По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 617-089

Антибиотикорезистентность: что нужно знать практическому врачу?

С.К. Зырянов кафедра общей и клинической фармакологии РУДН

Проблемы в лечении инфекционного процесса зачастую связаны с неадекватным выбором антибактериального препарата, что обусловлено незнанием локального микробного пейзажа и состояния резистентности проблемных возбудителей. Выбор антибиотика является одним из критически важных факторов, определяющих успешность лечения. Знание механизмов антибиотикорезистентности основных возбудителей, разумное назначение имеющихся лекарственных технологий, оценка всех рисков в использовании антибактериальных препаратов позволяет повысить эффективность лечения инфекционного процесса.

Литература:

1. Köck R., Becker K., Cookson B. et al. Methicillinresistant Staphylococcus aureus (MRSA): burden of disease and control challenges in Europe // Euro Surveill. — 2010. — 15 (41). — 1968 с.

2. Basak S., Malick S.K., Bose S. Community associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus — an emergency pathogen: are we aware? // J. Clin. Diagn. Res. 2010. — 4. — 2111–2115.

3. Geiss H. K, Mack D., Seifert H. Identifizierung von speziellen Resistenzmechanismen und Interpretation von Ergebnissen der AntibiotikaEmpfindlichkeitstestung bei grampositiven und gramnegativen // Erregern. Chemother J. — 2004. — 13. — 116.

4. Fomda B.A., Thokar M.A., Khan A., Bhar J.A. et al. Nasal carriage of Methicillin-resistant S. aureus among healthy population of Kashmir, India // Indian J.Md. Microbiol. — 2014. — 32. — P. 39–43.

5. Almeida S. T., Nunes S., Paulo A.C., Faria N.A. et al. Prevalence, risk factors, and epidemiology of methicillinresistant S. aureus carried by adults over 60 years of age // eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. — 2015. — 34 (3). — P. 593–600.

6. Shaw A.G., Vento T.J., Mende K., Kreft R. E. et al. Detection of methicillin-resistant and methicillin-susceptible S. aureus colonization of healthy military personnel by traditional culture, PCR, and mass spectrometry // Scand. J. Infect. Dis. — 2013. — 45 (10). — P. 752–759.

7. Martinez-Ruiz F.J., Carrillo-Espindola T.Y., Bustos-Martinez J., Hamdan-Partida A. et al. Higher prevalence of methicillin-resistant S. aureus among dental students // J. Hosp. Infect. — 2014. — 86 (3). — P. 216–218.

8. Gostev V., Kruglov A., Soldatova S., Popova I., Zyryanov S., Sidorenko S. Molecular epidemiology and nasal carriage of Staphylococcus aureus and methicillin-resistant S.aureus among healthy adults / 26th European congress of clinical microbiology and infectious diseases. Amsterdam, April, 08–12, 2016. — Abstract#5687

9. Козлов Р.С., Сивая О.В., Кречикова О.И., Иванчик Н.В. Группа исследователей проекта «ПеГАС». Динамика резистентности Streptococcus pneumoniae к антибиотикам в России за период1999–2009 гг. Клин Микробиол Антимикроб Химиотер. 2010; 12 (4): 329–341.

10. Козлов Р.С., Сухорукова М.В., Сивая О.В., Иванчик Н.В. Чувствительность к антимикробным препаратам клинических штаммов Streptococcus pneumoniae, выделенных в различных регионах РФ в 2010–2013 гг. Клин Микробиол Антимикроб Химиотер. 2015; 17 (2), приложение 1: 31.

11. Barbier F., Andremont A., Wolff M., Bouadma L. (2013). Hospital-acquired pneumonia and ventilator-associated pneumonia: recent advances in epidemiology and managment. Curr Opin Pulm Med 19 (3): 216–228.

12. REA-Raisin Network (2012) Surveillance of nosocomial infections in critically ill adult patients, France, 2012. http://www.cclinparisnord.org. Accessed 26 Dec 2014.

13. Rosenthal V.D., Bijie H., Maki D.G., Mehta Y., Apisarnthanarak A., Medeiros E.A. et al. (2012). International Nosocomial Infection Control Consortium (INICC) report, data summary of 36 countries, for 2004–2009. Am J Infect Control 40 (5): 396–407.

14. Ambler R.P. (1980) The structure of beta-lactamases. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci 289 (1036): 321–331.

15. Samaha-Kfoury J.N., Araj G. F. Recent developments in -lactamases and extended spectrum β-lactamases // BMJ. — 2003. — 27. — 1209–1213.

16. Livermore D.M. β-Lactamase-mediated resistance and opportunity for its control // Journal of Antimicrobial Chemotherapy. — 1998. — 41 (suppl. D). — 25–41.

17. Lacey R.W. Antibiotic resistance in Staphylococcus aureus and streptococci // British Medical Bulletin. — 1984. — 40. — 77–83.

18. Livermore D.M. Do β-lactamases trap cephalosporins? // Journal of Antimicrobial Chemotherapy. — 1985. —

15. — 511–4.

19. Jacoby G.A., Han P., Alvarez M., Tenover F. Survey of extended-spectrum-lactamase (ESBL) production in US clinical isolates // Program and Abstracts of the 35th Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy. — American Society for Microbiology, Washington, DC. — San Francisco, CA. — 1995. — Abstract C40. — P. 46.

20. Bauernfeind A., Stemplinger I., Jungwirth R., Ernst S., Casellas J.M. (1996). Sequences of beta-lactamase genes encoding CTX–M-1 (MEN-1) and CTX–M-2 and relationship of their amino acid sequences with those of other beta-lactamases. Antimicrob Agents Chemother 40 (2): 509–513.

21. Matsumoto Y., Ikeda F., Kamimura T., Yokota Y., Mine Y. (1998). Novel plasmid-mediated beta-lactamase from Escherichia coli that inactivates oxyimino-cephalosporins. Antimicrob Agents Chemother 32:1243–1246.

22. Barthelemy M., Peduzzi J., Bernard H., Tancrиde C., Labia R. (1992). Close amino acid sequence relationship between the new plasmid-mediated extended-spectrum beta-lactamase MEN-1 and chromosomally encoded enzymes of Klebsiella oxytoca. Biochim Biophys Acta 1122 (1): 15–22.

23. D’Andrea M.M., Arena F., Pallecchi L., Rossolini G.M. (2013). CTX–M-type beta-lactamases: a successful story of antibiotic resistance. Int J Med Microbiol 303 (6–7): 305–317.

24. Woerther P. L., Burdet C., Chachaty E., Andremont A. (2013). Trends in human fecal carriage of extended-spectrum beta-lactamases in the community: toward the globalization of CTX–M. Clin Microbiol Rev 26 (4): 744–758.

25. Ben-Ami R., Schwaber M.J., Navon-Venezia S., Schwartz D., Giladi M., Chmelnitsky I. et al. (2006). Influx of extendedspectrum beta-lactamase- producing Enterobacteriaceae into the hospital. Clin Infect Dis 42 (7): 925–934.

26. Ruppй E., Pitsch A., Tubach F., de Lastours V., Chau F., Pasquet B. et al. (2012). Clinical predictive values of extendedspectrum beta-lactamase carriage in patients admitted to medical wards. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 31 (3): 319–325.

27. Kantele A., Laaveri T., Mero S., Vilkman K., Pakkanen S.H., Ollgren J. et al. (2015). Antimicrobials increase travelers’ risk of colonization by extended-spectrum betalactamase-producing Enterobacteriaceae. Clin Infect Dis 60 (6): 837–846.

28. Ruppй E., Armand-Lefevre L., Estellat C., Consigny P.H., El Mniai A., Boussadia Y. et al. (2015). High rate of acquisition but short duration of carriage of multidrug-resistant Enterobacteriaceae after travel to the tropics. Clin Infect Dis. doi:10.1093/cid/civ333.

29. Сухорукова М.В., Эйдельштейн М.В., Склеенова Е.Ю. и др. Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Acinetobacter spp. в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования МАРАФОН в 2011–2012 гг. Клин Микробиол Антимикроб Химиотер. 2014; 16 (4): 266–272.

30. Livermore D.M., Hope R., Fagan E.J., Warner M., Woodford N., Potz N. (2006). Activity of temocillin against prevalent ESBL-and AmpC-producing Enterobacteriaceae from south-east England. J Antimicrob Chemother 57 (5): 1012–1014.

31. 50. Soubirou J. F., Rossi B., Couffignal C., Ruppe E., Chau F., Massias L. et al. (2015). Activity of temocillin in a murine model of urinary tract infection due to Escherichia coli producing or not producing the ESBL CTX–M-15. J Antimicrob Chemother 70 (5): 1466–1472.

32. Lepeule R., Ruppe E., Le P., Massias L., Chau F., Nucci A. et al. (2012). Cefoxitin as an alternative to carbapenems in a murine model of urinary tract infection due to Escherichia coli harboring CTX–M-15-type extended-spectrum beta-lactamase. Antimicrob Agents Chemother 56 (3): 1376–1381.

33. Balakrishnan I., Awad-El-Kariem F.M., Aali A., Kumari P., Mulla R., Tan B. et al. (2011). Temocillin use in England: clinical and microbiological efficacies in infections caused by extended-spectrum and/or derepressed AmpC beta-lactamase-producing Enterobacteriaceae. J Antimicrob Chemother 66 (11): 2628–2631.

34. European Committe on Antimicrobial Susceptibility Testing — Comit de l’antibiogramme de la Sociйtй Franзaise de Microbiologie (2015) Guidelines 2015. http://www.eucast.org. Accessed 3 Mar 2015.

35. Vardakas K.Z., Tansarli G. S., Rafailidis P. I., Falagas M. E. (2012). Carbapenems versus alternative antibiotics for the treatment of bacteraemia due to Enterobacteriaceae producing extended-spectrum beta-lactamases: a systematic review and meta-analysis. J Antimicrob Chemother 67 (12): 2793–2803.

36. Retamar P., Lopez-Cerero L., Muniain M.A., Pascual A., Rodriguez-Bano J. (2013). Impact of the MIC of piperacillintazobactam on the outcome of patients with bacteremia due to extended-spectrum-betalactamaseproducing Escherichia coli. Antimicrob Agents Chemother 57 (7): 3402–3404.

37. Sanchez M. (2015). Antibiotic resistance in the opportunistic pathogen Stenotrophomonas maltophilia. Front Microbiol 6: 658.

38. Bonomo R., Szabo D. (2006). Mechanisms of multidrug resistance in Acinetobacter species and Pseudomonas aeruginosa. Clin Infect Dis 43: S49 — S56.

39. Schweizer H. (2003). Efflux as a mechanism of resistance to antimicrobials in Pseudomonas aeruginosa and related bacteria: unanswered questions. Genet Mol Res 2: 48–62.

40. Meletis G., Exindari M., Vavatsi N., Sofianou D. and Diza E. (2012). Mechanisms responsible for the emergence of carbapenem resistance in Pseudomonas aeruginosa. Hippokratia 16: 303–307.

41. Poirel L., Potron A. and Nordmann P. (2012). OXA-48-like carbapenemases: the phantom menace. J Antimicrob Chemother 67: 1597–1606.

42. Watanabe M., Iyobe S., Inoue M. and Mitsuhashi S. (1991). Transferable imipenem resistance in Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob Agents Chemother 35: 147–151.

43. Lauretti L., Riccio M., Mazzariol A., Cornaglia G., Amicosante G., Fontana R. et al. (1999). Cloning andcharacterization of blaVIM, a new integron-borne metallo-beta-lactamase gene from a Pseudomonas aeruginosa clinical isolate. Antimicrob Agents Chemother 43: 1584–1590.

44. Dortet L., Poirel L. and Nordmann P. (2014). Worldwide dissemination of the NDM-type carbapenemases in Gram- negative bacteria. Biomed Res Int 2014: 249856.

45. Fursova N. et al. The spread of blaOXA48 and blaOXA244 carbapenemase genes among Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis and Enterobacter spp. isolated in Moscow, RussiaAnn Clin Microbiol Antimicrob (2015) 14: 46.

46. Miyakis S., Pefanis A. and Tsakris A. (2011). The challenges of antimicrobial drug resistance in Greece. Clin Infect Dis 53: 177–184.

47. Tzouvelekis L., Markogiannakis A., Piperaki E., Souli M. and Daikos G. (2014). Treating infections caused by carbapenemase-producing Enterobacteriaceae. Clin Microbiol Infect 20: 862–872.

48. Akajagbor D., Wilson S., Shere-Wolfe K., Dakum P., Charurat M. and Gilliam B. (2013). Higher incidence of acute kidney injury with intravenous colistimethate sodium compared with polymyxin B in critically ill patients at a tertiary care medical center. Clin Infect Dis 57: 1300–1303.

49. Falagas M., Kastoris A., Kapaskelis A. and Karageorgopoulos D. (2010). Fosfomycin for the treatment of multidrugresistant, including extendedspectrum beta-lactamase producing, Enterobacteriaceae infections: a systematic review. Lancet Infect Dis 10: 43–50.

50. Sader H., Farrell D., Flamm R. and Jones R. (2014). Variation in potency and spectrum of tigecycline activity against bacterial strains from U. S. medical centers since its approval for clinical use (2006 to 2012). Antimicrob Agents Chemother 58: 2274–2280.

51. Morrill H., Pogue J., Kaye K. and LaPlante K. (2015). Treatment options for carbapenem-resistant Enterobacteriaceae infections. Open Forum Infect Dis 2: ofv050.

52. Juan C., Macia M.D., Gutierrez O., Vidal C., Perez J. L., Oliver A. (2005). Molecular mechanisms of beta-lactam resistance mediated by AmpC hyperproduction in Pseudomonas aeruginosa clinical strains. Antimicrob Agents Chemother 49 (11): 4733–4738.

53. Lister P.D., Gardner V.M., Sanders C.C. (1999). Clavulanate induces expression of the Pseudomonas aeruginosa AmpC cephalosporinase at physiologically relevant concentrations and antagonizes the antibacterial activity of ticarcillin. Antimicrob Agents Chemother 43 (4): 882–889.

54. Lister P.D., Wolter D.J., Hanson N.D. (2009). Antibacterial-resistant Pseudomonas aeruginosa: clinical impact and complex regulation of chromosomally encoded resistance mechanisms. Clin Microbiol Rev 22 (4): 582–610.

55. Сухорукова М.В., Эйдельштейн М.В., Склеенова Е.Ю. и др. Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Pseudomonas aeruginosa в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования МАРАФОН в 2011–2012 гг. Клин Микробиол Антимикроб Химиотер. 2014; 16 (4): 273–279.

56. Munoz-Price L. S., Weinstein R.A. (2008). Acinetobacter infection. N Engl J Med 358 (12): 1271–1281.

57. Kempf M., Rolain J.M. (2012). Emergence of resistance to carbapenems in Acinetobacter baumannii in Europe: clinical impact and therapeutic options. Int J Antimicrob Agents 39 (2): 105–114.

58. Turton J. F., Ward M. E., Woodford N., Kaufmann M. E., Pike R., Livermore D.M. et al. (2006). The role of ISAba1 in expression of OXA carbapenemase genes in Acinetobacter baumannii. FEMS Microbiol Lett 258 (1): 72–77.

59. Сухорукова М.В., Эйдельштейн М.В., Склеенова Е.Ю. и др. Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Acinetobacter spp. в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования МАРАФОН в 2011–2012 гг. Клин Микробиол Антимикроб Химиотер. 2014; 6 (4): 266–272.

60. CDC (2013). Antibiotic Resistance Threats to the United States. Atlanta, GA: Centers for Disease Control and Prevention. www.cdc.gov/drugresistance/threatreport-2013/index.html (accessed 10 September 2015).

61. Zasowski E., Rybak J. and Rybak M. (2015). The-lactams strike back: ceftazidime-avibactam. Pharmacotherapy 35: 755–770.

Бактериальная резистентность зачастую является фактором, определяющим успех лечения инфекционной патологии. Можно быть хорошо ориентированным в спектре потенциальных возбудителей того или иного заболевания, выбрать подходящий антибактериальный препарат, но незнание ситуации с локальной резистентностью сведет на нет все усилия врача и шансы пациента на благоприятный исход.

В этой связи знание свойств локального микробного пейзажа, основных механизмов резистентности и путей ее преодоления чрезвычайно важны для врача любой специальности, при этом необходимо подчеркнуть, что актуальность обсуждаемой проблемы крайне велика для врачей, работающих как в стационарах, так и в амбулаторных условиях.

MRSA — наиболее часто встречающийся полирезистентный возбудитель внутрибольничных инфекций в Европе. Согласно данным Европейского центра по контролю за инфекциями (ЕСDС), 170 000 MRSA инфекций в год, из которых около 5 тысяч заканчиваются летально, обусловливают более 1 миллиона дополнительных койкодней и обходятся европейской системе здравоохранения в сумму около 380 миллионов евро [1]. Данные многочисленных исследований свидетельствуют о том, что MRSA являются причиной развития нозокомиальной инфекции в 20–80 % случаев [2].

Различают два основных типа резистентных стафилококков и соответствующих механизмов [3].

Стафилококки, резистентные к пенициллину, составляют почти 80 % клинически значимых изолятов. Этот тип резистентности обусловлен выработкой пенициллиназы, которая разрушает амино- и уреидопенициллины, но не действует на полусинтетические пенициллины (метициллин и оксациллин), а также на цефалоспорины и карбапенемы. Синтез пенициллиназы индуцируется бета-лактамными антибиотиками.

Стафилококки, резистентные к метициллину (S.aureus и 60–80 % коагулазонегативных стафилококков). Как известно, β-лактамные антибиотики являются субстратными аналогами и ковалентны серинактивному центру пенициллинсвязывающих (или шунтирующих) белков (ПСБ), которые необходимы для построения клеточной стенки стафилококка. Связь ПСБ с β-лактамами необратима и приводит к гибели стафилококков. Различают по крайней мере 5 различных ПСБ, из которых ПСБ2а обладает почти в тысячу раз меньшим аффинитетом к β-лактамам и поэтому способен выдержать атаку антибиотиков. Этим объясняется перекрестная резистентость метициллинустойчивых стафилококков ко всем β-лактамным антибиотикам. ПСБ кодируются хромосомными генами, среди которых ген mecA отвечает за синтез ПСБ2а. Этот ген присутствует только у метициллинрезистентных стафилококков (как у S. aureus, так и у коагулазонегативных). Однако фенотипическая экспрессия гена mecA очень вариабельна и зависит от многих факторов, например от питательной среды, температуры и т. д. По величине минимальной подавляющей концентрации (МПК) различают штаммы с гомогенным (МПК > 50 мг/мл) и гетерогенным (МПК > 2 мг/мл) типом экспрессии mecA. У гетерогенных штаммов резистентной может быть только одна из 108 клеток. Кроме того, у погранично резистентных к оксациллину штаммов (≥ 2 мг/мл) возможны другие механизмы. Встречаются штаммы (например, клон ST25), которые, благодаря гиперпродукции β- лактамазы, частично теряют чувствительность к оксациллину (так называемые BORSA — borderline oxacillin resistent S.aureus — погранично резистентные штаммы). Описаны также штаммы S.aureus с модифицированными ПСБ (MODSA). У обоих вариантов «ложных» MRSA отсутствует ген mecA и, соответственно, ПСБ2а. BORSA и MODSA встречаются достаточно редко, но обусловливают необходимость MRSAподтверждающих тестов при обнаружении фенотипической резистентности к оксациллину обычными методами (диски или МПК). Ложные оксациллинрезистентные штаммы обычно чувствительны к цефокситину. Таким образом, фенотипическое определение устойчивости или чувствительности к цефокситину (диффузия в агаре или МПК) может служить дополнительным подтверждением статуса MRSA.

Для Цитирования:
С.К. Зырянов, Антибиотикорезистентность: что нужно знать практическому врачу?. Хирург. 2016;8.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: