По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 577, 616.89 DOI:10.33920/med-01-2511-08

Линия мышей, несущих мутацию P654L (rs139336954) в белке морфогенеза нервной ткани Plxna3, проявляет симптомы обсессивно-компульсивного расстройства личности

Карагяур Максим Николаевич д-р биол. наук, доцент кафедры биохимии и регенеративной биомедицины, старший научный сотрудник Центра регенеративной медицины, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0000-0003-4289-3428, e-mail: m.karagyaur@mail.ru
Аверина Ольга Александровна канд. хим. наук, ведущий научный сотрудник, НИИ физико-химической биологии имени А. Н. Белозерского, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, IRID: 8768387, ORCID: 0000‑0002‑8244‑526X
Бозов Кирилл Дмитриевич аспирант кафедры биохимии и регенеративной биомедицины, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0009-0006-8442-8582
Джауари Сталик Станиславович канд. биол. наук, тьютор кафедры биохимии и регенеративной биомедицины, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0000-0001-5480-2322
Приймак Анастасия Владимировна ведущий инженер, НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, лаборант-исследователь кафедры биохимии и регенеративной биомедицины, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, IRID: 636121456
Пермяков Олег Александрович инженер 2 категории, НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, WoSResearcher ID: AAT 7369–2021, IRID: 31972943
Григорьева Ольга Олеговна канд. биол. наук, младший научный сотрудник, НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, IRID: 257639733
Илларионова Мария Евгеньевна лаборант-исследователь кафедры биохимии и регенеративной биомедицины, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0009-0006-2483-2137
Шкарина Лилия Николаевна соискатель кафедры биохимии и регенеративной биомедицины, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0009-0005-1774-3534
Примак Александра Леонидовна лаборант-исследователь кафедры биохимии и регенеративной биомедицины, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0000-0002-1386-5922
Хайбуллина Раушана Тимуровна студент факультета фундаментальной медицины, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва
Семина Екатерина Владимировна д-р биол. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории морфогенеза и репарации тканей, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0000-0002-3927-9286
Климович Полина Сергеевна канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории морфогенеза и репарации тканей, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0000-0002-8260-5542
Самоходская Лариса Михайловна канд. мед. наук., заведующий отделом лабораторной диагностики, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0000-0001-6734-3989
Сергиев Петр Владимирович д-р хим. наук, член-корреспондент РАН, директор, НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, IRID: 389331, Researcher ID: D-7493-2012, Scopus Author ID: 7004499861
Попов Владимир Сергеевич канд. биол. наук, заведующий научно-исследовательской лабораторией трансляционной медицины, Медицинский научно-образовательный, институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0000-0002-5039-7152
Нейфельд Елена Арсланалиевна канд. мед. наук, главный врач, ФГБНУ «Научный центр психического здоровья», доцент кафедры многопрофильной клинической подготовки, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0000-0003-2647-1284
Цыганков Борис Дмитриевич д-р мед. наук, член-корреспондент РАН, заведующий кафедрой, ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России, профессор кафедры многопрофильной клинической подготовки, Медицинский научно-образовательный институт, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0000-0003-0180-1267
Ткачук Всеволод Арсеньевич д-р биол. наук, академик РАН, директор Медицинского научно-образовательного института, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова», г. Москва, ORCID: 0000-0002-7492-747X

Генетические технологии открывают возможность к изучению молекулярных основ широкого спектра наследственных патологий, в том числе заболеваний психической сферы. Моделирование геномных вариантов в клеточных и животных моделях позволяет устанавливать их функциональную значимость и потенциальные механизмы вовлеченности в развитие патологии, а также закладывает материальную основу для разработки и тестирования перспективных лекарственных препаратов. В данном исследовании нами была впервые создана линия мышей, несущих мутацию P654L (rs139336954) в белке морфогенеза нервной ткани Plxna3, и были изучены их когнитивные и поведенческие особенности. Белок Plxna3 вместе с ко-рецептором Nrp1/Nrp2 детектирует сигналы репеллентных молекул Sema3a и Sema3f и определяет направление миграции клеток и роста нервных волокон, что особенно критично для правильного развития тонко настроенной нервной системы. Согласно биоинформатическим расчетам, данная мутация изменяет структуру внеклеточного домена Plxna3, что потенциально может нарушать рецепцию Sema3a и Sema3f. Исследования поведения мышей, несущих мутацию P654L (rs139336954), позволили установить у них повышенную тревожность, высокую степень стремления к порядку, а также сниженную чувствительность к внешним стимулам, что потенциально можно интерпретировать как симптомы обсессивно-компульсивного расстройства личности. Заметных макроскопических и гистологических различий в строении мозга между контрольной и экспериментальной группами зафиксировано не было. В данной работе мы впервые обращаем внимание на геномный вариант rs139336954 в гене Plxna3 как потенциальную причину развития обсессивно-компульсивного расстройства личности и предлагаем генетически модифицированную линию мышей, несущих данный генетический вариант, в качестве модельного объекта для изучения патогенеза данного заболевания.

Литература:

1. Fullana M. A., et al. Obsessions and compulsions in the community: prevalence, interference, help-seeking, developmental stability, and co-occurring psychiatric conditions. Am J Psychiatry. 2009; 166 (3): 329–336. doi: 10.1176/appi.ajp.2008.08071006

2. Kessler R. C., et al. Prevalence, severity, and comorbidity of 12‑month DSM–IV disorders in the National Comorbidity Survey Replication. Arch Gen Psychiatry. 2005; 62 (6): 617–627. doi: 10.1001/archpsyc.62.6.617

3. Ruscio A. M., et al. The epidemiology of obsessive-compulsive disorder in the National Comorbidity Survey Replication. Mol Psychiatry. 2010; 15 (1): 53–63. doi: 10.1038/mp.2008.94.

4. Koo M. S., et al. Role of dopamine in the pathophysiology and treatment of obsessive-compulsive disorder. Expert Rev Neurother. 2010; 10 (2): 275–290. doi: 10.1586/ern.09.148.

5. Pittenger C., Bloch M. H., Williams K. Glutamate abnormalities in obsessive compulsive disorder: neurobiology, pathophysiology, and treatment. Pharmacol Ther. 2011; 132 (3): 314–332. doi: 10.1016/j.pharmthera.2011.09.006.

6. Huppert J. D., et al. Quality of life and functional impairment in obsessive-compulsive disorder: a comparison of patients with and without comorbidity, patients in remission, and healthy controls. Depress Anxiety. 2009; 26 (1): 39–45. doi: 10.1002/da.20506.

7. Vieira J., Ramalho E. Silva F. Quality of Life in Children with Obsessive-Compulsive Disorder. Acta Med Port. 2016; 29 (9): 549–555. doi: 10.20344/amp.7726.

8. Milad M. R., Rauch S. L. Obsessive-compulsive disorder: beyond segregated cortico-striatal pathways. Trends Cogn Sci. 2012; 16 (1): 43–51. doi: 10.1016/j.tics.2011.11.003.

9. Insel T. R., et al. Obsessive-compulsive disorder and serotonin: is there a connection? Biol Psychiatry. 1985; 20 (11): 1174–1188. doi: 10.1016/0006–3223 (85) 90176–3.

10. Brakoulias V., et al. Comorbidity, age of onset and suicidality in obsessive-compulsive disorder (OCD): An international collaboration. Compr Psychiatry. 2017; 76: 79–86. doi: 10.1016/j.comppsych.2017.04.002.

11. Greer J. M., Capecchi M. R. Hoxb8 is required for normal grooming behavior in mice. Neuron. 2002; 33 (1): 23–34. doi: 10.1016/s0896–6273 (01) 00564–5.

12. Zike I. D., et al. OCD candidate gene SLC1A1/EAAT3 impacts basal ganglia-mediated activity and stereotypic behavior. Proc Natl Acad Sci USA. 2017; 14 (22): 5719–5724. doi: 10.1073/pnas.1701736114.

13. Lamothe H., et al. The Sapap3 -/- mouse reconsidered as a comorbid model expressing a spectrum of pathological repetitive behaviours. Transl Psychiatry. 2023; 13 (1): 26. doi: 10.1038/s41398‑023‑02323‑7.

14. Wilmerding A., et al. HoxB genes regulate neuronal delamination in the trunk neural tube by controlling the expression of Lzts1. Development. 2021; 148 (4): dev195404. doi: 10.1242/dev.195404.

15. Glorie D., et al. Sapap3 deletion causes dynamic synaptic density abnormalities: a longitudinal [11C] UCBJ PET study in a model of obsessive-compulsive disorder-like behaviour. EJNMMI Res. 2020; 10 (1): 140. doi: 10.1186/s13550‑020‑00721‑2.

16. Jeste S. S. Neurodevelopmental behavioral and cognitive disorders. Continuum (Minneap Minn). 2015; 21 (3 Behavioral Neurology and Neuropsychiatry): 690–714. doi: 10.1212/01. CON.0000466661.89908.3c.

17. Primak A., et al. Morphogenetic theory of mental and cognitive disorders: the role of neurotrophic and guidance molecules. Front Mol Neurosci. 2024; 17: 1361764. doi: 10.3389/fnmol.2024.1361764.

18. Limoni G., Niquille M. Semaphorins and Plexins in central nervous system patterning: the key to it all? Curr Opin Neurobiol. 2021; 66: 224–232. doi: 10.1016/j.conb.2020.12.014.

19. Khan A., et al. Plexins: Navigating through the neural regulation and brain pathology. Neurosci Biobehav Rev. 2025; 169: 105999. doi: 10.1016/j.neubiorev.2024.105999.

20. Christie S. M., et al. Interactions between semaphorins and plexin-neuropilin receptor complexes in the membranes of live cells. J Biol Chem. 2021; 297 (2): 100965. doi: 10.1016/j.jbc.2021.100965.

21. Gay C. M., Zygmunt T., Torres-Vázquez J. Diverse functions for the semaphorin receptor PlexinD1 in development and disease. Dev Biol. 2011; 349 (1): 1–19. doi: 10.1016/j.ydbio.2010.09.008.

22. Sainath R., Granato M. Plexin A3 and turnout regulate motor axonal branch morphogenesis in zebrafish. PLoS One. 2013; 8 (1): e54071. doi: 10.1371/journal.pone.0054071.

23. Karagyaur M., et al. The Power of Gene Technologies: 1001 Ways to Create a Cell Model. Cells. 2022; 11 (20): 3235. doi: 10.3390/cells11203235.

24. Илларионова М. Е. и др. Органотипические модели головного мозга млекопитающих в молекулярной психиатрии и неврологии. Вестник неврологии, психиатрии и нейрохирургии. 2025; 1. doi: 10.33920/med-01‑2501‑02.

25. Игнатов А. В., Бондаренко K. A., Макарова A. В. Необъемные повреждения ДНК у человека: пути образования, репарации и репликации. Acta Naturae. 2017; 9: 3, 12–26. doi: 10.32607/20758251‑2017‑9‑3‑12‑26.

26. Shi Y., Shen H. DNA cytosine deamination is associated with recurrent Somatic Copy Number Alterations in stomach adenocarcinoma. Front Genet. 2023; 14: 1231415. doi: 10.3389/fgene.2023.1231415.

27. Kuo Y. C., Zhang X. Regulation of Plexin: A Ring of Structural Twists and Turns. Neuron. 2016; 91 (3): 497–499. doi: 10.1016/j.neuron.2016.07.022.

28. Uniprot.org [Электронный ресурс]. Доступно: https://www.uniprot.org/uniprotkb/P51805/entry#structure (дата обращения: 10 октября 2025 г.).

29. Junqueira Alves C., et al. Origin and evolution of plexins, semaphorins, and Met receptor tyrosine kinases. Sci Rep. 2019; 9 (1): 1970. doi: 10.1038/s41598‑019‑38512‑y.

30. Cho A., Haruyama N., Kulkarni A. B. Generation of transgenic mice. Curr Protoc Cell Biol. 2009; Chapter 19: Unit 19.11. doi: 10.1002/0471143030.cb1911s42.

31. Averina O. A., et al. Simple Recommendations for Improving Efficiency in Generating Genome-Edited Mice. Acta Naturae. 2020; 12 (1): 42–50. doi: 10.32607/actanaturae.10937.

32. Valsamis B., Schmid S. Habituation and prepulse inhibition of acoustic startle in rodents. J Vis Exp. 2011; (55): e3446. doi: 10.3791/3446.

33. Yang M., Silverman J. L., Crawley J. N. Automated three-chambered social approach task for mice. Curr Protoc Neurosci. 2011; Chapter 8: Unit 8.26. doi: 10.1002/0471142301.ns0826s56.

34. Bailey K. R., Crawley J. N. Anxiety-Related Behaviors in Mice. In: Methods of Behavior Analysis in Neuroscience (editor — Buccafusco JJ), 2nd ed. Boca Raton (FL): CRC Press/Taylor & Francis; 2009. Chapter 5.

35. Angoa-Pérez M., et al. Marble burying and nestlet shredding as tests of repetitive, compulsive-like behaviors in mice. J Vis Exp. 2013; (82): 50978. doi: 10.3791/50978.

36. Uniprot.org [Электронный ресурс]. Доступно: https://www.uniprot.org/uniprotkb/P51805/variant-viewer (дата обращения: 10 октября 2025 г.).

37. Российское общество психиатров [Электронный ресурс]. Клинические рекомендации «Обсессивно-компульсивное расстройство». Министерство здравоохранения РФ (2019). Доступно: https://psychiatr.ru/download/4318 (дата обращения: 10 октября 2025 г.).

38. Rajkumar R. P. SAPAP3, SPRED2, and obsessive-compulsive disorder: the search for fundamental phenotypes. Front Mol Neurosci. 2023; 16: 1095455. doi: 10.3389/fnmol.2023.1095455.

39. Shmelkov S. V., et al. Slitrk5 deficiency impairs corticostriatal circuitry and leads to obsessive-compulsive-like behaviors in mice. Nat Med. 2010; 16 (5): 598–602. doi: 10.1038/nm.2125.

40. Escobar A. P., et al. The Neuronal Glutamate Transporter EAAT3 in Obsessive-Compulsive Disorder. Front Pharmacol. 2019; 10: 1362. doi: 10.3389/fphar.2019.01362.

41. Wood J., LaPalombara Z., Ahmari S. E. Monoamine abnormalities in the SAPAP3 knockout model of obsessivecompulsive disorder-related behaviour. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2018; 373 (1742): 20170023. doi: 10.1098/rstb.2017.0023.

42. Steele J. L., et al. Semaphorin-Plexin Signaling: From Axonal Guidance to a New X–Linked Intellectual Disability Syndrome. Pediatr Neurol. 2022; 126: 65–73. doi: 10.1016/j.pediatrneurol.2021.10.008.

43. Lu Y. P, et al. Semaphorin 3s signaling in the central nervous system: Mechanisms and therapeutic implication for brain diseases. Pharmacol Ther. 2025; 267: 108800. doi: 10.1016/j.pharmthera.2025.108800.

44. Chen X., et al. Distinct behavioral traits and associated brain regions in mouse models for obsessive-compulsive disorder. Behav Brain Funct. 2021; 17 (1): 4. doi: 10.1186/s12993‑021‑00177‑x.

1. Fullana M. A., et al. Obsessions and compulsions in the community: prevalence, interference, help-seeking, developmental stability, and co-occurring psychiatric conditions. Am J Psychiatry. 2009; 166 (3): 329–336. doi: 10.1176/appi. ajp.2008.08071006

2. Kessler R. C., et al. Prevalence, severity, and comorbidity of 12‑month DSM–IV disorders in the National Comorbidity Survey Replication. Arch Gen Psychiatry. 2005; 62 (6): 617–627. doi: 10.1001/archpsyc.62.6.617

3. Ruscio A. M., et al. The epidemiology of obsessive-compulsive disorder in the National Comorbidity Survey Replication. Mol Psychiatry. 2010; 15 (1): 53–63. doi: 10.1038/mp.2008.94.

4. Koo M. S., et al. Role of dopamine in the pathophysiology and treatment of obsessive-compulsive disorder. Expert Rev Neurother. 2010; 10 (2): 275–290. doi: 10.1586/ern.09.148.

5. Pittenger C., Bloch M. H., Williams K. Glutamate abnormalities in obsessive compulsive disorder: neurobiology, pathophysiology, and treatment. Pharmacol Ther. 2011; 132 (3): 314–332. doi: 10.1016/j.pharmthera.2011.09.006.

6. Huppert J. D., et al. Quality of life and functional impairment in obsessive-compulsive disorder: a comparison of patients with and without comorbidity, patients in remission, and healthy controls. Depress Anxiety. 2009; 26 (1): 39–45. doi: 10.1002/da.20506.

7. Vieira J., Ramalho E. Silva F. Quality of Life in Children with Obsessive-Compulsive Disorder. Acta Med Port. 2016; 29 (9): 549–555. doi: 10.20344/amp.7726.

8. Milad M. R., Rauch S. L. Obsessive-compulsive disorder: beyond segregated cortico-striatal pathways. Trends Cogn Sci. 2012; 16 (1): 43–51. doi: 10.1016/j.tics.2011.11.003.

9. Insel T. R., et al. Obsessive-compulsive disorder and serotonin: is there a connection? Biol Psychiatry. 1985; 20 (11): 1174–1188. doi: 10.1016/0006–3223 (85) 90176–3.

10. Brakoulias V., et al. Comorbidity, age of onset and suicidality in obsessive-compulsive disorder (OCD): An international collaboration. Compr Psychiatry. 2017; 76: 79–86. doi: 10.1016/j.comppsych.2017.04.002.

11. Greer J. M., Capecchi M. R. Hoxb8 is required for normal grooming behavior in mice. Neuron. 2002; 33 (1): 23–34. doi: 10.1016/s0896–6273 (01) 00564–5.

12. Zike I. D., et al. OCD candidate gene SLC1A1/EAAT3 impacts basal ganglia-mediated activity and stereotypic behavior. Proc Natl Acad Sci USA. 2017; 14 (22): 5719–5724. doi: 10.1073/pnas.1701736114.

13. Lamothe H., et al. The Sapap3 -/- mouse reconsidered as a comorbid model expressing a spectrum of pathological repetitive behaviours. Transl Psychiatry. 2023; 13 (1): 26. doi: 10.1038/s41398‑023‑02323‑7.

14. Wilmerding A., et al. HoxB genes regulate neuronal delamination in the trunk neural tube by controlling the expression of Lzts1. Development. 2021; 148 (4): dev195404. doi: 10.1242/dev.195404.

15. Glorie D., et al. Sapap3 deletion causes dynamic synaptic density abnormalities: a longitudinal [11C] UCB-J PET study in a model of obsessive-compulsive disorder-like behaviour. EJNMMI Res. 2020; 10 (1): 140. doi: 10.1186/s13550‑020‑00721‑2.

16. Jeste S. S. Neurodevelopmental behavioral and cognitive disorders. Continuum (Minneap Minn). 2015;21 (3 Behavioral Neurology and Neuropsychiatry): 690–714. doi: 10.1212/01. CON.0000466661.89908.3c.

17. Primak A., et al. Morphogenetic theory of mental and cognitive disorders: the role of neurotrophic and guidance molecules. Front Mol Neurosci. 2024; 17: 1361764. doi: 10.3389/fnmol.2024.1361764.

18. Limoni G., Niquille M. Semaphorins and Plexins in central nervous system patterning: the key to it all? Curr Opin Neurobiol. 2021; 66: 224–232. doi: 10.1016/j.conb.2020.12.014.

19. Khan A., et al. Plexins: Navigating through the neural regulation and brain pathology. Neurosci Biobehav Rev. 2025; 169: 105999. doi: 10.1016/j.neubiorev.2024.105999.

20. Christie S. M., et al. Interactions between semaphorins and plexin-neuropilin receptor complexes in the membranes of live cells. J Biol Chem. 2021; 297 (2): 100965. doi: 10.1016/j.jbc.2021.100965.

21. Gay C. M., Zygmunt T., Torres-Vázquez J. Diverse functions for the semaphorin receptor PlexinD1 in development and disease. Dev Biol. 2011; 349 (1): 1–19. doi: 10.1016/j.ydbio.2010.09.008.

22. Sainath R., Granato M. Plexin A3 and turnout regulate motor axonal branch morphogenesis in zebrafish. PLoS One. 2013; 8 (1): e54071. doi: 10.1371/journal.pone.0054071.

23. Karagyaur M., et al. The Power of Gene Technologies: 1001 Ways to Create a Cell Model. Cells. 2022; 11 (20): 3235. doi: 10.3390/cells11203235.

24. Illarionova M. E. et al. Organotipicheskie modeli golovnogo mozga mlekopitaiushchikh v molekuliarnoi psikhiatrii i nevrologii [Organotypic models of the mammalian brain in molecular psychiatry and neurology]. Vestnik nevrologii, psikhiatrii i neirokhirurgii [Bulletin of Neurology, Psychiatry and Neurosurgery]. 2025; 1. doi: 10.33920/med01‑2501‑02. (In Russ.)

25. Ignatov A. V., Bondarenko K. A., Makarova A. V. Neobiemnye povrezhdeniia DNK u cheloveka: puti obrazovaniia, reparatsii i replikatsii [Non-bulky lesions in human DNA: the ways of formation, repair, and replication]. Acta Naturae. 2017; 9: 3, 12–26. doi: 10.32607/20758251‑2017‑9‑3‑12‑26. (In Russ.)

26. Shi Y., Shen H. DNA cytosine deamination is associated with recurrent Somatic Copy Number Alterations in stomach adenocarcinoma. Front Genet. 2023; 14: 1231415. doi: 10.3389/fgene.2023.1231415.

27. Kuo Y. C., Zhang X. Regulation of Plexin: A Ring of Structural Twists and Turns. Neuron. 2016; 91 (3): 497–499. doi: 10.1016/j.neuron.2016.07.022.

28. 28. Uniprot.org [WEB-page]. Available at: https://www.uniprot.org/uniprotkb/P51805/entry#structure (Accessed: 10 October 2025). (In Russ.)

29. Junqueira Alves C., et al. Origin and evolution of plexins, semaphorins, and Met receptor tyrosine kinases. Sci Rep. 2019; 9 (1): 1970. doi: 10.1038/s41598‑019‑38512‑y.

30. Cho A., Haruyama N., Kulkarni A. B. Generation of transgenic mice. Curr Protoc Cell Biol. 2009; Chapter 19: Unit 19.11. doi: 10.1002/0471143030.cb1911s42.

31. Averina O. A., et al. Simple Recommendations for Improving Efficiency in Generating Genome-Edited Mice. Acta Naturae. 2020; 12 (1): 42–50. doi: 10.32607/actanaturae.10937.

32. Valsamis B., Schmid S. Habituation and prepulse inhibition of acoustic startle in rodents. J Vis Exp. 2011; (55): e3446. doi: 10.3791/3446.

33. Yang M., Silverman J. L., Crawley J. N. Automated three-chambered social approach task for mice. Curr Protoc Neurosci. 2011; Chapter 8: Unit 8.26. doi: 10.1002/0471142301.ns0826s56.

34. Bailey K. R., Crawley J. N. Anxiety-Related Behaviors in Mice. In: Methods of Behavior Analysis in Neuroscience (editor — Buccafusco J.J.), 2nd ed. Boca Raton (FL): CRC Press/Taylor & Francis; 2009. Chapter 5.

35. Angoa-Pérez M., et al. Marble burying and nestlet shredding as tests of repetitive, compulsive-like behaviors in mice. J Vis Exp. 2013; (82): 50978. doi: 10.3791/50978.

36. Uniprot.org [WEB-page]. Available at: https://www.uniprot.org/uniprotkb/P51805/variant-viewer (Accessed: 10 October 2025). (In Russ.)

37. Russian Society of Psychiatrists [WEB-page]. Clinical guidelines «Obsessive-Compulsive Personality Disorder.» Ministry of Health of the Russian Federation (2019). Available at: https://psychiatr.ru/download/4318 (Accessed: 10 October 2025). (In Russ.)

38. Rajkumar R. P. SAPAP3, SPRED2, and obsessive-compulsive disorder: the search for fundamental phenotypes. Front Mol Neurosci. 2023; 16:1095455. doi: 10.3389/fnmol.2023.1095455.

39. Shmelkov S. V., et al. Slitrk5 deficiency impairs corticostriatal circuitry and leads to obsessive-compulsive-like behaviors in mice. Nat Med. 2010; 16 (5): 598–602. doi: 10.1038/nm.2125.

40. Escobar A. P., et al. The Neuronal Glutamate Transporter EAAT3 in Obsessive-Compulsive Disorder. Front Pharmacol. 2019; 10: 1362. doi: 10.3389/fphar.2019.01362.

41. Wood J., LaPalombara Z., Ahmari S. E. Monoamine abnormalities in the SAPAP3 knockout model of obsessive-compulsive disorder-related behaviour. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2018; 373 (1742): 20170023. doi: 10.1098/rstb.2017.0023.

42. Steele J. L., et al. Semaphorin-Plexin Signaling: From Axonal Guidance to a New X–Linked Intellectual Disability Syndrome. Pediatr Neurol. 2022; 126: 65–73. doi: 10.1016/j.pediatrneurol.2021.10.008.

43. Lu Y. P, et al. Semaphorin 3s signaling in the central nervous system: Mechanisms and therapeutic implication for brain diseases. Pharmacol Ther. 2025; 267: 108800. doi: 10.1016/j.pharmthera.2025.108800.

44. Chen X., et al. Distinct behavioral traits and associated brain regions in mouse models for obsessive-compulsive disorder. Behav Brain Funct. 2021; 17 (1): 4. doi: 10.1186/s12993‑021‑00177‑x.

Обсессивно-компульсивное расстройство (ОКР) или невроз навязчивых состояний – психическое расстройство, характеризующееся повторяющимися навязчивыми мыслями, образами, импульсами или идеями, обычно вызывающими беспокойство или страдание, а также повторяющимися мыслительными и/или поведенческими феноменами [1–3]. Согласно последним данным, распространенность ОКР в популяции может достигать 1–3 % [4, 5]. ОКР ухудшает качество жизни пациентов, значительно нарушает их социальную и трудовую адаптацию, а в ряде случаев приводит к трансформации навязчивых мыслей в бред и значительно увеличивает суицидальный риск [6, 7].

Среди причин развития ОКР выделяют, как генетические факторы, так и факторы окружающей среды. Предполагается, что в основе патогенеза ОКР лежит дисбаланс активности кортико-стриато-таламо-кортикальной системы [8], в частности ее глутаматергический, серотониновый и/или дофаминовый компонент [4, 9]. Близнецовые исследования и исследования семей с ОКР подтвердили наличие существенного наследственного компонента в этиопатогенезе данного заболевания, причем наибольший вклад наследственных факторов был отмечен для форм ОКР с манифестацией в детском возрасте [10]. На сегодняшний день было идентифицировано несколько генов (Hoxb8, Slc1a1, Sapap3, Slitrk5, Spred2), полный нокаут которых у мышей приводит к появлению у мышей паттернов, поведения, соответствующего клиническим проявлениям ОКР [11–13]. Однако какие генетические варианты (даже в указанных генах) ассоциированы с риском развития ОКР, еще только предстоит установить.

Любопытным является тот факт, что по меньшей мере три из названных генов (Hoxb8, Sapap3 и Slitrk5) являются активными участниками процессов развития мозга: участвуют в пролиферации, миграции и дифференцировке нейральных предшественников, выборе направления роста нейритов и созревании синапсов [14, 15]. Это подтверждает важность правильного развития головного мозга для сохранности его психической и когнитивной функции, а также тот факт, что нарушение формирования мозга ввиду несвоевременной экспрессии или дисфункции молекул, обеспечивающих пролиферацию и миграцию нейральных предшественников, их прецизионное позиционирование в ткани мозга и соединение в функциональные нейронные сети, может лежать в основе развития психических заболеваний [16, 17].

Для Цитирования:
Карагяур Максим Николаевич, Аверина Ольга Александровна, Бозов Кирилл Дмитриевич, Джауари Сталик Станиславович, Приймак Анастасия Владимировна, Пермяков Олег Александрович, Григорьева Ольга Олеговна, Илларионова Мария Евгеньевна, Шкарина Лилия Николаевна, Примак Александра Леонидовна, Хайбуллина Раушана Тимуровна, Семина Екатерина Владимировна, Климович Полина Сергеевна, Самоходская Лариса Михайловна, Сергиев Петр Владимирович, Попов Владимир Сергеевич, Нейфельд Елена Арсланалиевна, Цыганков Борис Дмитриевич, Ткачук Всеволод Арсеньевич, Линия мышей, несущих мутацию P654L (rs139336954) в белке морфогенеза нервной ткани Plxna3, проявляет симптомы обсессивно-компульсивного расстройства личности. Вестник неврологии, психиатрии и нейрохирургии. 2025;11.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: