 (11), pp. 927–937. DOI: 10.1007/ s10695-018-0482-4.

17. Sanap, B.N., Ambulkar, R.S., Kamble, S.D., Chaturvedi, C.S. Post-dissection survival, conservation and reutilization of Clarias batrachus (Linnaeus, 1758) male broodstock. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 2018, vol. 7 (2), pp. 2010–2017.

18. Tkacheva, I., Kuzov, A., Polienko, S., Polyakov, V. Intravital method for the obtaining genital products from the male african catfish. E3S Web of Conferences 210, 07011. ITSE-2020, 2020, pp. 1–10. DOI: 10.1051/e3sconf/202021007011.

19. Viveiros, A.T., Jatzkowski, A., Komen, J. Effects of oxytocin on semen release response in African catfish (Clarias gariepinus). Theriogenology, 2003, vol. 59 (9), pp. 1905–1917. DOI: 10.1016/s0093-691x(02)01290-6.

20. Weber, R.A., Peleteiro, J.B., García Martín, L.O., Aldegunde, M. Efficacy of 2-phenoxyethanol, metomidate, clove oil and MS-222 as anaesthetic agents in the Senegalese sole (Solea senegalensis Kaup 1858). Aquaculture, 2009, vol. 288, pp. 147–150. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2008.11.024.

Африканский клариевый сом Clarias gariepinus является перспективным объектом аквакультуры, так как обладает ценным мясом и высоким темпом роста. Он неприхотлив к условиям содержания, что позволяет успешно выращивать его в установках замкнутого водоснабжения (УЗВ) в условиях интенсификации [1; 12]. При выращивании в УЗВ используется искусственное воспроизводство клариевого сома.

Для гормональной стимуляции самцов и самок клариевого сома традиционно используются препараты «Нерестин» [1], «Сурфагон» [6; 7] либо суспензия карпового лиофилизированного гипофиза на физиологическом растворе [9].

За рубежом в экспериментальных целях используют препарат Ovaprim [12], представляющий собой раствор синтетического аналога гонадотропин-релизинг гормона (ГнРГ) лосося с ингибитором дофаминовых рецепторов. Иногда применяют OvaRH — лиофилизат синтетического аналога ГнРГ лосося. Таким образом, в современной практике искусственного воспроизводства африканского клариевого сома главенствующее место в гормональной стимуляции занимают синтетические препараты ГнРГ.

Был предложен способ гормональной стимуляции производителей с использованием гипофиза африканского клариевого сома (Clarias gariepinus), который позволяет произвести инъекцию один раз и сократить время овуляции икры, при этом не внося чужеродный биологический материал. Кроме того, важным элементом успешного получения личинки является обесклеивание икры. Применение для этой цели танина не представляет угрозы икре, а перемешивание икры при оплодотворении пером птицы снижает до минимума травмирование икры и предотвращает ее ожог [3].

Получение икры африканского клариевого сома после надлежащим образом выполненной гормональной стимуляции не вызывает затруднений. Однако при искусственном воспроизводстве клариевого сома существуют проблемы с отбором пригодных для использования в целях воспроизводства половых продуктов у самцов. Структура гонады сома не позволяет получить чистую сперму для оплодотворения икры путем абдоминального массажа, так как в семенных канальцах перкоидного типа имеются семенные пузырьки, препятствующие выходу спермиев [2].

Для Цитирования:
Галина Иозеповна Пронина, Алексей Александрович Пантелеев, Елена Евгеньевна Сусова, Прижизненное получение и оценка спермы самцов клариевого сома для искусственного воспроизводства. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2021;11.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: