По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 616.61-002-053.3

Быстропрогрессирующий нефрит в клинической практике

Соболева Валентина Николаевна кандидат медицинских наук, доцент кафедры госпитальной терапии № 1 лечебного факультета РНИМУ им. Н. И. Пирогова
Гордеев Иван Геннадьевич профессор, заведующий кафедрой госпитальной терапии № 1 лечебного факультета РНИМУ им. Н. И. Пирогова
Волов Николай Александрович кандидат медицинских наук доцент кафедры госпитальной терапии № 1 лечебного факультета РНИМУ им. Н. И. Пирогова, E-mail: drvolov@yandex.ru
Машукова Юлия Михайловна кандидат медицинских наук, доцент кафедры госпитальной терапии № 1 лечебного факультета РНИМУ им. Н. И. Пирогова
Сидоров Илья Владимирович студент 6-го курса лечебного факультета РНИМУ им. Н. И. Пирогова

В статье обобщены данные об эпидемиологии, этиологии и основных звеньях патогенеза быстропрогрессирующего гломерулонефрита. Также представлены пять основных иммунопатогенетических типов экстракапиллярного гломерулонефрита, клинические проявления, прогноз и влияние лечения на исход заболевания. В качестве иллюстрации изложенного материала представлен клинический пример, подтверждающий трудности диагностики заболевания.

Литература:

1. Мухин Н. А., Шилов Е. М. Быстропрогрессирующий гломерулонефрит // Нефрология. Национальное руководство, краткое издание. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2014. — С. 210–215.

2. Augusto J.-F., Sayegh J., Delapierre L. et al. Addition of plasma exchange to glucocorticosteroids for the treatment of severe Henoch-Schönlein purpura in adults: a case series // Am J Kidney Dis.2012. — Vol. 59. — P. 663–669.

3. Bandak G., Jones B.A., Li J. et al. Rituximab for the treatment of refractory simultaneous antiglomerular basement membrane (anti-GBM) and membranous nephropathy // Coin Kidney J. — 2014. — Vol. 7. — P. 53–56.

4. Bollee G., Flamant M., Schordan S. et al. Epidermal growth factor receptor promotes glomerular injury and renal failure in rapidly progressive crescentic glomerulonephritis // Nat Med. — 2011. — Vol. 17. — P. 1242–1250.

5. Bontscho J., Schreiber A., Manz R. A. et al. Myeloperoxidase-specifi c plasma cell depletion by bortezomib protects from anti-neutrophil cytoplasmic autoantibodies-induced glomerulonephritis // J Am Soc Nephrol. — 2011. — Vol. 22. — P. 336–348.

6. Davies R. J., Sangle S. R., Jordan N. P. et al. Rituximab in the treatment of resistant lupus nephritis: therapy failure in rapidly progressive crescentic lupus nephritis // Lupus. — 2013. — Vol. 22. — P. 574–582.

7. Díaz-Lagares C., Croca S., Sangle S. et al. Effi cacy of rituximab in 164 patients with biopsy-proven lupus nephritis: pooled data from European cohorts // Autoimmun Rev. — 2012. — Vol. 11. — P. 357–364.

8. El-Husseini A., Ahmed A., Sabucedo A. et al. Refractory Henoch-Schonlein purpura: atypical etiology and management // J Ren Care. — 2013. — Vol. 39. — P. 77–81.

9. Fomegné G., Dratwa M., Wens R. et al. Goodpasture disease // Rev Med Brux. — 2006. — Vol. 27. — P. 162–166.

10. Geetha D., Specks U., Stone J.H. et al. Rituximab versus cyclophosphamide for ANCA-associated vasculitis with renal involvement // J Am Soc Nephrol. — 2015. — Vol. 26. — № 4. — P. 976-985.

11. Giorgini A., Brown H. J., Sacks S. H., Robson M. G. Toll-like receptor-4 stimulation triggers crescentic glomerulonephritis by multiple mechanisms including a direct eff ect on renal cells // Am J Pathol. — 2010. — Vol. 177. — P. 644–653.

12. Hopfer H., Holzer J., Hunemorder S. et al. Characterization of the renal CD4+ T-cell response in experimental autoimmune glomerulonephritis // Kidney Int. — 2012. — Vol.82. — P. 60–71.

13. Hu W., Liu C., Xie H. et al. Mycophenolate mofetil versus cyclophosphamide for inducing remission of ANCA vasculitis with moderate renal involvement // Nephrol Dial Transplant. — 2008. — Vol. 23. — P. 1307–1312.

14. Iyoda M., Shibata T., Kawaguchi M. et al. Preventive and therapeutic eff ects of imatinib in WistarKyoto rats with anti-glomerular basement membrane glomerulonephritis // Kidney Int. — 2009. — Vol. 75. — P. 1060–1070.

15. Iyoda M., Shibata T., Wada Y. et al. Long- and short-term treatment with imatinib attenuates the development of chronic kidney disease in experimental anti-glomerular basement membrane nephritis // Nephrol Dial Transplant. — 2013. — Vol. 28. — P. 576–584.

16. Jayne D. R. W., Gaskin G., Rasmussen N. et al. Randomized trial of plasma exchange or high-dosage methylprednisolone as adjunctive therapy for severe renal vasculitis // J Am Soc Nephrol. — 2007. — Vol. 18. — P. 2180–2188.

17. Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO) Glomerulonephritis Work Group. KDIGO Clinical Practice Guideline for Glomerulonephritis // Kidney inter. Suppl. — 2012. — Vol. 2. — P. 139–274.

18. Lane S. E., Scott D. G., Heaton A., Watts R. A. Primary renal vasculitis in Norfolk—increasing incidence or increasing recognition? // Nephrol Dial Transplant. — 2000. — Vol. 15. — P. 23–27.

19. Mahr A., Guillevin L., Poissonnet M., Aymé S. Prevalences of polyarteritis nodosa, microscopic polyangiitis, Wegener’s granulomatosis, and Churg–Strauss syndrome in a French urban multiethnic population in 2000: a capture–recapture estimate // Arthritis Rheum. — 2004. — Vol. 51. — P. 92–99.

20. Mark F., Christopher I. Clinical Companion in Nephrology. Glasgow. — 2015. — P. 95–98.

21. McAdoo S. P., Reynolds J., Bhangal G. et al. Spleen tyrosine kinase inhibition attenuates autoantibody production and reverses experimental autoimmune GN // J Am Soc Nephrol. — 2014. — Vol. 25. — P. 2291–2302.

22. Merrill J. T., Neuwelt C. M., Wallace D. J. et al. Effi cacy and safety of rituximab in moderately-to-severely active systemic lupus erythematosus: the randomized, double-blind, phase II/III systemic lupus erythematosus evaluation of rituximab trial // Arthritis Rheum. — 2010. — Vol. 62. — P. 222–233.

23. Onishi R. M., Gaff en S. L. Interleukin-17 and its target genes: mechanisms of interleukin-17 function in disease // Immunology. — 2010. — Vol. 129. — №. 3. — P. 311—321.

24. Rovin B. H., Furie R., Latinis K. et al. Effi cacy and safety of rituximab in patients with active proliferative lupus nephritis: the Lupus Nephritis Assessment with Rituximab study // Arthritis Rheum. — 2012. — Vol. 64. — P. 1215–1226.

25. Schena F. P. Survey of the Italian Registry of Renal Biopsies. Frequency of the renal diseases for 7 consecutive years. The Italian Group of Renal Immunopathology // Nephrol Dial Transplant. — 1997. — Vol. 12. — P. 418–426.

26. Schless B., Yildirim S., Beha D. et al. Rituximab in two cases of Goodpasture’s syndrome // NDT Plus. — 2009. — Vol. 2. — P. 225–227.

27. Shah Y., Mohiuddin A., Sluman C. et al. Rituximab in anti-glomerular basement membrane disease // QJM. — 2012. — Vol. 105. —Р. 195–197.

28. Silva F., Specks U., Kalra S. et al. Mycophenolate mofetil for induction and maintenance of remission in microscopic polyangiitis with mild to moderate renal involvement–a prospective, open-label pilot trial // Clin J Am Soc Nephrol. — 2010. — Vol. 5. — P. 445–453.

29. Smith J., McDaid J. P., Bhangal G. et al. A spleen tyrosine kinase inhibitor reduces the severity of established glomerulonephritis // J Am Soc Nephrol. — 2010. — Vol. 21. — P. 231–236.

30. Stone J. H., Merkel P. A., Spiera R. et al. Rituximab versus cyclophosphamide for ANCA-associated vasculitis // N Engl J Med. — 2010. — Vol. 363. — P. 221–232.

31. Syeda U. A., Singer N. G., Magrey M. Antiglomerular basement membrane antibody disease treated with rituximab: a case-based review // Semin Arthritis Rheum. — 2013. — Vol. 42. — P. 567–572.

32. Turner J. E., Krebs C., Tittel A. P. et al. IL-17A production by renal γδ T cells promotes kidney injury in crescentic GN // J Am Soc Nephrol. — 2012. — Vol. 23. — P. 1486–1495.

33. Wallace E., Fogo A. B., Schulman G. Imatinib therapy for non-infection-related type II cryoglobulinemia with membranoproliferative glomerulonephritis // Am J Kidney Dis. — 2012. — Vol. 59. — P. 122–125.

34. Walsh M., Casian A., Flossmann O. et al. Long-term follow-up of patients with severe ANCAassociated vasculitis comparing plasma exchange to intravenous methylprednisolone treatment is unclear // Kidney Int. — 2013. — Vol. 84. — P. 397–402.

35. Walsh M., Catapano F., Szpirt W. et al. Plasma exchange for renal vasculitis and idiopathic rapidly progressive glomerulonephritis: a meta-analysis // Am J Kidney Dis. — 2011. — Vol. 57. — P. 566–574.

36. Yan L., Junjun Z., Dongwei L. et al. Retrospective study of myco-phenolate mofetil treatment in IgA nephropathy with proliferative pathological phenotype // Chin Med J (Engl). — 2014. — Vol. 127. — P. 102–108.

Быстропрогрессирующий гло мерулонефрит (БПГН) является наиболее агрессивной фор мой гломерулонефрита. Он характеризуется подострой почечной недостаточностью, т. е. почечной недостаточностью, которая развивается в течение нескольких дней, недель (острое повреждение почек), месяцев или нескольких лет (хронические заболевания почек). Важно отметить, что при несвоевременной диагностике и лечении пациенты очень быстро приобретают пред- или терминальную почечную недостаточность и становятся диализозависимыми [20].

Среди причин БПГН наиболее важными являются антинейтрофильные цитоплазматические антитела (АНЦА) — положительные системные васкулиты, микроскопический полиартериит, наличие антител против базальной мембраны клубочков (антиБМК), гранулематоз Вегенера, люпус-нефрит, IgA-нефропатия. Однако на данный момент остается много вопросов в плане выяснения патогенеза заболевания. В настоящее время предприняты попытки объяснить патогенез БПГН с АНЦА и антиБМК.

Так, Giorgini и соавт. (2010 г.) проводили почечно-клеточную стимуляцию TLR4 (Толл-подобный рецептора 4) на основе экспериментальной модели нефротоксического гломерулонефрита и показали, что такая стимуляция способна вызвать БПГН. Другие исследования показали, что TLR4 может быть активирован с помощью врожденного иммунного ответа на молекулы, оставшиеся от погибших клеток в результате какого-либо повреждения почек. Таким образом, такие молекулы выполняют роль иммуностимуляторов для системы TLRs, что приводит к развитию БПГН [11]. Hopfer и соавт. (2012 г.) отдают важное место в развитии БПГН Th-1 Th-17 CD4(+) T-лимфоцитам при исследовании на экспериментальной модели аутоиммунного гломерулонефрита. В своих экспериментах они выявили макрофагальную и Т-клеточную инфильтрацию интерстиция при развитии полулунного гломерулонефрита, при этом обнаруживались аутореактивные Т-лимфоциты и лимфоциты, продуцирующие интерферон-гамма, что усиливало воспалительную реакцию и приводило к повреждению клубочков [12].

В настоящий момент в развитии как БПГН, так и многих ревматических заболеваний определенная роль отведена ИЛ-17А, который синтезируется широким спектром иммунокомпетентных клеток, включая тучные клетки, нейтрофилы, дендритные клетки, γδ-Т-лимфоциты, макрофаги, естественные киллерные клетки [12]. Установлено, что в начале заболевания основным источником ИЛ-17А являются именно γδ-Т-лимфоциты, а также в небольшой степени — нейтрофилы. На более поздних этапах воспаления основным источником, поддерживающим концентрацию ИЛ-17 А, являются CD4+Th17-клетки. Кроме того, на экспериментальной модели гломерулонефрита показано, что истощение γδ-Т-клеток, а также снижение производства ИЛ-17А в них позволяют сократить нейтрофильную инфильтрацию клубочков и образование полулуний, что можно в дальнейшем использовать в терапевтическом подходе [32].

Для Цитирования:
Соболева Валентина Николаевна, Гордеев Иван Геннадьевич, Волов Николай Александрович, Машукова Юлия Михайловна, Сидоров Илья Владимирович, Быстропрогрессирующий нефрит в клинической практике. Терапевт. 2017;7.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: