По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 638.4 DOI:10.33920/pro-01-2406-02

Контроль качества производства белкового концентрата из личинок мухи Черная львинка (Hermetia illucens)

Журавлев Михаил Сергеевич ФГБОУ ВО РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева, ассистент кафедры кормления, Москва, 127434, Тимирязевская ул., 49, E-mail: mikhail.sterh@gmail.com, идентификационные данные в РИНЦ: author id 1004543
Луговой Евгений Владимирович ООО «Зероникс», исполнительный директор, Москва, 123182, 4-й Красногорский проезд, д. 2/4, стр. 1, E-mail: lugovoy@zeronixbio.com
Мялова Ольга Владимировна ООО «Зероникс», редактор, Москва, 123182, 4-й Красногорский проезд, д. 2/4, стр. 1, E-mail: omyalova@zeronixbio.com
Баландин Илья Михайлович ООО «Зероникс», генеральный директор, Москва, 123182, 4-й Красногорский проезд, д. 2/4, стр. 1, E-mail: balandin@zeronixbio.com
Пугаев Сергей Николаевич ООО «Зероникс», Москва, 123182, 4-й Красногорский проезд, д. 2/4, стр. 1, энтомолог, E-mail: spugaev@zeronixbio.com

Рассмотрены основные аспекты управления качеством производства белкового концентрата из личинок мухи Черная львинка в условиях промышленного производства Российской Федерации. Представлены сведения об особенностях производства белка насекомых в промышленных условиях, обозначены основные риски безопасности и методы их исключения. Перечислены основные требования к качеству сырья и готовой продукции.

Литература:

1. Ying C, Ying L, Yanxia L, Le W, Lili C (2020) High mobility group box 1 antibody represses autophagy and alleviates hippocampus damage in pilocarpine-induced mouse epilepsy model. Acta Histochem 122:151485. https://doi.org/10.1016/j.acthis.2019.151485

2. Evans CE, Thomas RS, Freeman TJ, Hvoslef-Eide M, Good MA, Kidd EJ (2019) Selective reduction of APP-BACE1 activity improves memory via NMDA-NR2B receptor-mediated mechanisms in aged PDAPP mice. Neurobiol Aging 75:136–149. https://doi.org/10.1016/j.neurobiolaging.2018.11.011

3. Löscher W (2020) The holy grail of epilepsy prevention: Preclinical approaches to antiepileptogenic treatments. Neuropharmacology 167:107605. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2019.04.011

4. Peng L, Zhu M, Yang Y, Weng Y, Zou W, Zhu X, Guo Q, Zhong T (2019) Neonatal Lipopolysaccharide Challenge Induces Long-lasting Spatial Cognitive Impairment and Dysregulation of Hippocampal Histone Acetylation in Mice. Neuroscience 398:76–87. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2018.12.001

5. Berners-Lee M. et al. Current global food production is sufficient to meet human nutritional needs in 2050 provided there is radical societal adaptation //Elem Sci Anth. — 2018. — Т. 6. — С. 52.

6. FAO G. et al. Global food losses and food waste–Extent, causes and prevention //SAVE FOOD: An initiative on food loss and waste reduction. —2011. — Т. 9. — С. 2011.

7. Barragan-Fonseca K. B., Dicke M., van Loon J. J. A. Nutritional value of the black soldier fly (Hermetia illucens L.) and its suitability as animal feed–a review //Journal of Insects as Food and Feed. — 2017. — Т. 3. — № 2. — С. 105–120.

8. Julita U. et al. Mating success and reproductive behavior of Black Soldier Fly Hermetia illucens L.(Diptera, Stratiomyidae) in tropics. — 2020.

9. Ушакова Н. А., Некрасов Р. В. Перспективы использования насекомых в кормлении сельскохозяйственных животных // Биотехнология: состояние и перспективы развития. — 2015. — С. 147–149.

10. Liu C., Wang C., Yao H. Comprehensive resource utilization of waste using the black soldier fly (Hermetia illucens (L.))(Diptera: Stratiomyidae) // Animals. — 2019. — Т. 9. — № 6. — С. 349.

11. Rozkosny R. A Biosystematic Study of the European Strationmyidae (Diptera).: Ill., Kt. — Junk, 1983.

12. Дикларо Дж.В., Кауфман П.Е. Черная львинка hermetia illucens linnaeus (насекомое: Diptera: Stratiomyidae) // Eeny. — 2009. — Т. 461. — С. 1–3.

13. Юзефиак Д. и др. 1. Насекомые — природный источник питательных веществ для птиц — обзор //Анналы зоотехники. — 2016. — Т. 16. — № 2. — С. 297–313.

14. Wang G. et al. Evaluation of defatted black soldier fly (Hermetia illucens L.) larvae meal as an alternative protein ingredient for juvenile Japanese seabass (Lateolabrax japonicus) diets // Aquaculture. — 2019. — Т. 507. — С. 144–154.

15. Mouithys-Mickalad A. et al. Unlocking the Real Potential of Black Soldier Fly (Hermetia illucens) Larvae Protein Derivatives in Pet Diets //Molecules. — 2021. — Т. 26. — № 14. — С. 4216.

16. Пономарев С.В. Исследование влияния частичной замены рациона форели и осетра на сушеную личинку черной львинки (Hermetia illucens). https://hermetia.ru/otchet-ponomareva-2018-suxaya-lichinka-dlya-osetra-i-foreli

17. Papadoyianis E.D. Insects offer a promising solution to the protein bottleneck // Feed Technology Update. — 2007. — Т. 2. — № 6. — С. 158.

18. Ли Дж. и др. Личинки черной львинки (Hermetia illucens) усиливают иммунную активность и повышают выживаемость цыплят-бройлеров при экспериментальном заражении Salmonella Gallinarum //Журнал ветеринарной медицины. — 2018. — Т. 80. — № 5. — С. 736–740.

19. Линделл Р. Обеспечение живыми личинками черной львинки (Hermetia illucens) курам-несушкам (Gallus Gallus Domesticus) тремя различными методами. — 2021.

20. Almeida C., Rijo P., Rosado C. Bioactive compounds from Hermetia illucens larvae as natural ingredients for cosmetic application //Biomolecules. — 2020. — Т. 10. — № 7. — С. 976.

21. Singh A., Kumari K. An inclusive approach for organic waste treatment and valorisation using Black Soldier Fly larvae: A review //Journal of environmental management. — 2019. — Т. 251. — С. 109569.

22. Smolenskaya L.M., Rybina S.Y., Pendyurin E.A. Studying the moisture capacity of artificial soils containing industrial byproducts //IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. — IOP Publishing, 2019. — Т. 272. — № 2. — С. 022008.

23. Barrett M. et al. Welfare considerations for farming black soldier flies, Hermetia illucens (Diptera: Stratiomyidae): a model for the insects as food and feed industry //Journal of Insects as Food and Feed. — 2023. — Т. 9. — № 2. — С. 119–148.

1. Ying C, Ying L, Yanxia L, Le W, Lili C (2020) High mobility group box 1 antibody represses autophagy and alleviates hippocampus damage in pilocarpine-induced mouse epilepsy model. Acta Histochem 122:151485. https://doi.org/10.1016/j.acthis.2019.151485

2. Evans CE, Thomas RS, Freeman TJ, Hvoslef-Eide M, Good MA, Kidd EJ (2019) Selective reduction of APP-BACE1 activity improves memory via NMDA-NR2B receptor-mediated mechanisms in aged PDAPP mice. Neurobiol Aging 75:136–149. https://doi.org/10.1016/j.neurobiolaging.2018.11.011

3. Löscher W (2020) The holy grail of epilepsy prevention: Preclinical approaches to antiepileptogenic treatments. Neuropharmacology 167:107605. https://doi.org/10.1016/j.neuropharm.2019.04.011

4. Peng L, Zhu M, Yang Y, Weng Y, Zou W, Zhu X, Guo Q, Zhong T (2019) Neonatal Lipopolysaccharide Challenge Induces Long-lasting Spatial Cognitive Impairment and Dysregulation of Hippocampal Histone Acetylation in Mice. Neuroscience 398:76–87. https://doi.org/10.1016/j. neuroscience.2018.12.001

5. Berners-Lee M. et al. Current global food production is sufficient to meet human nutritional needs in 2050 provided there is radical societal adaptation //Elem Sci Anth. — 2018. — T. 6. — P. 52.

6. FAO G. et al. Global food losses and food waste–Extent, causes and prevention //SAVE FOOD: An initiative on food loss and waste reduction. — 2011. — T. 9. — P. 2011.

7. Barragan-Fonseca K.B., Dicke M., van Loon J.J.A. Nutritional value of the black soldier fly (Hermetia illucens L.) and its suitability as animal feed–a review // Journal of Insects as Food and Feed. — 2017. — T. 3. — No. 2. — P. 105–120.

8. Julita U. et al. Mating success and reproductive behavior of Black Soldier Fly Hermetia illucens L.(Diptera, Stratiomyidae) in the tropics. — 2020.

9. Ushakova N. A., Nekrasov R. V. Prospects for the use of insects in feeding agricultural animals // Biotechnology: status and development prospects. — 2015. — pp. 147–149.

10. Liu C., Wang C., Yao H. Comprehensive resource utilization of waste using the black soldier fly (Hermetia illucens (L.)) (Diptera: Stratiomyidae) // Animals. — 2019. — T. 9. — No. 6. — P. 349.

11. Rozkosny R. A Biosystematic Study of the European Strationmyidae (Diptera).: Ill., Kt. — Junk, 1983.

12. Diclaro J.V., Kaufman P.E. Black soldier fly hermetia illucens linnaeus (insect: Diptera: Stratiomyidae) // Eeny. — 2009. — T. 461. — P. 1–3.

13. Yuzefiak D. et al. 1. Insects are a natural source of nutrients for birds — review // Annals of Zootechnics. — 2016. — T. 16. — No. 2. — P. 297–313.

14. Wang G. et al. Evaluation of defatted black soldier fly (Hermetia illucens L.) larvae meal as an alternative protein ingredient for juvenile Japanese seabass (Lateolabrax japonicus) diets //Aquaculture. — 2019. — T. 507. — P. 144–154.

15. Mouithys-Mickalad A. et al. Unlocking the Real Potential of Black Soldier Fly (Hermetia illucens) Larvae Protein Derivatives in Pet Diets // Molecules. — 2021. — T. 26. — No. 14. — P. 4216.

16. Ponomarev S.V. Study of the effect of partial replacement of the diet of trout and sturgeon with dried black soldier fly larva (Hermetia illucens). https://hermetia.ru/otchet-ponomareva-2018-suxaya-lichinka-dlya-osetra-i-foreli

17. Papadoyianis E. D. Insects offer a promising solution to the protein bottleneck //Feed Technology Update. — 2007. — T. 2. —No. 6. — P. 158.

18. Lee J. et al. Black soldier fly larvae (Hermetia illucens) enhance immune activity and increase the survival rate of broiler chickens experimentally infected with Salmonella Gallinarum // Journal of Veterinary Medicine. - 2018. — T. 80. — No. 5. — P. 736–740.

19. Lindell R. Providing live black soldier fly (Hermetia illucens) larvae to laying hens (Gallus Gallus domesticus) by three different methods. — 2021.

20. Almeida C., Rijo P., Rosado C. Bioactive compounds from Hermetia illucens larvae as natural ingredients for cosmetic application // Biomolecules. — 2020. — T. 10. — No. 7. — P. 976.

21. Singh A., Kumari K. An inclusive approach for organic waste treatment and valorization using Black Soldier Fly larvae: A review // Journal of environmental management. — 2019. — T. 251. — P. 109569.

22. Smolenskaya L. M., Rybina S. Y., Pendyurin E. A. Studying the moisture capacity of artificial soils containing industrial byproducts //IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. — IOP Publishing, 2019. — T. 272. — No. 2. — P. 022008.

23. Barrett M. et al. Welfare considerations for farming black soldier flies, Hermetia illucens (Diptera: Stratiomyidae): a model for the insects as food and feed industry // Journal of Insects as Food and Feed. — 2023. — T. 9. — No. 2. — P. 119–148.

Обеспечение глобальной продовольственной безопасности является второй из 17 целей устойчивого развития, принятых Организацией Объединенных Наций в рамках Повестки дня в области устойчивого развития на период до 2030 года [1]. На данный момент, глобальные запасы продовольствия достаточны для того, чтобы накормить население мира и для предотвращения голода, необходимо только его своевременное распределение [2], но при этом производство продуктов питания должно резко увеличиться в ближайшие десятилетия [3], поскольку население планеты вырастет до ≈9,7 млрд к 2050 г [4]. Кроме того, предполагается, что отказ от кормления животных съедобными для человека пищевыми ингредиентами, в том числе мясом и рыбой, позволит прогнозируемому населению мира к 2050 году быть полноценно обеспеченным пищей [5]. Таким образом, необходимо искать альтернативные, не входящие в пищевую цепочку человека источники белка для кормления продуктивных и непродуктивных животных.

Насекомые в кормлении животных относительно массово используются в качестве источника высокоусвояемого белка с конца XX в. Среди них можно отметить личинки мух отряда двукрылых, которые являются перспективным источником белка для животных, так как в своем составе имеют высокий уровень протеина; перерабатывают различные отходы, которые не могут напрямую использоваться в кормлении животных, а также вырабатывают гораздо меньше парниковых газов и аммиака [6], требуют меньше пространства для выращивания и имеют более эффективную конверсию корма [7]. По этим причинам, промышленное культивирование насекомых имеет потенциал для обеспечения продовольственной безопасности планеты и, в частности, России. В рамках данной статьи будут рассмотрены основные аспекты биологического цикла и промышленного выращивания насекомого Черная львинка, а также основные вопросы контроля безопасности и качества, используемых на фермах по выращиванию насекомых.

К наиболее изученным насекомым, используемым для кормления животных, относится муха Чёрная львинка Hermetia illucens [7]. Она представляет собой крупную (размером 13–20 мм) муху семейства Stratiomyidae, с естественным ареалом распространения в Южной и Северной Америке [8]. Муха также встречается в тропиках и регионах с умеренным климатом по всему миру, она адаптирована в первую очередь к этим регионам и может переносить резкие перепады температур, за исключением периодов кладки яиц. Кроме того, Чёрная львинка является одним из немногих видов насекомых, способных круглогодично развиваться в чистой культуре в замкнутом пространстве искусственных условий [9], что делает этот вид подходящим для использования в биотехнологических целях.

Для Цитирования:
Журавлев Михаил Сергеевич, Луговой Евгений Владимирович, Мялова Ольга Владимировна, Баландин Илья Михайлович, Пугаев Сергей Николаевич, Контроль качества производства белкового концентрата из личинок мухи Черная львинка (Hermetia illucens). Управление качеством. 2024;6.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: