По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 591.111.1:595.384.2 DOI:10.33920/sel-09-2412-05

Морфологическая характеристика гемоцитов и гемограмма камчатского краба

Д.В. Артеменков Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии (ФГБНУ «ВНИРО»), Россия, Москва
Г.И. Пронина Российский государственный аграрный университет — Московская сельскохозяйственная академия им. К.А. Тимирязева, Россия, Москва
О.В. Саная Российский государственный аграрный университет — Московская сельскохозяйственная академия им. К.А. Тимирязева, Россия, Москва
Т.А. Карасева Полярный филиал ФГБНУ «ВНИРО» (ПИНРО им. Н.М. Книповича), Россия, Мурманск
Л.К. Буданова Полярный филиал ФГБНУ «ВНИРО» (ПИНРО им. Н.М. Книповича), Россия, Мурманск
А.А. Бессонов Полярный филиал ФГБНУ «ВНИРО» (ПИНРО им. Н.М. Книповича), Россия, Мурманск
Н.Н. Лукин Полярный филиал ФГБНУ «ВНИРО» (ПИНРО им. Н.М. Книповича), Россия, Мурманск
Д.О. Сологуб Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии (ФГБНУ «ВНИРО»), Россия, Москва

На основании материалов научно-исследовательских работ в июле-августе 2023 года на борту НИС «Профессор Бойко» в Баренцевом море представлены параметры гемолимфы камчатского краба Paralithodes camtschaticus. У свежевыловленных 9 экз. крабов осуществляли взятие проб гемолимфы из сердца, далее сразу изготавливали препараты в камере Горяева, подсчитывали гемоциты во всех больших квадратах камеры Горяева. Среди клеток гемолимфы были отмечены агранулоциты, полугранулоциты, гранулоциты и прозрачные клетки, что в целом сходно с представлениями о гемолимфе ракообразных. Размеры и морфологические характеристики клеток гемоцитарного ряда камчатского краба схожи с таковыми у других видов беспозвоночных, таких как Fenneropenaeus chinensis, Paranephrops planifrons, Hyas araneus, Homarus americanus, Panulirus interruptus, Loxorhynchus grandi, Astacus astacus, Astacus leptodactylus. Доминирующим типом в гемолимфе являются агранулоциты, их доля в среднем по изученным стадиям линьки составляет 42,1±5,4%. Доля полугранулоцитов и гранулоцитов составляет 32,2±3,1 и 22,8±3,9% соответственно, а доля прозрачных клеток — 2,9±0,6% от всех клеточных элементов в гемолимфе. Процентные доли гемоцитов в гемолимфе на разных стадиях линочного цикла самцов камчатского краба различались, но не значимо при р > 0,05. Общее число гемоцитов колеблется в широком диапазоне от 1719 до 11250 шт./мкл, среднее количество клеток составляет 4,2±1,1 ×10⁹ шт./л. Различия в ОЧГ в гемолимфе на разных стадиях линочного цикла самцов камчатского краба также были статистически недостоверны (р > 0,05).

Литература:

1. Аджиев, Д.Д. Функциональные показатели пойкилотермных гидробионтов из природных и искусственных водных биоценозов / Д.Д. Аджиев, Г.И. Пронина, А.А. Иванов, Н.Ю. Корягина // Сельскохоз. биол. — 2018. — T. 53, № 2. — С. 337–347.

2. Александрова, E.H. Прижизненное определение физиологического статуса десятиногих ракообразных (Сrustacea: Decapoda) по гематологическим показателям / E.H. Александрова, Н.П. Ковачева // Успехи физиологических наук. — 2010. — Т. 41, № 2. — С. 51–67.

3. Иванов, А.А. Физиология гидробионтов / А.А. Иванов, Г.И. Пронина, Н.Ю. Корягина. — СПб.: Лань, 2021. — 480 c.

4. Иванова, Н.Т. Атлас клеток крови рыб (сравнительная морфология и классификация форменных элементов крови рыб) / Н.Т. Иванова — М.: Лег. пром-сть, 1982. — 184 с.

5. Лагуткина, Л.Ю. Гематологические и биохимические показатели гемолимфы австралийского красноклешневого рака / Л.Ю. Лагуткина, Е.М. Евграфова, Е.Г. Кузьмина, А.М. Мазлов // Вестн. Астраханск. гос. техн. универ. Серия: Рыбное хозяйство. — 2021. — № 2. — С. 134–143. — DOI: 10.24143/2073-5529-2021-2-134-143.

6. Пронина, Г.И. Референсные значения физиолого-иммунологических показателей гидробионтов разных видов / Г.И. Пронина, Н.Ю. Корягина // Вестн. Астраханск. гос. техн. универ. Серия: Рыбное хозяйство. — 2015. — № 4. — С. 103–108.

7. Скафарь, Д.Н. Методика подсчета общего числа гемоцитов австралийского красноклешневого рака / Д.Н. Скафарь, Д.В. Шумейко // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. — 2023. — № 1. — С. 105–111. — DOI: 10.24143/20735529-2023-1-105-111.

8. Gerdol, M. Immunity in molluscs: recognition and effector mechanisms, with a focus on bivalvia / M. Gerdol, M. Gomez-Chiarri, M.G. Castillo, A. Figueras et al. // Vasta — Advances in comparative immunology. — Cham: Springer, 2018. — Р. 225–341.

9. Hijran, Y.Y. Haemocyte Classification and Differential Counts in the Freshwater Crab, Potamon fluviatilis / Y.Y. Hijran, H.A. Hasan // Tukr. J. Vet. Anim. Sci. — 2002. — V. 26. — P. 403–406.

10. Hose, J.E. A decapod hemocyte classification scheme integrating morphology, Cytochemistry, and Function / J.E. Hose, G.G. Martin, A.S. Gerard // Biol. Bull. — 1990. — Vol. 178. — № 1. — P. 33–

45. — DOI: 10.2307/1541535.

11. Li, C. Primary culture of hemocytes from the Caribbean spiny lobster, Panulirus argus, and their susceptibility to Panulirus argus Virus 1 (PaV1) / C. Li, J.D. Shields // J. Invertebr. Pathol. — 2007. — Vol. 94 — № 1. — P. 48–55. — DOI: 10.1016/j.jip.2006.08.011.

12. Li, F. Crayfish hemocytes develop along the granular cell lineage / F. Li, Z. Zheng, H. Li, R. Fu, L. Xu, F. Yang // Sci. Rep. — 2021. — Vol. 11. — № 1. — 13099. — DOI: 10.1038/s41598-021-92473-9.

13. Lv, S.S. Classification and phagocytosis of circulating haemocytes in Chinese mitten crab (Eriocheir sinensis) and the effect of extrinsic stimulation on circulating haemocytes in vivo / S.S. Lv, J.J. Xu, J.J. Zhao, N.N. Yin, Lu B. Binjie, S.S. Li, Y.Y. Chen, H.H. Xu // Fish & Shellfish Immunol. — 2014. — Vol. 39. — № 2. — P. 415–422. — DOI: 10.1016/j.fsi.2014.05.036.

14. Martin, G.G. Fine structure and classification of shrimp hemocytes / G.G. Martin, B.L. Graves // J. Morphol. — 1985. — Vol. 185. — P. 339–348. — DOI: 10.1002/jmor.1051850306.

15. Mix, M.C. Hemocyte classification and differential counts in the dungeness crab, Cancer magister / M.C. Mix, A.K. Sparks // J. Invertebr. Pathol. — 1980. — Vol. 35. — № 2. — P. 134–143. — DOI: 10.1016/0022-2011(80)90176-7.

16. Odintsova, N.A. Experimental infection of king crab hemocytes with a Herpes-like virus in culture / N.A. Odintsova, M.G. Eliseikina, T.V. Ryazanova // Russian Journal of Marine Biology. — 2015. — Vol.

41. — № 5. — P. 401–404. — DOI: 10.1134/S1063074015050107.

17. Roulston, C. Isolation and in vitro characterization of prohaemocytes from the spider crab, Hyas araneus (L.) / C. Roulston, V.J. Smith // Devel. Comparat. Immunol. — 2011. — Vol. 35. — № 5. — P. 537–544. — DOI: 10.1016/j.dci.2010.12.012.

18. Travers, M.A. Morphologic, cytometric and functional characterisation of abalone (Haliotis tuberculata) haemocytes / M.A. Travers, P.M. Da Silva, N. Le Goïc, D. Marie, A. Donval, S. Huchette, M. Koken, C. Paillard // Fish & Shellfish Immunology. — 2008. — V. 24. — № 4. — P. 400–411.

19. Tsing, A. Hemocytes of Penaeid and Palaemonid shrimps: Morphology, cytochemistry, and hemograms / A. Tsing, J-M. Arcier, M. Brehelin // J. Invertebr. Pathol. — 1989. — Vol. 53. — № 1. — P. 64–77. — DOI: 10.1016/0022-2011(89)90075-x.

20. Zhang, Z.F. Classification of haematopoietic cells and haemocytes in Chinese prawn Fenneropenaeus chinensis / Z.F. Zhang, M. Shao, K.H. Kang // Fish & Shellfish Immunol. — 2006. — Vol. 21. — P. 159–169. — DOI: 10.1016/j.fsi.2005.11.003.

1. Adzhiev, D.D., Pronina, G.I., Ivanov, A.A., Koryagina, N.Y. Functional indices of poikilothermic hydrobionts from natural and artificial aquatic biocenoses. Selskohoz. Boil., 2018, vol. 53, no. 2, pp. 337–347 (in Russian).

2. Alexandrova, E.H., Kovacheva, N.P. Lifetime determination of physiological status of decapod crustaceans (Crustacea: Decapoda) by haematological indices. Uspekhi physiological sciences, 2010, vol. 41, no. 2, pp. 51–67 (in Russian).

3. Ivanov, A.A., Pronina, G.I., Koryagina, N.Y. Physiology of hydrobionts. Lan, Sankt Peterburg, 2021. 480 p. (in Russian).

4. Ivanova, N.T. Atlas of fish blood cells (comparative morphology and classification of fish blood formed elements). Leg. prom-st, Moscow, 1982. 184 p. (in Russian).

5. Lagutkina, L.Y., Evgrafova, E.M., Kuzmina, E.G., Mazlov, A.M. Haematological and biochemical indices of haemolymph of Australian red-clawed crayfish. Vestn. Astrakhansk. Astrakhansk State Technical University. Series: Fishery, 2021, no. 2, pp. 134–143 (in Russian). DOI: 10.24143/2073-5529-2021-2-134-143.

6. Pronina, G.I., Koryagina, N.Yu. Reference values of physiological and immunological indicators of hydrobionts of different species. Vestn. Astrakhansk. Astrakhansk State Technical University. Series: Fishery, 2015, no. 4, pp. 103–108 (in Russian).

7. Skafar, D.N., Shumeiko, D.V. Methodology of counting the total number of haemocytes of Australian red-clawed crayfish. Bulletin of Astrakhan State Technical University. Series: Fishery, 2023, no. 1, pp. 105–111 (in Russian). DOI: 10.24143/2073-5529-2023-1-105-111.

8. Gerdol, M., Gomez-Chiarri, M., Castillo, M.G., Figueras, A., Fiorito, G., Moreira, R., Novoa, B., Pallavicini, A., Ponte, G., Roumbedakis, K., Venier, P., Vasta, G.R. Immunity in molluscs: recognition and effector mechanisms, with a focus on bivalvia. Advances in comparative immunology. Cham: Springer, 2018, pp. 225–341.

9. Hijran, Y.Y., Hasan, H.A. Haemocyte Classification and Differential Counts in the Freshwater Crab, Potamon fluviatilis. Tukr. J. Vet. Anim. Sci., 2002, vol. 26, pp. 403–406.

10. Hose, J.E., Martin, G.G., Gerard, A.S. A decapod hemocyte classification scheme integrating morphology, Cytochemistry, and Function. Biol. Bull., 1990, vol. 178, no. 1, pp. 33–45. DOI: 10.2307/1541535.

11. Li, C., Shields, J.D. Primary culture of hemocytes from the Caribbean spiny lobster, Panulirus argus, and their susceptibility to Panulirus argus Virus 1 (PaV1). J. Invertebr. Pathol., 2007, vol. 94, no. 1, pp. 48–55. DOI: 10.1016/j.jip.2006.08.011.

12. Li, F., Zheng, Z., Li, H., Fu, R., Xu, L., Yang, F. Crayfish hemocytes develop along the granular cell lineage. Sci. Rep., 2021, vol. 11, no. 1, 13099. DOI: 10.1038/s41598-021-92473-9.

13. Lv, S.S., Xu, J.J., Zhao, J.J., Yin, N.N., Binjie, Lu B., Li, S.S., Chen, Y.Y., Xu, H.H. Classification and phagocytosis of circulating haemocytes in Chinese mitten crab (Eriocheir sinensis) and the effect of extrinsic stimulation on circulating haemocytes in vivo. Fish & Shellfish Immunol., 2014, vol. 39, no. 2, pp. 415–422. DOI: 10.1016/j.fsi.2014.05.036.

14. Martin, G.G., Graves, B.L. Fine structure and classification of shrimp hemocytes. J. Morphol., 1985, vol. 185, pp. 339–348. DOI: 10.1002/jmor.1051850306.

15. Mix, M.C., Sparks, A.K. Hemocyte classification and differential counts in the dungeness crab, Cancer magister. J. Invertebr. Pathol., 1980, vol. 35, no. 2, pp. 134–143. DOI: 10.1016/0022-2011(80)90176-7.

16. Odintsova, N.A., Eliseikina, M.G., Ryazanova, T.V. Experimental infection of king crab hemocytes with a Herpes-like virus in culture. Russian Journal of Marine Biology, 2015, vol. 41, no. 5, pp. 401–404. DOI: 10.1134/S1063074015050107.

17. Roulston, C., Smith, V.J. Isolation and in vitro characterization of prohaemocytes from the spider crab, Hyas araneus (L.). Devel. Comparat. Immunol., 2011, vol. 35, no. 5, pp. 537–544. DOI: 10.1016/j. dci.2010.12.012.

18. Travers, M.A., Da Silva, P.M., Goïc, N. Le, Marie, D., Donval, A., Huchette, S., Koken, M., Paillard, C. Morphologic, cytometric and functional characterisation of abalone (Haliotis tuberculata) haemocytes. Fish & Shellfish Immunology, 2008, v. 24, no. 4, pp. 400–411.

19. Tsing, A., Arcier, J.-M., Brehelin, M. Hemocytes of Penaeid and Palaemonid shrimps: Morphology, cytochemistry, and hemograms. J. Invertebr. Pathol., 1989, vol. 53, no. 1, pp. 64–77. DOI: 10.1016/00222011(89)90075-x.

20. Zhang, Z.F., Shao, M., Kang, K.H. Classification of haematopoietic cells and haemocytes in Chinese prawn Fenneropenaeus chinensis. Fish & Shellfish Immunol, 2006, vol. 21, pp. 159–169. DOI: 10.1016/j. fsi.2005.11.003.

Исследования промыслово значимых видов ракообразных являются перспективным направлением, поскольку оценка состояния здоровья популяций этих гидробионтов имеет важное значение. Анализ циркулирующей жидкости, гемолимфы, позволяет получить наиболее полное представление о физиологическом состоянии ракообразного [2]. Такие исследования обычно проводятся с использованием комплекса показателей, включая метод световой микроскопии [8; 18]. Особое внимание уделяется изучению защитных реакций организма, что особенно важно для коммерческих видов. Эпизоотии с высоким уровнем смертности среди ракообразных подчеркивают необходимость постоянного мониторинга состояния здоровья популяций для сохранения их численности и биологического разнообразия. Н.А. Одинцова с соавторами [16] отмечают более 30 различных вирусов, обнаруженных у крабов, которые предположительно являются причиной их гибели.

В течение последних нескольких десятилетий активно исследуются гемоциты представителей семейства Decapoda. Для ряда видов ракообразных, представляющих интерес для аквакультуры и промысла, были проведены классификации и характеристики гемоцитов на основе их морфологических и цитохимических особенностей, а также молекулярных свойств. Кроме того, были определены общее количество гемоцитов и процентное соотношение различных типов клеток в гемолимфе у прибрежных и пресноводных крабов и креветок [9–11; 13–15; 17; 19; 20]. Гемоциты беспозвоночных разнообразны. Их количество и модификации могут существенно меняться в зависимости от условий окружающей среды и физиологического статуса животного. Не сложилось однородной и удовлетворительной системы классификации форменных элементов гемолимфы. Это связано с противоречиями при определении критериев классификации. С функциональной точки зрения различают стволовые клетки, фагоцитирующие клетки, гемостатически активные клетки и трофические клетки. Выявлены сезонные изменения основных характеристик популяции клеток гемолимфы — концентрация гемоцитов и соотношение клеток различных морфотипов. Для понимания роли и функций гемоцитов у камчатского краба необходима их точная классификация, основанная на морфологических признаках.

Для Цитирования:
Д.В. Артеменков, Г.И. Пронина, О.В. Саная, Т.А. Карасева, Л.К. Буданова, А.А. Бессонов, Н.Н. Лукин, Д.О. Сологуб, Морфологическая характеристика гемоцитов и гемограмма камчатского краба. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2024;12.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: