По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 616-006.484.04 DOI:10.33920/med-01-2102-03

Использование таксанов и нейротоксичность у онкологических больных

Ткаченко Е. В. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68
Андреев Владислав Викторович ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68., E-mail: nevro-fpo@mail.ru
Яценко А. В. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68; СПбГБУЗ КДЦ 85, 198260, г. Санкт-Петербург, пр-т Ветеранов, д. 89/3
Желтухин А. А. ГБУЗ СПбКНПЦСВМП(о), 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68, лит. А
Горбунова К. В. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68
Кондратьев С. В. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68
Клюге В. А. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68
Бриш Н. А. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68
Алексеева Ю. В. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68
Служев М. И. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68; ФГБОУ ВО «ПСПбГМУ им. акад. И. П. Павлова» Минздрава России, 197022, г. Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, д. 6–8
Каспаров Б. С. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68
Бондарев Н. Э. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68
Мимонов Е. А. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68
Семиглазов В. В. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68
Семиглазова Т. Ю. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68; ФГБОУ ВО «СЗГМУ им. И. И. Мечникова» Минздрава России, 195067, г. Санкт-Петербург, Пискаревский пр., д. 47
Беляев А. М. ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н. Н. Петрова» Минздрава России, 197758, г. Санкт-Петербург, пос. Песочный, ул. Ленинградская, д. 68; ФГБОУ ВО «СЗГМУ им. И. И. Мечникова» Минздрава России, 195067, г. Санкт-Петербург, Пискаревский пр., д. 47

Обзор представляет данные по специфике механизмов действия, классификации и клинических проявлениях эффекта нейротоксичности. Рассматриваются наиболее значимые особенности специфического побочного действия при использовании таксанов при разных режимах лечения, включая кумулятивные дозы. Обсуждаются доказанные методы лечения и профилактики нейропатии, вызванной противоопухолевыми препаратами.

Литература:

1. N.P. Staff , A. Grisold, W. Grisold., and A.J. Windebank. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy: A current review. Ann. Neurol., vol. 81, no. 6, pp. 772–781, Jun. 2017, doi: 10.1002/ana.24951.

2. M. Ewertz, C. Qvortrup, and L. Eckhoff. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy in patients treated with taxanes and platinum derivatives. Acta Oncol, vol. 54, no. 5, pp. 587–591, May 2015, doi: 10.3109/0284186X.2014.995775.

3. J. Zhong et al. ABCB1 polymorphism predicts the toxicity and clinical outcome of lung cancer patients with taxane-based chemotherapy. Thorac Cancer, vol. 10, no. 11, pp. 2088–2095, Nov. 2019, doi: 10.1111/1759-7714.13184.

4. B.A. Weaver. How Taxol/paclitaxel kills cancer cells. Mol Biol Cell, vol. 25, no. 18, pp. 2677–2681, Sep. 2014, doi: 10.1091/mbc.E14-04-0916.

5. M.A. Jordan and L. Wilson. Microtubules as a target for anticancer drugs. Nat. Rev. Cancer, vol. 4, no. 4, pp. 253–265, Apr. 2004, doi: 10.1038/nrc1317.

6. V.A. Carozzi, A. Canta, and A. Chiorazzi. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy: What do we know about mechanisms? Neurosci. Lett., vol. 596, pp. 90–107, Jun. 2015, doi: 10.1016/j.neulet.2014.10.014.

7. N.E. LaPointe, G. Morfi ni, S. T. Brady, S. C. Feinstein, L. Wilson, and M. A. Jordan. Eff ects of eribulin, vincristine, paclitaxel and ixabepilone on fast axonal transport and kinesin-1 driven microtubule gliding: implications for chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Neurotoxicology, vol. 37, pp. 231–239, Jul. 2013, doi: 10.1016/j. neuro.2013.05.008.

8. M. Krzakowski et al. Phase III trial comparing vinfl unine with docetaxel in second-line advanced non-smallcell lung cancer previously treated with platinum-containing chemotherapy. J. Clin. Oncol., vol. 28, no. 13, pp. 2167–2173, May 2010, doi: 10.1200/JCO.2009.23.4146.

9. L.A. Colvin. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy: where are we now? Pain, vol. 160 Suppl 1, pp. S1–S10, 2019, doi: 10.1097/j.pain.0000000000001540.

10. N.C. Miltenburg and W. Boogerd. Chemotherapy-induced neuropathy: A comprehensive survey. Cancer Treat. Rev., vol. 40, no. 7, pp. 872–882, Aug. 2014, doi: 10.1016/j.ctrv.2014.04.004.

11. K.M. Winters-Stone et al. Falls, Functioning, and Disability Among Women With Persistent Symptoms of Chemotherapy-Induced Peripheral Neuropathy. J. Clin. Oncol., vol. 35, no. 23, pp. 2604–2612, Aug. 2017, doi: 10.1200/JCO.2016.71.3552.

12. A.A. Argyriou, A.P. Kyritsis, T. Makatsoris, and H. P. Kalofonos. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy in adults: a comprehensive update of the literature. Cancer Manag Res, vol. 6, pp. 135–147, Mar. 2014, doi: 10.2147/CMAR.S44261.

13. N. Kerckhove et al. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy: Symptomatology and epidemiology. Bull Cancer, vol. 105, no. 11, pp. 1020–1032, Nov. 2018, doi: 10.1016/j.bulcan.2018.07.009.

14. J.J. Lee and S.M. Swain. Peripheral neuropathy induced by microtubule-stabilizing agents. J. Clin. Oncol., vol. 24, no. 10, pp. 1633–1642, Apr. 2006, doi: 10.1200/JCO.2005.04.0543.

15. W. Grisold, G. Cavaletti, and A. J. Windebank. Peripheral neuropathies from chemotherapeutics and targeted agents: diagnosis, treatment, and prevention. Neuro-oncology, vol. 14 Suppl 4, pp. iv45-54, Sep. 2012, doi: 10.1093/ neuonc/nos203.

16. A. Henningsson et al. Association of CYP2C8, CYP3A4, CYP3A5, and ABCB1 polymorphisms with the pharmacokinetics of paclitaxel. Clin. Cancer Res., vol. 11, no. 22, pp. 8097–8104, Nov. 2005, doi: 10.1158/1078-0432. CCR-05-1152.

17. I. Ieiri, H. Takane, and K. Otsubo. The MDR1 (ABCB1) Gene Polymorphism and its Clinical Implications. Clin Pharmacokinet, vol. 43, no. 9, pp. 553–576, Aug. 2004, doi: 10.2165/00003088-200443090-00001.

18. T. Tahara, T. Arisawa, T. Shibata, I. Hirata, and H. Nakano. Multi-drug resistance 1 polymorphism is associated with reduced risk of gastric cancer in the Japanese population. J. Gastroenterol. Hepatol., vol. 22, no. 10, pp. 1678–1682, Oct. 2007, doi: 10.1111/j.1440-1746.2007.04848.x.

19. S. Hoff meyer et al. Functional polymorphisms of the human multidrug-resistance gene: Multiple sequence variations and correlation of one allele with P-glycoprotein expression and activity in vivo. PNAS, vol. 97, no. 7, pp. 3473–3478, Mar. 2000, doi: 10.1073/pnas.97.7.3473.

20. N.N. Salama, Z. Yang, T. Bui, and R.J.Y. Ho. MDR1 haplotypes signifi cantly minimize intracellular uptake and transcellular P-gp substrate transport in recombinant LLC-PK1 cells. J Pharm Sci, vol. 95, no. 10, pp. 2293–2308, Oct. 2006, doi: 10.1002/jps.20717.

21. H. Gréen, P. Söderkvist, P. Rosenberg, G. Horvath, and C. Peterson. mdr-1 single nucleotide polymorphisms in ovarian cancer tissue: G2677T/A correlates with response to paclitaxel chemotherapy. Clin. Cancer Res., vol. 12, no. 3 Pt 1, pp. 854–859, Feb. 2006, doi: 10.1158/1078-0432.CCR-05-0950.

22. T.M. Sissung et al. Association of ABCB1 genotypes with paclitaxel-mediated peripheral neuropathy and neutropenia. Eur. J. Cancer, vol. 42, no. 17, pp. 2893–2896, Nov. 2006, doi: 10.1016/j.ejca.2006.06.017.

23. H. Chang et al. Association of the ABCB1 gene polymorphisms 2677G>T/A and 3435C>T with clinical outcomes of paclitaxel monotherapy in metastatic breast cancer patients. Ann. Oncol., vol. 20, no. 2, pp. 272–277, Feb. 2009, doi: 10.1093/annonc/mdn624.

24. H. Chang et al. Association of the ABCB1 3435C>T polymorphism and treatment outcomes in advanced gastric cancer patients treated with paclitaxel-based chemotherapy. Oncol. Rep., vol. 23, no. 1, pp. 271–278, Jan. 2010.

25. Y.-Q. Zhou et al. Reactive oxygen species scavengers ameliorate mechanical allodynia in a rat model of cancer-induced bone pain. Redox Biology, vol. 14, pp. 391–397, Apr. 2018, doi: 10.1016/j.redox.2017.10.011.

26. A. Binder and R. Baron. The Pharmacological Therapy of Chronic Neuropathic Pain, Dtsch Arztebl Int, vol. 113, no. 37, pp. 616–625, Sep. 2016, doi: 10.3238/arztebl.2016.0616.

27. M. Sisignano, R. Baron, K. Scholich, and G. Geisslinger. Mechanism-based treatment for chemotherapy-induced peripheral neuropathic pain. Nat Rev Neurol, vol. 10, no. 12, pp. 694–707, Dec. 2014, doi: 10.1038/nrneurol.2014.211.

28. S.E. Abram, J. Yi, A. Fuchs, and Q.H. Hogan. Permeability of Injured and Intact Peripheral Nerves and Dorsal Root Ganglia. Anesthesiology, vol. 105, no. 1, pp. 146–153, Jul. 2006.

29. D. Sapunar, S. Kostic, A. Banozic, and L. Puljak. Dorsal root ganglion — a potential new therapeutic target for neuropathic pain. J Pain Res, vol. 5, pp. 31–38, 2012, doi: 10.2147/JPR.S26603.

30. Y. Fukuda, Y. Li, and R.A. Segal. A Mechanistic Understanding of Axon Degeneration in ChemotherapyInduced Peripheral Neuropathy. Front Neurosci, vol. 11, Aug. 2017, doi: 10.3389/fnins.2017.00481.

31. R. Costa et al. Kinin Receptors Sensitize TRPV4 Channel and Induce Mechanical Hyperalgesia: Relevance to Paclitaxel-Induced Peripheral Neuropathy in Mice. Mol. Neurobiol., vol. 55, no. 3, pp. 2150–2161, 2018, doi: 10.1007/ s12035-017-0475-9.

32. K. Janes et al. Spinal neuroimmune activation is independent of T-cell infi ltration and attenuated by A3 adenosine receptor agonists in a model of oxaliplatin-induced peripheral neuropathy. Brain Behav. Immun., vol. 44, pp. 91–99, Feb. 2015, doi: 10.1016/j.bbi.2014.08.010.

33. P.G.S. Makker et al. Characterisation of Immune and Neuroinfl ammatory Changes Associated with Chemotherapy-Induced Peripheral Neuropathy. PLoS ONE, vol. 12, no. 1, p. e0170814, 2017, doi: 10.1371/journal.pone.0170814.

34. M.N. Manjavachi et al. Spinal blockage of CXCL1 and its receptor CXCR2 inhibits paclitaxel-induced peripheral neuropathy in mice. Neuropharmacology, vol. 151, pp. 136–143, 2019, doi: 10.1016/j.neuropharm.2019.04.014.

35. D.M. Marotta et al. Mechanisms underlying the nociceptive responses induced by platelet-activating factor (PAF) in the rat paw. Biochem. Pharmacol., vol. 77, no. 7, pp. 1223–1235, Apr. 2009, doi: 10.1016/j.bcp.2008.12.025.

36. G.C. Segat et al. Antiallodynic eff ect of β-caryophyllene on paclitaxel-induced peripheral neuropathy in mice. Neuropharmacology, vol. 125, pp. 207–219, Oct. 2017, doi: 10.1016/j.neuropharm.2017.07.015.

37. N.A. Duggett et al. Oxidative stress in the development, maintenance and resolution of paclitaxel-induced painful neuropathy. Neuroscience, vol. 333, pp. 13–26, 01 2016, doi: 10.1016/j.neuroscience.2016.06.050.

38. S.-S. Gong et al. Neuroprotective Eff ect of Matrine in Mouse Model of Vincristine-Induced Neuropathic Pain, Neurochem. Res., vol. 41, no. 11, pp. 3147–3159, Nov. 2016, doi: 10.1007/s11064-016-2040-8.

39. I.A. Khasabova et al. Pioglitazone, a PPARγ agonist, reduces cisplatin-evoked neuropathic pain by protecting against oxidative stress. Pain, vol. 160, no. 3, pp. 688–701, Mar. 2019, doi: 10.1097/j.pain.0000000000001448.

40. B. Vashistha, A. Sharma, and V. Jain. Ameliorative potential of ferulic acid in vincristine-induced painful neuropathy in rats: An evidence of behavioral and biochemical examination. Nutr Neurosci, vol. 20, no. 1, pp. 60–70, Jan. 2017, doi: 10.1179/1476830514Y.0000000165.

41. S. Toyama, N. Shimoyama, H. H. Szeto, P. W. Schiller, and M. Shimoyama. Protective Eff ect of a MitochondriaTargeted Peptide against the Development of Chemotherapy-Induced Peripheral Neuropathy in Mice. ACS Chem Neurosci, vol. 9, no. 7, pp. 1566–1571, 18 2018, doi: 10.1021/acschemneuro.8b00013.

42. L.F. Carvalho, A.M.F. Silva, and A.A. Carvalho. The use of antioxidant agents for chemotherapy-induced peripheral neuropathy treatment in animal models. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol., vol. 44, no. 10, pp. 971–979, Oct. 2017, doi: 10.1111/1440-1681.12803.

43. J. Berger and D.E. Moller. The mechanisms of action of PPARs. Annu. Rev. Med., vol. 53, pp. 409–435, 2002, doi: 10.1146/annurev.med.53.082901.104018.

44. B.N. Okine, J.C. Gaspar, and D. P. Finn. PPARs and pain. Br. J. Pharmacol., vol. 176, no. 10, pp. 1421–1442, 2019, doi: 10.1111/bph.14339.

45. A. Warden et al. Localization of PPAR isotypes in the adult mouse and human brain. Scientifi c Reports, vol. 6, no. 1, pp. 1–15, Jun. 2016, doi: 10.1038/srep27618.

46. S. Sauer. Ligands for the Nuclear Peroxisome Proliferator-Activated Receptor Gamma. Trends Pharmacol. Sci., vol. 36, no. 10, pp. 688–704, Oct. 2015, doi: 10.1016/j.tips.2015.06.010.

47. R. Costa et al. Anti-nociceptive eff ect of kinin B1 and B2 receptor antagonists on peripheral neuropathy induced by paclitaxel in mice. Br. J. Pharmacol., vol. 164, no. 2b, pp. 681–693, Sep. 2011, doi: 10.1111/j.1476-5381.2011.01408.x.

48. A. Molassiotis et al. Are we mis-estimating chemotherapy-induced peripheral neuropathy? Analysis of assessment methodologies from a prospective, multinational, longitudinal cohort study of patients receiving neurotoxic chemotherapy. BMC Cancer, vol. 19, no. 1, p. 132, Feb. 2019, doi: 10.1186/s12885-019-5302-4.

49. D.L. Hershman et al. Prevention and management of chemotherapy-induced peripheral neuropathy in survivors of adult cancers: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline. J. Clin. Oncol., vol. 32, no. 18, pp. 1941–1967, Jun. 2014, doi: 10.1200/JCO.2013.54.0914.

50. S. Hou, B. Huh, H. K. Kim, K.-H. Kim, and S. Abdi. Treatment of Chemotherapy-Induced Peripheral Neuropathy: Systematic Review and Recommendations. Pain Physician, vol. 21, no. 6, pp. 571–592, 2018.

51. J.E. Hammack et al. Phase III evaluation of nortriptyline for alleviation of symptoms of cis-platinum-induced peripheral neuropathy. Pain, vol. 98, no. 1–2, pp. 195–203, Jul. 2002, doi: 10.1016/s0304-3959(02)00047-7.

52. A.-L. Kautio, M. Haanpää, T. Saarto, and E. Kalso. Amitriptyline in the treatment of chemotherapy-induced neuropathic symptoms. J Pain Symptom Manage, vol. 35, no. 1, pp. 31–39, Jan. 2008, doi: 10.1016/j.jpainsymman.2007.02.043.

53. E.M.L. Smith et al. Eff ect of duloxetine on pain, function, and quality of life among patients with chemotherapy-induced painful peripheral neuropathy: a randomized clinical trial. JAMA, vol. 309, no. 13, pp. 1359–1367, Apr. 2013, doi: 10.1001/jama.2013.2813.

54. Y. Hirayama et al. Eff ect of duloxetine in Japanese patients with chemotherapy-induced peripheral neuropathy: a pilot randomized trial. Int. J. Clin. Oncol., vol. 20, no. 5, pp. 866–871, Oct. 2015, doi: 10.1007/s10147-015-0810-y.

Количество публикаций и исследований, посвященных лечению онкологических заболеваний, представлено достаточно широко. Значительно увеличилось число современных цитостатических, таргетных, иммуноонкологических препаратов. Многие из применяемых противоопухолевых препаратов обладают различными видами токсичности. В их числе и нейротоксичность, которая нередко требует модификации доз, отсрочки очередных циклов терапии и даже полного прекращения лечения [1]. Нейротоксичность считается одним из самых специфических осложнений системного характера практически любой противоопухолевой химиотерапии, значительно ухудшающих качество жизни пациентов [2].

Следствием этого является необходимость пересмотра тактики ведения — снижения дозы препаратов, в некоторых случаях возникает необходимость прекращения проводимого лечения. Цель представленного обзора заключается в анализе имеющихся данных и результатов клинических исследований по диагностике и лечению паклитаксел-индуцированной нейротоксичности.

Таксаны являются противоопухолевыми препаратами с широким спектром терапевтического применения и обычно применяются для лечения солидных опухолей, таких как рак яичников, рак молочной железы, рак легкого, опухоли головы и шеи, саркома Капоши и др. [3].

Паклитаксел — первое таксановое производное с противоопухолевой активностью, был выделен в 1967 г. из коры тиса тихоокеанского (Taxus brevifolia). Позднее, в 1971 г., была расшифрована его химическая структура и установлено, что он является дитерпеноидным таксаном. В настоящее время паклитаксел производят полусинтетическим и синтетическим путем.

Доцетаксел — близкий по химической структуре и клиническому действию к паклитакселу препарат, который получают путем химического синтеза из природного сырья — игл тиса европейского (Taxus baccata) [4].

Фармакологическое действие паклитаксела заключается в его связывании с полимеризованными тубулинами цитоплазмы, при этом происходит прерывание G2 фазы клеточного цикла и стабилизация микротрубочек. Нарушение функционирования микротубулярного аппарата клетки является не только следствием блокирования процесса деления, но и происходит повреждение цитоскелета, нарушается подвижность внутриклеточного транспорта и скорость передачи трансмембранных сигналов [5]. Эти процессы происходят не только в раковых клетках, но и в клетках всего организма, что определяет многочисленные побочные эффекты, в том числе миелосупрессию, реакции гиперчувствительности, нейропатическую боль. Механизм нейротоксичности вызван действием препарата на микротрубочки нейронов и шванновских клеток с аксональной дегенерацией и демиелинизацией [6]. Препараты таксанового ряда стабилизируют тубулин в состоянии полимера, что нарушает аксональный транспорт. При использовании этих препаратов повышается проницаемость мембраны к ионам, снижается потенциал покоя. Это ведет к спонтанной деполяризаци (ранние симптомы) [7]. Нейротоксичность чаще возникает на фоне паклитаксела (около 60 %) по сравнению с доцетакселом (около 15 %) [8].

Для Цитирования:
Ткаченко Е. В., Андреев Владислав Викторович, Яценко А. В., Желтухин А. А., Горбунова К. В., Кондратьев С. В., Клюге В. А., Бриш Н. А., Алексеева Ю. В., Служев М. И., Каспаров Б. С., Бондарев Н. Э., Мимонов Е. А., Семиглазов В. В., Семиглазова Т. Ю., Беляев А. М., Использование таксанов и нейротоксичность у онкологических больных. Вестник неврологии, психиатрии и нейрохирургии. 2021;2.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: