По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 597.553.2:612.017.1(26) DOI:10.33920/sel-09-2406-06

Окислительные процессы в иммунокомпетентных органах горбуши Oncorhynchus gorbuscha и кеты Oncorhynchus keta (Salmonidae) в морской период жизни

Д.В. Микряков Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, Борок, Ярославская область, Россия, E-mail: daniil@ibiw.ru
И.И. Гордеев Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии, Москва, Россия; Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия, E-mail: daniil@ibiw.ru
С.В. Кузьмичева Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, Борок, Ярославская область, Россия, E-mail: daniil@ibiw.ru

Влияние различных факторов на организм рыб отражается в изменении метаболических процессов, в том числе в нарушении баланса окислительно-восстановительных процессов. Изучение уровня окислительных процессов и антиокислительной защиты в тканях гидробионтов часто используется в экологических и эколого-токсикологических исследованиях для оценки качества условий среды обитания. Получение таких данных при проведении комплексных ихтиологических исследований позволяет оценить особенности адаптации к различным условиям обитания, а также состояние здоровья рыб. Половозрелые особи горбуши Onchorhynchus gorbuscha и кеты O. keta были выловлены летом 2018 года в открытых водах северо-западной части Тихого океана (к востоку от Курильской гряды) при помощи разноглубинного трала в ходе траловой съемки. Сразу после вылова у рыб отбирали образцы печени, почки и селезенки. Пробирки с образцами тканей органов замораживали при температуре –20 °С. В условиях лаборатории из размороженных образцов органов готовили гомогенаты. В них был исследован уровень содержания продуктов перекисного окисления липидов и антиокислительной активности. В результате установлены межтканевые и межвидовые сходства и отличия исследуемых параметров у горбуши и кеты в морской период жизни. Обнаруженные отличия показателей предположительно связаны со структурно-функциональной организацией исследуемых тканей и органов, а также с видовыми особенностями. Полученные результаты могут быть использованы для мониторинга состояния здоровья популяции и сравнения с близкородственными видами.

Литература:

1. Андреева, Л.И. Модификация методов определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой / Л.И. Андреева, Н.А. Кожемякин, А.А. Кишкун // Лаб. дело. — 1988. — № 11. — С. 41–43.

2. Атлас пресноводных рыб России / Под ред. Ю.С. Решетникова. — М.: Наука, 2002. — Т. 1. — 379 с.

3. Барабой, В.А. Перекисное окисление и стресс / В.А. Барабой, И.И. Брехман, В.Г. Голотин, Ю.Б. Кудряшов. — СПб.: Наука, 1992. — 148 c.

4. Гордеев, И.И. Содержание иммунных комплексов и уровень окислительных процессов в крови и органах гольцов оз. Кроноцкое (п-ов Камчатка) / И.И. Гордеев, Д.В. Микряков, Н.И. Силкина, В.Р. Микряков, О.Ю. Бусарова // Arctic Environmental Research. Арктические экологические исследования. — 2017. — Т. 17, № 3. — С. 204–211.

5. Гордеев, И.И. Траловая учетная съемка тихоокеанских лососей на НИС «Профессор Кагановский» в северо-западной части Тихого океана / И.И. Гордеев, А.Н. Старовойтов, С.С. Пономарев, В.А. Шевляков, П.Г. Милованкин // Труды ВНИРО. — 2018. — № 171. — С. 198–203.

6. Гордеев, И.И. Вольный лосось: трудности прогнозирования уловов тихоокеанских лососей / И.И. Гордеев, Н.В. Кловач // Природа. — 2019. — Т. 3. — С. 22–27.

7. Грушко, М.П. Гемопоэз у осетровых рыб / М.П. Грушко, О.В. Ложниченко, Н.Н. Федорова. — Астрахань: Триада, 2009. — 190 с.

8. Зенков, Н.К. Окислительный стресс: биохимический и патофизиологический аспекты / Н.К. Зенков, В.З. Лапкин, Е.Б. Меньщикова. — М.: МАИК «Наука/Интерпериодика», 2001. — 343 с.

9. Меньшикова, Е.Б. Окислительный стресс: патологические состояния и заболевания / Е.Б. Меньшикова, Н.К. Зенков, В.З. Лапкин, И.А. Бондарь, В.А. Труфакин. — Новосибирск: АРТА, 2008. — 284 с.

10. Мишанина (Похольченко), Л.А. Тканевые белки и липиды у дикой и заводской молоди атлантического лосося Salmo salar L. Кольского полуострова: 03.01.04 Биохимия: автореф. дис. ... канд. биол. наук / Л.А. Мишанина (Похольченко); Карельская государственная педагогическая академия. — Петрозаводск, 2011. — 21 с.

11. Нефедова, З.А. Сравнительная характеристика жирно-кислотного профиля смолтов кумжи Salmo trutta L. и атлантического лосося Salmo salar L. в период смолтификации (река Индера, бассейн Белого моря) / З.А. Нефедова, С.А. Мурзина, С.Н. Пеккоева, Н.Н. Немова // Известия РАН. Серия биологическая. — 2018. — № 2. — С. 144–149.

12. Промысловые рыбы России. В 2 т. / Под ред. О.Ф. Гриценко, А.Н. Котляра, Б.Н. Котенева. — М.: ВНИРО, 2006. — Т. 1. — 656 с.

13. Семенов, В.Л. Метод определения антиокислительной активности биологического материала / В.Л. Семенов, А.М. Ярош // Укр. биохим. журн. — 1985. — Т. 57, № 3. — C. 50–52.

14. Сергеенко, Т.М. Морфофизиологическая характеристика молоди кеты (Oncorhynchus keta Walbaum) при ее воспроизводстве на лососевых рыбоводных заводах Сахалина: 03.010.10 Ихтиология: автореф. дис. ... канд. биол. наук / Т.М. Сергеенко; Сахалинский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии. — Южно-Сахалинск, 2007. — 25 с.

15. Силкина, Н.И. Сравнительный анализ некоторых показателей иммуно-биохимического статуса радужной форели Parasalmo mikyss irideus из рыбоводных хозяйств Кавказского региона / Н.И. Силкина, Т.А. Суворова // Вопросы рыболовства. — 2014. — Т. 15, № 2. — С. 344–348.

16. Солдатов, А.А. Антиоксидантный ферментный комплекс тканей двустворчатого моллюска Mytilus galloprovincialis Lam. в норме и условиях окислительного стресса (обзор) / А.А. Солдатов, О.Л. Гостюхина, И.В. Головина // Прикладная биохимия и микробиология. — 2007. — Т. 43, № 5. — С. 621–628.

17. Экотоксикологические исследования прибрежной черноморской ихтиофауны в районе Севастополя / Под ред. И.И. Рудневой. — М.: ГЕОС, 2016. — 360 с.

18. Dessen, J.-E. Sudden increased mortality in large seemingly healthy farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.) was associated with environmental and dietary changes / J.-E. Dessen, T.K. Østbye, B. Ruyter, M. Bou, M.S. Thomassen, K.-A. Rørvik // Journal of Applied Aquaculture. — 2020. — P. 1–18.

19. Gordeev, I.I. Oxidation Processes and the Content of Immune Complexes in Immunocompetent Organs of Char in the Basin of Kronotskoe Lake / I.I. Gordeev, D.V. Mikryakov, N.I. Silkina, V.R. Mikryakov, O.Yu. Busarova // Biology Bulletin. — 2021. — Vol. 48, Suppl. 3. — P. 136–140.

20. Gordeev, I.I. Some immunological parameters of the pink salmon Oncorhynchus gorbuscha and the chum salmon O. keta (Salmonidae) during the marine phase of their life cycles / I.I. Gordeev, D.V. Mikryakov, Т.А. Suvorova, S.V. Kusmicheva, A.V. German // Russian Journal of Marine Biology. — 2023. — № 49 (1). — P. 1–4.

21. Ihut A. The influence of season variation on hematological parameters and oxidative stress for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / A. Ihut, C. Raducu, C. Laţiu, D. Cocan, P. Uiuiu, Miresan V. // Bull UASVM Anim Scie Biotech. – 2018. – V. 75. – № 1. – P. 11-15. – https://doi.org/10.15835/buasvmcn-asb:003517

22. Jia Y. Growth performance, hematological and biochemical parameters, and hepatic antioxidant status of spotted knifejaw Oplegnathus punctatus in an offshore aquaculture net pen / Y. Jia, Y. Gao, Y. Gao, W. Li, C. Guan // Aquaculture. – 2021. – Vol. 541. 736761. – https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.736761.

23. Kazlauskienė, N. Physiological State of Atlantic Salmon (Salmo Salar L.) and Sea Trout ( Salmo Tutta Trutta L.) Fry Grown in the Žeimena Hatchery / N. Kazlauskienė, M.Z. Vosylienė // Acta Zoologica Lituanica. — 2012. — Vol. 14. — No. 4. — P. 48–51.

24. Mikryakov, V.R. The effect of anthropogenic pollution on the immunological and biochemical indices of the round goby Neogobius melanostomus (Pallas, 1814) (Perciformes: Gobiidae), inhabiting coastal waters of the Black sea / V.R. Mikryakov, N.I. Silkina, D.V. Mikryakov // Russian Journal of Marine Biology. — 2018. — Vol. 44. — No. 4. — P. 334–339.

25. Mikryakov, D.V. Lipid composition and oxidation processes in the blood and internal organs of the antarctic toothfish Dissostichus mawsoni Norman, 1937 (Nototheniidae) / D.V. Mikryakov, I.I. Gordeev, V.R. Mikryakov // Russian Journal of Marine Biology. — 2021. — Vol. 47. — No. 3. — P. 169–175.

26. Monira Y. Elsawy. Effect of Habitat and Water Salinity on Hematological, Biochemical, Immunological and Stress Parameters in European Eels (Anguilla anguilla) / Y. Elsawy Monira, A. Abdel-Hay, A.M. Abozeid et al. // Biology Bulletin. — 2023. — Vol. 50. — Is. 4. — P. 708-716. — https://doi. org/10.1134/S1062359023602422

27. Moniruzzaman M. Enzymatic, non enzymatic antioxidants and glucose metabolism enzymes response differently against metal stress in muscles of three fish species depending on different feeding niche / M. Moniruzzaman, S. Kumar, D. Das, A. Sarbajna, S.B. Chakraborty // Ecotoxicology and Environmental Safety. — 2020. — Vol. 202. 110954. —https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2020.110954

28. Nordgarden, U. Seasonally changing metabolism in Atlantic salmon (Salmo salar L.) II-β‐oxidation capacity and fatty acid composition in muscle tissues and plasma lipoproteins / U. Nordgarden, B.E. Torstensen, L. Frøyland, T. Hansen, G.‐I. Hemre // Aquaculture Nutrition. — 2003. — Vol. 9. — No. 5. — P. 295–303.

29. Sandnes, K. Normal ranges of some blood chemistry parameters in adult farmed Atlantic salmon, Salmo salar / K. Sandnes, Ø. Lie, R. Waagbø // Journal of fish biology. — 1988. — V. 32. — Is. 1. — P. 129–136.

30. Torstensen, B.E. A factorial experimental design for investigation of effects of dietary lipid content and pro and antioxidants on lipid composition in Atlantic salmon (Salmo salar) tissues and lipoproteins / B.E. Torstensen, Ø. Lie, K. Hamre // Aquaculture Nutrition. — 2008. — V. 7. — Is. 4. — P. 265–276.

31. Van Muiswinkel, W. The immune system of fish / W. Van Muiswinkel, B. Vervoorn-Van Der Wal // Fish Diseases Disorders. — 2006. — V. 1. — P. 678–701.

32. Winston, G.W. Oxidants and antioxidants in aquatic animals / G.W. Winston // Compar. biochem. and Physiol. — 1991. — V. 100. — № 1–2. — P. 173–176.

33. Xina, Yu. Lipidomics study of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and salmons (Oncorhynchus tshawytscha and Salmo salar) using hydrophilic interaction chromatography and mass spectrometry / Yu Xina, Li Linqiu, Wang Honghai, Song Gongshuai, Wang Jie, Li Shiyan, Wang Yang, Shen Qing. — 2019. — LWT. 10.1016/j.lwt.2019.108988 (108988).

34. Zapata, A.G. Cells and tissues of the immune system of fish / A.G. Zapata, A. Chiba, A. Varas. — London: Acad. Press, 1996. — P. 1–62.

1. Andreeva, L.I., Kozhemyakin, N.A., Kishkun, A.A. Modification of methods for determining lipid peroxides in the thiobarbituric acid test. Lab. delo, 1988, no. 11, pp. 41–43 (in Russian).

2. Atlas of freshwater fishes of Russia. Ed. Yu.S. Reshetnikov. Moscow, 2002. V. 1. 379 р. (in Russian).

3. Baraboy, V.A. Perekisnoe okislenie i stress [Peroxidation and stress]. Saint Petersburg, 1992. 148 p. (in Russian).

4. Gordeev, I.I., Mikryakov, D.V., Silkina, N.I., Mikryakov, V.R., Busarova, O.Yu. The content of immune complexes and the level of oxidative processes in the blood and organs of lake char. Kronotskoye (Kamchatka Peninsula). Arctic Environmental Research, 2017, no. 3 (17), pp. 204–211 (in Russian).

5. Gordeev, I.I., Starovoitov, A.N., Ponomarev, S.S., Shevlyakov, V.A., Milovankin, P.G. Trawl survey of Pacific salmon on the research vessel Professor Kaganovsky in the northwestern part of the Pacific Ocean. Trudy VNIRO, 2018, no. 171, pp. 198–203 (in Russian).

6. Gordeev, I.I., Klovach, N.V. Free salmon: difficulties in predicting catches of Pacific salmon. Priroda, 2019, vol. 3, pp. 22–27 (in Russian).

7. Grushko, M.P., Lozhnichenko, O.V., Fedorov, N.N. Gemopojez u osetrovyh ryb [Hematopoiesis in sturgeon fishes]. Astrakhan, 2009. 190 p. (in Russian).

8. Zenkov, N.K., Lapkin, V.Z., Menshchikova, E.B. Okislitel’nyi stress: biokhimicheskii i patofiziologicheskii aspekty [Oxidative stress: biochemical and pathophysiological aspects]. Moscow, 2001. 343 p. (in Russian).

9. Menshikova, E.B., Zenkov, N.K., Lapkin, V.Z., Bondar, I.A., Trufakin, V.A. Okislitel’nyi stress: patologicheskie sostoyaniya i zabolevaniya [Oxidative stress: pathological conditions and diseases]. Novosibirsk, 2008. 284 p. (in Russian).

10. Myshanina (Poholchenko), L.A. Tkanevye belki i lipidy u dikoi i zavodskoi molodi atlanticheskogo lososya Salmo salar L. Kol’skogo poluostrova [Tissue proteins and lipids in wild and hatchery juveniles of Atlantic salmon Salmo salar L. from the Kola Peninsula]. Abstr. Cand. Boilogi. Sci. diss 2011. 21 p. (in Russian).

11. Nefedova, Z.A., Murzina, S.A., Pekkoeva, S.N., Nemova, N.N. Comparative characteristics of the fatty acid profile of smolts of brown trout Salmo trutta L. and Atlantic salmon Salmo salar L. during the period of smoltification (Indera River, White Sea basin). Izvestiya RAN. Seriya biologicheskaya, 2018, no. 2, pp. 144–149 (in Russian).

12. Commercial fish of Russia. Ed. O.F. Gritsenko, A.N. Kotlyar, B.N. Kotenev. Moscow, 2006, vol. 1. 656 р. (in Russian).

13. Semenov, V.L., Yarosh, A.M. Method for determining the antioxidant activity of biological material. Ukr. biokhim. zhurn, 1985, no. 3 (57), pp. 50–52 (in Russian).

14. Sergeenko, T.M. Morfofiziologicheskaya kharakteristika molodi kety (Oncorhynchus keta Walbaum) pri ee vosproizvodstve na lososevykh rybovodnykh zavodakh Sakhalina [Morphophysiological characteristics of juvenile chum salmon (Oncorhynchus keta Walbaum) during its reproduction in salmon hatcheries of Sakhalin]. Abstr. Cand. Boilogi. Sci. diss. 2007. 25 p. (in Russian).

15. Silkina, N.I., Suvorova, T.A. Comparative analysis of some indicators of the immuno-biochemical status of rainbow trout Parasalmo mikyss irideus from fish farms in the Caucasus region. Voprosy rybolovstva, 2014, no. 2 (15), pp. 344–348 (in Russian).

16. Soldatov, A.A., Gostyukhina, O.L., Golovina, I.V. Antioxidant enzyme complex of tissues of the bivalve mollusk Mytilus galloprovincialis Lam. in normal conditions and under oxidative stress conditions (review). Prikladnaya biokhimiya i mikrobiologiya, 2007, no. 5 (43), pp. 621–628 (in Russian).

17. Ehkotoksikologicheskie issledovaniya pribrezhnoi chernomorskoi ikhtiofauny v raione Sevastopolya [Ecotoxicological studies of coastal Black Sea ichthyofauna in the Sevastopol region]. Pod red. I.I. Rudnevoi. Moscow, 2016. 360 р. (in Russian).

18. Dessen, J.-E., Østbye, T.K., Ruyter, B., Bou, M., Thomassen, M.S., Rørvik, K.-A. Sudden increased mortality in large seemingly healthy farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.) was associated with environmental and dietary changes. Journal of Applied Aquaculture, 2020, pp. 1–18.

19. Gordeev, I.I., Mikryakov, D.V., Silkina, N.I., Mikryakov, V.R., Busarova, O.Yu. Oxidation Processes and the Content of Immune Complexes in Immunocompetent Organs of Char in the Basin of Kronotskoe Lake. Biology Bulletin. 2021, vol. 48, suppl. 3, pp. 136–140.

20. Gordeev, I.I., Mikryakov, D.V., Suvorova, Т.А., Kusmicheva, S.V., German, A.V. Some immunological parameters of the pink salmon Oncorhynchus gorbuscha and the chum salmon O. keta (Salmonidae) during the marine phase of their life cycles. Russian Journal of Marine Biology, 2023, no. 49 (1), pp. 1–4.

21. Ihut, A., Raducu, C., Laţiu, C., Cocan, D., Uiuiu, P., Miresan, V. The influence of season variation on hematological parameters and oxidative stress for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Bull UASVM Anim Scie Biotech. 2018, vol. 75, no. 1, pp. 11-15. https://doi.org/10.15835/buasvmcn-asb:003517

22. Jia, Y., Gao, Y., Li W., Guan, C. Growth performance, hematological and biochemical parameters, and hepatic antioxidant status of spotted knifejaw Oplegnathus punctatus in an offshore aquaculture net pen. Aquaculture. 2021, vol. 541, 736761. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.736761.

23. Kazlauskienė, N., Vosylienė, M.Z. Physiological State of Atlantic Salmon (Salmo salar L.) and Sea Trout (Salmo tutta trutta L.) Fry Grown in the Žeimena Hatchery. Acta Zoologica Lituanica, 2012, no. 4 (14), pp. 48–51.

24. Mikryakov, V.R., Silkina, N.I., Mikryakov, D.V. The effect of anthropogenic pollution on the immunological and biochemical indices of the round goby Neogobius melanostomus (Pallas, 1814) (Perciformes: Gobiidae), inhabiting coastal waters of the Black sea. Russian Journal of Marine Biology, 2018, no. 4 (44), pp. 334–339.

25. Mikryakov, D.V., Gordeev, I.I., Mikryakov, V.R. Lipid composition and oxidation processes in the blood and internal organs of the antarctic toothfish Dissostichus mawsoni Norman, 1937 (Nototheniidae). Russian Journal of Marine Biology, 2021, no. 3 (47), pp. 169–175.

26. Monira, Y. Elsawy, Abdel-Hay, AH.M., Abozeid, A.M. et al. Effect of Habitat and Water Salinity on Hematological, Biochemical, Immunological and Stress Parameters in European Eels (Anguilla Anguilla). Biology Bulletin. 2023, vol. 50, is. 4, pp. 708-716. https://doi.org/10.1134/S1062359023602422

27. Moniruzzaman, M., Kumar, S., Das, D., Sarbajna, A., Chakraborty, S.B. Enzymatic, non enzymatic antioxidants and glucose metabolism enzymes response differently against metal stress in muscles of three fish species depending on different feeding niche. Ecotoxicology and Environmental Safety. 2020, vol. 202, 110954. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2020.110954

28. Nordgarden, U., Torstensen, B.E., Frøyland, L., Hansen, T., Hemre, G.‐I. Seasonally changing metabolism in Atlantic salmon (Salmo salar L.) II-β‐oxidation capacity and fatty acid composition in muscle tissues and plasma lipoproteins. Aquaculture Nutrition, 2003, no. 5 (9), pp. 295–303.

29. Sandnes, K., Lie, Ø., Waagbø, R. Normal ranges of some blood chemistry parameters in adult farmed Atlantic salmon, Salmo salar. Journal of fish biology, 1988, vol. 32, Is. 1, pp. 129–136.

30. Torstensen, B.E., Lie, Ø, Hamre, K.A. factorial experimental design for investigation of effects of dietary lipid content and pro and antioxidants on lipid composition in Atlantic salmon (Salmo salar) tissues and lipoproteins. Aquaculture Nutrition, 2008, vol. 7, Is. 4, pp. 265–276.

31. Van Muiswinkel, W., Vervoorn-Van Der Wal, B. The immune system of fish. Fish Diseases Disorders, 2006, v. 1, pp. 678–701.

32. Winston, G.W. Oxidants and antioxidants in aquatic animals. Compar. biochem. and Physiol., 1991, no. 1–2 (100), pp. 173–176.

33. Xina Yu, Linqiu Li, Honghai Wang, Gongshuai Song, Jie Wang, Shiyan Li, Yang Wang, Qing Shen. Lipidomics study of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and salmons (Oncorhynchus tshawytscha and Salmo salar) using hydrophilic interaction chromatography and mass spectrometry, 2019, LWT. 10.1016/j.lwt.2019.108988, (108988).

34. Zapata, A.G., Chiba, A., Varas, A. Cells and tissues of the immune system of fish. London, 1996, pp. 1–62.

Горбуша Oncorhynchus gorbuscha (Walbaum, 1792) и кета Oncorhynchus keta Walbaum, 1792 — наиболее распространенные представители сем. Salmonidae (Salmoniformes) и одни из основных объектов промысла в северной части Тихого океана. Лососи, как и другие анадромные рыбы, имеют сложный жизненный цикл, сопряженный со сменой среды обитания. После нереста в ручьях, реках и озерах они скатываются в море и нагуливаются в океанических водах северной части Тихого океана. При этом горбуша и кета значительно отличаются друг от друга по продолжительности жизненного цикла и времени, проведенном в океане. Кета проводит в море от двух до пяти лет, в то время как горбуша относится к короткоцикловым видам и совершает преднерестовую миграцию к устьям рек на следующий год после ската молоди [2; 6; 12].

Влияние различных факторов на организм рыб отражается в изменении метаболических процессов, в том числе нарушении баланса окислительно-восстановительных процессов. Повышение уровня перекисного окисления липидов и снижение активности антиоксидантной защиты тканей — один из чувствительных индикаторов воздействия негативных стресс-факторов. Сопровождается активацией процессов окислительного стресса и, как следствие, избыточным накоплением активных форм кислорода (АФК) — супероксидный и гидроксильный радикалы, синглетный кислород, пероксиды и многие другие соединения. Это становится причиной разрушения сульфгидрильных антиоксидантов, модификации липидного слоя клеточных мембран, что негативно влияет на жизнедеятельность клеток, темп роста, развития целостного организма. Во всех клетках живого организма постоянно в небольших количествах образуются АФК. Они участвуют в процессах клеточного метаболизма, и их негативное влияние на клетки нейтрализуется ферментными и неферментными антиоксидантами или антиоксидантным ферментным комплексом [3; 8; 9; 16; 32].

Исследования по изучению влияния уровня окислительных процессов и антиокислительной защиты в тканях гидробионтов часто используются в качестве биомаркеров в экологических и эколого-токсикологических исследованиях для оценки качества условий среды обитания [17; 21; 22; 26; 27]. Получение таких данных при проведении комплексных ихтиологических исследований позволяет оценить особенности адаптации к различным условиям обитания и состояние здоровья рыб. Наиболее часто эти показатели у лососевых видов исследуются на рыбоводных заводах: производители и молодь в ранние периоды онтогенеза до ската в море. В частности, были исследованы фракционный белковый и липидный состав различных тканей и органов [10; 11; 30; 33], сезонные изменения метаболизма [28] и другие физиологические особенности [14; 23]. Однако практически отсутствуют аналогичные данные во время морского периода жизни. Биохимические исследования проводят на лососях, выращиваемых в сетчатых загонах в морских условиях [18; 29], однако практически отсутствуют аналогичные данные во время морского периода жизни, за исключением работ авторов [20].

Для Цитирования:
Д.В. Микряков, И.И. Гордеев, С.В. Кузьмичева, Окислительные процессы в иммунокомпетентных органах горбуши Oncorhynchus gorbuscha и кеты Oncorhynchus keta (Salmonidae) в морской период жизни. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2024;6.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: