По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.371/374:615.322 DOI:10.33920/sel-09-2010-05

Эффективность применения биофлавоноидов в продукционных кормах для перспективных объектов аквакультуры

С. В. Пономарев д-р биол. наук, профессор, профессор кафедры «Аквакультура и рыболовство», заведующий научно-исследовательской лабораторией «Осетроводство и перспективные объекты аквакультуры», ФГБОУ ВО «Астраханский государственный технический университет», Россия, Астрахань; orcid: 0000-0002-2899-8672; 414056, Астрахань, ул. М. Максаковой, д. 12а; е-mail: kafavb@yandex.ru.
Ю. В. Федоровых канд. с.-х. наук, доцент кафедры «Аквакультура и рыболовство», ФГБОУ ВО «Астраханский государственный технический университет», Россия, Астрахань; orcid: 0000-0003-0789-1566; 414056, г. Астрахань, ул. 28 Армии, д. 12; e-mail: jaqua@yandex.ru.
А. Б. Ахмеджанова канд. биол. наук, ведущий инженер научно-исследовательской лаборатории «Осетроводство и перспективные объекты аквакультуры», ФГБОУ ВО «Астраханский государственный технический университет», Россия, Астрахань; orcid: 0000-0001-9283-8916; 416450, Астраханская область, Приволжский район, с. Началово, мкр. Садовый, д. 198; e-mail: aliyaakhmed14@gmail.com.
О. А. Левина канд. с.-х. наук, младший научный сотрудник научно-исследовательской лаборатории «Осетроводство и перспективные объекты аквакультуры», ФГБОУ ВО «Астраханский государственный технический университет», Россия, Астрахань; orcid: 0000-0002-5543-491X; 414056, г. Астрахань, ул. Савушкина, д. 15; e-mail: levina90@inbox.ru.
В. А. Поспелов генеральный директор ООО «Красный Яр», Россия, Астрахань; orcid: 0000-0002-9197-5027; e-mail: krasniy_yar@astranet.ru.
С. В. Цулимов канд. техн. наук, директор по развитию ООО «Красный Яр», Россия, Астрахань; orcid: 0000-0003-0182-109X; 119146, г. Москва, Комсомольский пр-т, д. 25; e-mail: s@zvuka.net.
А. Б. Гаврилов канд. техн. наук, руководитель лаборатории «Биотехнологии» Института биологического приборостроения РАН, Россия, Пущино; orcid: 0000-0003-4462-5427; e-mail: bio_2016@yandex.ru

Современные технологии индустриального рыбоводства позволяют получать продукцию высокого качества. Однако стрессовые условия искусственной экосистемы (высокая плотность посадки, нарушение оптимальных гидрохимических условий) способны негативно отразиться на пищевой активности, скорости роста, привести к развитию алиментарных заболеваний и истощению антиоксидантного потенциала. В условиях, когда рыба лишена естественной пищи, а обмен веществ полностью находится под контролем человека, использование сбалансированных кормов, обогащенных макрои микроэлементами, а также биологически активными веществами, в максимальной мере обеспечивает обменные процессы и способствует увеличению скорости роста и получению физиологически полноценной молоди. Использование антиоксидантных кормовых добавок позволяет не только проводить своевременную терапию, но и оказать профилактическое действие для предотвращения негативных последствий искусственной экосистемы. В настоящее время существует целый ряд антиоксидантных кормовых добавок, среди которых особый интерес вызывают природные биоантиокислители флавоноидной природы, такие как катехины, дигидрохалконы, флавонолы, лейкоцианы, дигидрокверцетин. В статье рассматривается опыт применения антиоксиданта нового поколения — дигидрокверцетина и иммуностимулятора — арабиногалактана в кормлении гибрида тиляпии (Oreochromis mossambicus ×Oreochromis niloticus). Установлено, что добавление в состав продукционных кормов дигидрокверцетина (25,0–50,0мг/кг) и арабиногалактана (50,0мг/кг) позволило увеличить продуктивность на 26,0%, а также оказать положительное влияние на физиологическое состояние рыб. Полученные результаты дополняют существующие представления об областях применения антиоксидантов, а также доказывают перспективность применения средств растительного происхождения в качестве антиоксидантных кормовых добавок.

Литература:

1. Абрамов, М.Г. Гематологический атлас / М.Г. Абрамов. — М.: Медицина, 1985. — 344 с.

2. Васильева, Е.Г. Изменения показателей крови тиляпии под влиянием электромагнитного поля / Е.Г. Васильева, Е.А. Быстрякова // Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство. — 2009. — №1. — С. 119–120.

3. Ермакова, Н.В. Особенности каратиноидного состава витаминной добавки, полученной на основе отходов моркови путем консервации молочнокислыми микроорганизмами / Н.В. Ермакова // Рациональное использование сырья и создание новых продуктов биотехнологического назначения: материалы междунар. науч.-практ. конф. — Орел: ООО ПФ Картуш, 2018. — С. 239.

4. Катмаков, П.С. Биометрия: учеб. пособие для вузов / П.С. Катмаков, В.П. Гавриленко, А.В. Бушов. — М.: Юрайт, 2019. — 177 с.

5. Козинец, Г.И. Атлас клеток крови и костного мозга / Г.И. Козинец. — М.: Триада-Х, 1998. — 160 с.

6. Купинский, С.В. Радужная форель — предварительные параметры стандартной модели массонакопления / C.В. Купинский, С.А. Баранов, В.Ф. Резников // Индустриальное рыбоводство в замкнутых системах: сборник научных трудов. — 1985. — С. 109–115.

7. Лакин, Г.Ф. Биометрия / Г.Ф. Лакин. — М.: Высшая школа, 1990. — 293 с.

8. Накусов, Т.Т. Изучение влияния дигидрокверцетина на систему перекисного окисления липидов (антиоксидантная защита при острой экспериментальной гипоксии) / Т.Т. Накусов, Т.Х. Шортанова, Н.И. Самойлик, Н.М. Шилина // Вопросы детской диетологии. — 2005. — Т. 3, №6. — С. 9–11.

9. Петренко, В.П. Эффективность применения витаминного премикса и комплекса микроэлементов в комбикормах для товарного карпа / В.П. Петренко // Вопросы интенсификации прудового рыбоводства: сборник научных трудов. — 1985. — С. 16–18.

10. Пономарев, С.В. Технологии выращивания и кормления объектов аквакультуры юга России / С.В. Пономарев, Е.А. Гамыгин, С.И. Никоноров, Е.Н. Пономарева, Ю.Н. Грозеску, А.А. Бахарева. — Астрахань: Нова плюс, 2002. — 264 с.

11. Пономарев, С.В. Новый лечебный осетровый комбикорм для предотвращения лордоза и сколиоза при индустриальном выращивании / С.В. Пономарев // Вестник Астраханского государственного технического университета. — 2005. — №3. — С. 62–66.

12. Правдин, И.Ф. Руководство по изучению рыб / И.Ф. Правдин. — М.: Пищевая промышленность, 1966. — 376 с.

13. Филиппович, Ю.Б. Практикум по общей биохимии / Ю.Б. Филиппович, Т.А. Егорова, Г.А. Севастьянова. — М.: Просвещение, 1975. — 318 с.

14. Abdul Jaffar, H. Effect of phosalone on haematological indices in the tilapia, Oreochromis mossambicus / H. Abdul Jaffar, V. Jaya Rani // Turk. J. Vet. Anim. Sci. — 2009. — №33 (5). — P. 407–411.

15. Akinrotimi, O.A. Effects of acclimation on haematological parameters of Tilapia guineensis (Bleeker, 1862) / O.A. Akinrotimi, E.O. Agokei // Science World Journal. — Vol. 5 (no. 4). — 2010. — P. 1–4.

16. Ahmed Hamid, S.H. Physical & Chemical Characteristics of Blood of two Fish Species (Oreochromis niloticus and Clariaslazera) / S.H. Ahmed Hamid, F.A. Mohamed Ahmed, I.M. Adam Mohammed, S.I. Mohamed Ali.— World’s Vet. — J. 3 (1). — 2013. — P. 17–20.

17. Bittencourt, N.L. Haematological and biochemical values for Nile tilapia Oreochromis niloticus cultured in semi-intensive system / N.L. Bittencourt, L.M. Molinari, D.O. Scoaris, R.B. Pedroso, C.V. Nakamura, T. Ueda-Nakamura, B.A. Filho, B.P. Filho // ActaScientiarum. — Biological Sciences Maringа. — v. 25. — №2. — 2003 — P. 385–389.

18. Castell, J.D. Report of the EIFAC, IUNS and ICES Working Group on the standardization of methodology in fish nutrition research / J.D. Castell, K. Tiews // Hamburg, Federal Republic of Germany, 21–23 March, 1979. EIFAC Tech. Pap. — Hamburg, 1979. — P. 1–24.

19. Chun-Yao C. Blood chemistry of healthy, nephrocalcinosis-affected and ozone-treated tilapia in a recirculation system, with application of discriminant analysis / Chun-Yao Chen, G.A. Wooster, R.G. Getchell, P.R. Bowser, M.B. Timmons. — Aquaculture. 2003. — P. 89–102.

20. Delgado, A. Analyses of fatty acids from different lipids in liver and muscle of sea bass (Dicentrarchuslabrax). Influence of temperature and fasting / A. Delgado, A. Estevez, P. Hortelano, M.J. Alejandre // Biochem. Physiol. — 1994. — №108. — Р. 673–680.

21. Fish bach, F. A manual of laboratory diagnostic tests. 7thed / F. Fish bach, M. Dunning. — Lppincott Williams & Wilkins, 2004. — 1291 p.

22. Guderley, H. Going with the flow in the fast lane: contrasting mitochondrial responses to thermal change / H. Guderley, J. St-Pierre // Exp. Biol. — 2002. — №205. — Р. 2237–2249.

23. Keri, A.-I. The study of growth performance and some biochemical parameters of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings fed on olive mill waste. — International Journal of Scientific and Research Publications. — Vol. 5. — Issue 4. — 2015. — P. 94–102.

24. Lovell, R.T. Selenium in fish feeds: nutritional, environment and legal aspects / R.T. Lovell // Aquacultult. Meg. — 1996. — V. 22. — №1. — P. 76–81.

25. Palíkovа, M. Selected Haematological and Biochemical Indices of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) / M. Palíková, R. Kopp, J. Mareš, S. Navrátil, Z. Kubíček, L. Chmelař, H. Banďouchová, J. Pikula // Reared in the Environment with Cyanobacterial Water Bloom. — ACTA VET. BRNO. — 2010. — P. 61–73.

26. Sargent, J. The Lipids Fish Nutrition / J. Sargent, R.J. Henderson, D.R. Tocher. — London. Academic Press. — 1989. — Р. 154–209.

27. Trinder, P. Determination of glucose in blood using glucose oxidase with an alternative oxygen acceptor / P. Trinder // Ann Clin Biochem. — 1969. — P. 24–25.

28. Van Kampen, E.J. Standardization of hemoglobinometry. The hemiglobincyanide method / E.J. Van Kampen, W.G. Zjilstra // Clin. Chim. Acta. — 1961. — Р. 538.

29. Watanabe, T. Effekt of α-tocopherol deficiency on carp. VII. The relationship between dietary levels of linoleat and α-tocopherol requirement / T. Watanabe, C. Takeuchi, M. Matsui, C. Ogino, T. Kawabata // Bull. Jap. Sci. Fish. — 1977. — V. 43. — P. 935–946.

30. Weinert, N.C. Hematology of Nile tilapia Oreochromis niloticussubjected to anesthesia and anticoagulation protocols / N.C. Weinert, J. Volpato, A. Costa, R.R. Antunes, A.C. Oliveira, C.R. Scabelo-Mattoso, M.E. Saito // Semina: Ciеncias Agrаrias, Londrina. — V. 36. — nо. 6. — Suplemento 2. — 2015. — P. 4237–4250.

1. Abramov M.G. Gematologicheskij atlas [Hematological Atlas], Moscow, 1986, 344p. (in Russian)

2. Vasilieva E.G., Bystryakova E.A. Izmeneniya pokazatelej krovi tilyapii pod vliyaniem elektromagnitnogo polya [Changes in blood parameters of tilapia under the influence of an electromagnetic field]. Vestnik of ASTU. Series: Fisheries, 2009, no. 1. pp. 119–120. (in Russian)

3. Ermakova N.V. Osobennosti karatinoidnogo sostava vitaminnoj dobavki, poluchennoj na osnove othodov morkovi putem konservacii molochnokislymi mikroorganizmami [Features of the karatinoid composition of a vitamin Supplement obtained on the basis of carrot waste by preserving lactic acid microorganisms]. Racional’noe ispol’zovanie syr’ya i sozdanie novyh produktov biotekhnologicheskogo naznacheniya: materialy mezhdunar. nauch.-prakt. konf. [Rational use of raw materials and creation of new products for biotechnological purposes: materials of the international scientific-practical conf.]. Orel, 2018, pp. 239. (in Russian)

4. Katmakov P.S., Gavrilenko P.C., Kalmakov V.P., Bosov A.V. Biometriya: ucheb. posobie dlya vuzov [Biometrics: textbook]. Moscow, 2019, 177 p. (in Russian)

5. Kozinets G.I. Atlas kletok krovi i kostnogo mozga [Atlas of blood cells and bone marrow]. Moscow, 1998, 160 p. (in Russian)

6. Kupinsky S.V., Baranov S.A., Reznikov V.F. Raduzhnaya forel’ — predvaritel’nye parametry standartnoj modeli Rainbow trout-preliminary parameters of the standard model of mass accumulation]. Sbornik nauchnyh trudov: Industrial’noe rybovodstvo v zamknutyh sistemah [Industrial fish farming in closed systems: collection of scientific papers]. Moscow, 1985, pp. 109–115. (in Russian)

7. Lakin G.F. Biometriya [Biometrics]. Moscow, 1990, 293 p. (in Russian)

8. Nakuso T.T., Shortanova T.H., Samoylik N.I., Shilina N.M. Izuchenie vliyaniya digidrokvercetina na sistemu perekisnogo okisleniya lipidov (antioksidantnaya zashchita pri ostroj eksperimental’noj gipoksii) [Study of the effect of dihydroquercetin on the lipid peroxidation system (antioxidant protection in acute experimental hypoxia)]. Questions of child nutrition, 2005, no. 6 (3), pp. 9–11. (in Russian)

9. Petrenko V.P. Effektivnost’ primeneniya vitaminnogo premiksa i kompleksa mikroelementov v kombikormah dlya tovarnogo karpa [Efficiency of application of vitamin premix and complex of microelements in compound feeds for commercial carp]. Voprosy intensifikacii prudovogo rybovodstva: sbornik nauchnyh trudov [Issues of intensification of pond fish farming: collection of scientific papers], 1985, pp. 16–18. (in Russian)

10. Ponomarev S.V., Gamygin E.A., Nikonorov S.I., Ponomareva E.N., Grozescu Yu.N., Bakhareva A.A. ekhnologii vyrashchivaniya i kormleniya ob»ektov akvakul’tury yuga Rossii [Technologies for growing and feeding aquaculture objects in the South of Russia]. Astrakhan, 2002, 264 p. (in Russian)

11. Ponomarev S.V. Novyj lechebnyj osetrovyj kombikorm dlya predotvrashcheniya lordoza i skolioza pri industrial’nom vyrashchivanii [New therapeutic sturgeon feed for prevention of lordosis and scoliosis in industrial cultivation]. Vestnik of ASTU. Series: Fisheries, 2005, no. 3, pp. 62–66. (in Russian)

12. Pravdin I.F. Rukovodstvo po izucheniyu ryb [Guide to the study of fish]. Moscow, 1966, 376 p. (in Russian)

13. Filippovich Yu.B., Egorova T.A., Sevastyanova G.A. Praktikum po obshchej biohimii [Practicum on General biochemistry]. Moscow, 1975, 318 p. (in Russian)

14. Abdul Jaffar, Jaya Rani H.V. Effect of phosalone on haematological indices in the tilapia, Oreochromis mossambicus. Turk. J. Vet. Anim. Sci., 2009, no. 33 (5), pp. 407–411.

15. Akinrotimi O.A., Agokei E.O. Effects of acclimation on haematological parameters of Tilapia guineensis (Bleeker, 1862). Science World Journal, vol.5 (no. 4), 2010, pp. 1–4.

16. Ahmed Hamid S.H., Mohamed Ahmed F.A., Adam Mohammed I.M., Mohamed Ali Physical & Chemical Characteristics of Blood of two Fish Species (Oreochromis niloticus and Clariaslazera). S.I. World’s Vet, 2013, no. 3 (1), pp. 17–20.

17. Bittencourt N.L., Molinari L.M., Scoaris D.O., Pedroso R.B., Nakamura C.V., Ueda-Nakamura T., Filho B.A., Filho B.P. Haematological and biochemical values for Nile tilapia Oreochromis niloticus cultured in semi-intensive system Acta Scientiarum. Biological Sciences Maringá, 2003, vol. 25, №2, pp. 385–389.

18. Castell J.D. Report of the EIFAC, IUNS and ICES Working Group on the standardization of methodology in fish nutrition research [EIFAC Tech. Pap]. Hamburg, 1979, рр. 1–24.

19. Chun-Yao C., Wooster G.A., Getchell R.G., P.R. Bowser, M.B. Timmons. Blood chemistry of healthy, nephrocalcinosis-affected and ozone-treated tilapia in a recirculation system, with application of discriminant analysis. Aquaculture, 2003, no. 218, pp. 89–102.

20. Delgado A., Estevez A., Hortelano P., Alejandre M.J. Analyses of fatty acids from different lipids in liver and muscle of sea bass (Dicentrarchus labrax). Influence of temperature and fasting. Biochemistry. Physiology, 1994, no. 108, pp. 673–680.

21. Fishbach F., Dunning M. A manual of laboratory diagnostic tests. Philadelphia, 2004, 1291 p.

22. Guderley H., St-Pierre J. Going with the flow in the fast lane: contrasting mitochondrial responses to thermal change. Experience. Вiology, 2002, no. 205, pp. 2237–2249.

23. Keri A.I. The study of growth performance and some biochemical parameters of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings fed on olive mill waste. International Journal of Scientific and Research Publications, 2015, no. 5 (4), pp. 94–102.

24. Lovell R.T. Selenium in fish feeds: nutritional, environment and legal aspects. Aquacultult. Meg., 1996, no. 22 (1), pp. 76–81.

25. Palíková M., Kopp R., Mareš J., Navrátil S., Kubíček Z., Chmelař L., Banďouchová H., Pikula J. Selected Haematological and Biochemical Indices of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus), reared in the environment with cyanobacterial water bloom. Acta Veterinaria Brno, 2010, no. 79 (9), pp. 61–73.

26. Sargent J., Henderson R.J., Tocher D.R. The Lipids Fish Nutrition. London, 1989, 209 р.

27. Trinder P. Determination of glucose in blood using glucose oxidase with an alternative oxygen acceptor. Ann Clin Biochem., 1969, no. 6, pp. 24–25.

28. Van Kampen E.J., Zjilstra W.G. Standardization of hemoglobinometry. The hemiglobincyanide method. Clin. Chim. Acta, 1961, no. 6, pp. 538.

29. Watanabe T., Takeuchi C. Matsui M., Ogino C., Kawabata T. Effekt of α-tocopherol deficiency on carp. VII. The relationship between dietary levels of linoleat and α-tocopherol requirement. Bull. Jap. Sci. Fish, 1977, no. 43, pp. 935–946.

30. Weinert N.C., Volpato J., Costa A., Antunes R.R., Oliveira A.C., Scabelo-Mattoso C.R., ESaito M. Hematology of Nile tilapia Oreochromis niloticus subjected to anesthesia and anticoagulation protocols. Semina: Ciеncias Agrааrias, 2015, no. 6 (36), pp. 4237–4250.

Современные технологии индустриального рыбоводства позволяют получать продукцию высокого качества. Однако стрессовые условия искусственной экосистемы (высокая плотность посадки, нарушение оптимальных гидрохимических условий) способны негативно отразиться на пищевой активности, скорости роста, привести к развитию алиментарных заболеваний и истощению антиоксидантного потенциала [3, 9, 11, 20, 22, 26].

Признаком ослабления антиоксидантной защиты организма служат потеря аппетита, снижение темпа роста, снижение активности и повышение смертности. Кроме того, отмечается мышечная дистрофия, жировая дегенерация печени, накопление жидкости в брюшной полости, гемолиз эритроцитов, снижение гематокрита [24, 29].

Дополнительное обогащение рациона биологически активными веществами (БАВ) в виде кормовых добавок, витаминов и витаминно-минеральных комплексов оказывает стимулирующее действие на организм рыб, повышая продуктивность выращиваемых рыб и увеличивая рентабельность рыбоводного предприятия.

Появление новых препаратов, обладающих антиоксидантными свойствами, позволяет совершенствовать технологию кормления и повысить прооксидантно-антиоксидантное равновесие.

В связи с тем что важным критерием выбора антиоксидантной кормовой добавки является безопасность в экологическом отношении, интерес представляют природные биоантиокислители флавоноидной природы, в частности дигидрокверцетин. Этот природный флавоноид, выделенный из древесины лиственницы, обладает широким спектром свойств, например участвует в синтезе витамина Р, способствует уменьшению проницаемости и ломкости капилляров и др. [8].

Целью исследований являлось изучение влияния биофлавоноида дигидрокверцетина и иммуностимулятора арабиногалактан на эффективность выращивания и физиологическое состояние молоди гибрида тиляпии Oreochromis mossambicus × Oreochromis niloticus.

Экспериментальные работы проводили на базе Инновационного центра «Биоаквапарк — НТЦ аквакультуры» ФГБОУ ВО «Астраханский государственный технический университет». Объектом исследования был выбран популярный объект аквакультуры — гибрид тиляпии Oreochromis mossambicus × Oreochromis niloticus.

Для Цитирования:
С. В. Пономарев, Ю. В. Федоровых, А. Б. Ахмеджанова, О. А. Левина, В. А. Поспелов, С. В. Цулимов, А. Б. Гаврилов, Эффективность применения биофлавоноидов в продукционных кормах для перспективных объектов аквакультуры. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2020;10.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: