По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.3.09 DOI:10.33920/sel-09-2507-04

Выращивание ладожской палии в холодноводном бассейновом хозяйстве с применением иммуномодулятора «Ронколейкина»

Т.А. Нечаева Санкт-Петербургский аграрный государственный университет, Россия, Санкт-Петербург, г. Пушкин, E-mail: tamara.73@list.ru
Г.И. Пронина РГАУ — Московская сельскохозяйственная академия им. К.А. Тимирязева, Россия, Москва, E-mail: g.pronina@rgau-msha.ru
В.А. Назаров ИП Романов, Россия, Ленинградская область, Ломоносовский район, д. Лопухинка
М.И. Ковальчук ИП Романов, Россия, Ленинградская область, Ломоносовский район, д. Лопухинка, E-mail: m.kovalchyk@list.ru
С.А. Кошелева ИП Романов, Россия, Ленинградская область, Ломоносовский район, д. Лопухинка
А.А. Белинский РГАУ — Московская сельскохозяйственная академия им. К.А. Тимирязева, Россия, Москва
М.А. Тутрикова РГАУ — Московская сельскохозяйственная академия им. К.А. Тимирязева, Россия, Москва

Ладожская палия — озерная форма арктического гольца, нуждается в искусственном воспроизводстве для пополнения запасов естественной популяции Ладожского озера. Это перспективный объект аквакультуры для товарного производства и любительского рыболовства. Отличается эффектным внешним видом и прекрасными вкусовыми качествами. Однако крайне требовательна к условиям содержания, кормления и более чувствительна к бактериальным и паразитарным болезням, чем другие лососевые. Даже в оптимальных условиях холодноводного бассейнового хозяйства возможны ухудшение эпизоотического состояния и снижение иммунофизиологического статуса. Как показали исследования, проведенные на радужной форели и атлантическом лососе, решение проблемы возможно при использовании для коррекции иммунитета препарата «Ронколейкин». В 2024 году в холодноводном бассейновом хозяйстве ИП Романов (Ленинградская область) были проведены исследования по применению данного препарата у сеголеток ладожской палии. Препарат вводили перорально с кормом путем орошения в дозировке 6000 МЕ на 1 кг массы тела курсом три дня в первое кормление. Были проведены последовательно два курса профилактического кормления, перерыв между ними — 10 дней. Средняя масса тела в начале эксперимента в контроле была 13,6±0,41 г, в опыте — 14,0±0,43 г. В конце эксперимента средняя масса тела в контроле достигла 19,0±0,50 г, в опыте — 22,0±0,48 г (р ≤ 0,001). При этом достигнутый эффект сохранялся в течение месяца после завершения курса препарата. К концу наблюдений в экспериментальной группе абсолютный прирост в 1,7 раза выше, чем в контроле, а относительная скорость роста — в 1,4 раза. У подопытных рыб в лейкограмме выявлено отсутствие эозинофилов и базофилов, что свидетельствует об отсутствии воспалительного процесса в организме и лучшем физиологическом состоянии. Это позволяет рекомендовать повышенную дозировку 6000 МЕ на 1 кг ихтиомассы для ладожской палии.

Литература:

1. Борисовская, А.А. Разнообразие палии Salvelinus alpinus ФСГЦР Ропша по данным анализа митохондриальной ДНК / А.А. Борисовская, О.В. Апаликова, В.М. Голод, В.Ю. Паньков // Актуальные вопросы рыболовства, рыбоводства (аквакультуры) и экологического мониторинга водных экосистем: материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 90-летию Азовского научно-исследовательского института рыбного хозяйства. — Ростов-на-Дону, 2018. — С. 28–32. — DOI 10.25283/2223-4594-2018-3-137-143.

2. Королева, И.М. Гематологические показатели сига обыкновенного Coregonus lavaretus в водоемах Кольского севера / И.М. Королева // Труды ВНИРО. — 2016. — Т. 162. — С. 36–45. — EDN XAGKJL.

3. Королева, И.М. Оценка современного состояния здоровья сигов озера Имандра по показателям красной крови / И.М. Королева, Е.А. Заботкина, П.М. Терентьев // Рыбохозяйственная наука. История, современность, перспективы: материалы междунар. науч.-практ. конф. — М., 2024. — С. 259–262. — eLIBRARY ID 80003106.

4. Крылова, Т.Г. Влияние комбинированного стресса на гематологические показатели карпа (Cyprinus carpio) / Т.Г. Крылова, Д.И. Сафронов, Г.С. Крылов, П.В. Докучаев // Ученые записки учреждения образования «Витебская ордена “Знак почета” государственная академия ветеринарной медицины». — 2021. — Т. 57, № 4. — С. 78–82. — DOI 10.52368/2078-0109-2021-57-478-82. — EDN SMAWMF.

5. Лукин, А.А. Перспективы развития аквакультуры в арктической зоне Российской Федерации / А.А. Лукин, В.М. Голод // Глобальные проблемы Арктики и Антарктики: материалы Всероссийской конференции с международным участием, посвященной 90-летию со дня рождения акад. Николая Павловича Лаверова. — Архангельск: Федеральный исследовательский центр комплексного изучения Арктики имени академика Н.П. Лаверова Российской академии наук. — 2020. — С. 1089–1093. — eLIBRARY ID 44293512.

6. Нечаева, Т.А. Выращивание арктического гольца с применением иммуномодулятора «Ронколейкина» в ИП Романов (Ленинградская область) / Т.А. Нечаева, В.А. Назаров, М.И. Ковальчук, Г.И. Пронина, Д.В. Микряков, Т.А. Суворова, С.В. Кузьмичева // Рыбоводство и рыбное хозяйство. — 2023. — Т. 17, № 6 (209). — С. 412–424. — DOI 10.33920/sel-09-2306-06.

7. Нечаева, Т.А. Применение рекомбинантного интерлейкина-2 (Ронколейкин) при выращивании молоди радужной форели / Т.А. Нечаева // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. — 2011. — № 4. — С. 58–61. — eLIBRARY ID 17092241.

8. Нечаева, Т.А. Применение рекомбинантного интерлейкина-2 (Ронколейкин) при инкубации икры и выращивании личинок радужной форели / Т.А. Нечаева // Вопросы нормативно-правового урегулирования в ветеринарии. — 2012. — № 1. — С. 48–51. — eLIBRARY ID 17697068.

9. Нечаева, Т.А. Применение рекомбинантного интерлейкина-2 (Ронколейкина) при выращивании молоди атлантического лосося / Т.А. Нечаева // Вопросы нормативно-правового урегулирования в ветеринарии. — 2013. — № 2. — С. 15–19. — eLIBRARY ID 19315784.

10. Нечаева, Т.А. Совершенствование технологии выращивания лососевых в рыбоводных хозяйствах Северо-Запада России: дис. ... д-ра с.-х. наук / Т.А. Нечаева. — СПб., 2022. — 345 с. — eLIBRARY ID 59961016.

11. Никандров, В.Я. Арктический голец (Salvelinus аlpinus L.) — перспективный объект для аквакультуры Севера России / В.Я. Никандров, А.А. Павлисов, Н.И. Шиндавина, А.А. Лукин, В.М. Голод, М.И. Липатова// Арктика: экология и экономика. — 2018. — № 3 (31). — С. 137–143. — DOI 10.25283/2223-4594-2018-3-137-143.

12. Никандров, В.Я. Научно-методические подходы и опыт разведения арктических гольцов на примере заводского выращивания ладожской палии Salvelinus lepecheni (Gmelin 1788) / В.Я. Никандров, Н.И. Шиндавина, В.М. Голод, А.А. Лукин // Рыбное хозяйство. — 2021. — № 6. — С. 104–112. — DOI 10.37663/0131-6184-2021-6-104-112.

13. Пронина, Г.И. Влияние Ронколейкина на морфометрические и гематологические показатели и фагоцитарную активность нейтрофилов арктического гольца / Г.И. Пронина, О.В. Саная, Т.А. Нечаева [и др.] // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. — 2024. — № 1. — С. 110–120. — DOI 10.26897/0021-342X-2024-1-110-120.

14. Andreeva, А. Comparative effectiveness of immune system stimulators in calves’ vaccination / А. Andreeva, О. Nikolaeva, О. Altynbekov, Y. Arslanova // J. Exp. Zool. A Ecol. Integr Physiol. — 2022. — № 337 (3). — Р. 221–226. — DOI 10.1002/jez.2559.

15. Anwar, S.K. Biophysical assessments and blood profiling reveal physiological adaptations and environmental interactions of hilsa shad (Tenualosa ilisha) / S.K. Anwar, D. Abdul, J. Smrity, S. Faria, М. Abu, Dr. Md. Faruque // PLOS ONE. — 2025. — № 20 (4). — Р. 1–19. — DOI 10.1371/journal. pone.0320628.

16. Geigert, J. Development and shelf-life determination of recombinant interleukin-2 (proleukin) / J. Geigert, N. Solli, Р. Woehleke, S. Vemuri // Pharm Biotechnol. — 1993. — № 5. — Р. 249–262. — DOI 10.1007/978-1-4899-1236-7_8.

17. Gladyshev, M.I. Fatty Acid Composition and Contents of Fish of Genus Salvelinus from Natural Ecosystems and Aquaculture / M.I. Gladyshev, N.N. Sushchik, L.A. Glushchenko [et al] // Biomolecules. — 2022. — № 12. — № 1. — Р. 144. — DOI 10.3390/biom12010144.

18. Knobloch, S. The gut microbiome of farmed Arctic char (Salvelinus alpinus) is shaped by feeding stage and nutrient presence / S. Knobloch, S. Skirnisdóttir, M. Dubois [et al] // FEMS Microbes. — 2024. — № 5. — Р. 1–13. — DOI 10.1093/femsmc/xtae011.

19. Li, J. Interleukin 2 Ameliorates Autoimmune Neuroinflammation by Modulating the Balance of T Helper 17 Cells and Regulatory T Cells in Mouse / J. Li, Z. Zhang, S. Du, Q. Guo // Ann Clin Lab Sci. — 2021. — № 51 (4). — Р. 529–534. — DOI 10.1016/0006-291х(75)90498-2.

20. Ranzani, P.M. Fish hematology in Brazil: A review / P.M. Ranzani, T.-D. Marcos // Boletim do Instituto de Pesca. — 2024. — № 50. — Р. 1–28. — DOI 10.20950/1678-2305/bip.2024.50. e914.

21. Rokade, S. Emmerich J. IL-2 based cancer immunotherapies: an evolving paradigm / S. Rokade, A.M. Damani, M. Oft // Front Immunol. — 2024.— № 15. — Р. 1433989. — DOI 10.3389/.

22. Yuan, Y. Therapeutic potential of interleukin-2 in autoimmune diseases / Y. Yuan, A.G.A. Kolios, Y. Liu, B. Zhang, Н. Li, G.C. Tsokos, X. Zhang // Trends Mol Med. — 2022. — № 28 (7). — Р. 596–612. — DOI 10.1016/j.molmed.2022.04.010.

23. Zygmuntowicz, A. Selected Biological Medicinal Products and Their Veterinary Use / А. Zygmuntowicz, А. Burmańczuk, W. Markiewicz // Animals (Basel). — 2020. — № 10 (12). — Р. 2343. — DOI 10.3390/ani10122343.

24. Witeska, M. Hematological methods in fish — Not only for beginners / М. Witeska, Е. Kondera, К. Ługowska, В. Bojarski // Aquaculture. — 2022. — № 547. — 737498 р. — DOI 10. 101 6/j.aquaculture.2021.737498.

1. Borisovskaya, A.A., Apalikova, O.V., Golod, V.M., Pankov, V.Yu. Diversity of Palia Salvelinus Alpinus PSHCC Ropsha according to mitochondrial DNA analysis. In: Actual issues of fisheries, fish farming (aquaculture) and environmental monitoring of aquatic ecosystems: proceedings of the International Scientific and Practical Conference dedicated to the 90th anniversary of the Azov Fisheries Research Institute. Rostov-on-Don, 2018, рр. 28–32 (in Russian). eLIBRARY ID 37205762.

2. Koroleva, I.M., Zabotkina, E.A., Terentyev, P.M. Assessment of the current state of health of whitefish of Lake Imandra by Red Blood indicators. In: Fishery Science. History, Modernity, Prospects: Proceedings of the International Scientific and Practical Conference dedicated to the 110th anniversary of the establishment of “GosNIORKh” named after L.S. Berg, St. Petersburg, October 23–24, 2024. VNIRO, Moscow, 2024, рр. 259–262 (in Russian). EDN PEBZOX.

3. Koroleva, I.M., Zabotkina, E.A., Terentyev, P.M. Assessment of the current state of health of whitefish of Lake Imandra by Red Blood indicators. In: Fishery science. History, modernity, prospects: Materials international. scientific-practical. conf. Moscow, 2024, рр. 259–262 (in Russian). DOI 10.52368/20780109-2021-57-4-78-82. — EDN SMAWMF.

4. Krylova, T.G., Safronov, D.I., Krylov, G.S., Dokuchaev, P.V. Influence of combined stress on hematological parameters of carp (Cyprinus carpio). Scientific notes of the educational institution Vitebsk Order of Badge of Honor State Academy of Veterinary Medicine, 2021, vol. 57, no. 4, рр. 78–82 (in Russian). DOI 10.52368/2078-0109-2021-57-4-78-82. EDN SMAWMF.

5. Lukin, A.A., Golod, V.M. Prospects for the development of aquaculture in the Arctic zone of the Russian Federation. In: Global problems of the Arctic and Antarctic: Proceedings of the All-Russian conference with international participation, dedicated to the 90th anniversary of the birth of Acad. Nikolai Pavlovich Lavyorov, November 02–05, 2020. Federal Research Center for Integrated Arctic Studies named after Academician N.P. Laverov of the Russian Academy of Sciences, Arkhangelsk, 2020, рр. 1089–1093 (in Russian). eLIBRARY ID 442935127.

6. Nechaeva, T.A., Nazarov, V.A., Kovalchuk, М.I. et al. Growing Arctic char using the Ronkoleikin immunomodulator in IP Romanov (Leningrad Region). Fish breeding and fisheries, 2023, vol. 17, no. 6 (209), рр. 412–424 (in Russian). DOI 10.33920/sel-09-2306-06.

7. Nechaeva, T.A. The use of recombinant interleukin-2 (Roncoleukin) in the cultivation of juvenile rainbow trout. Topical issues of veterinary biology, 2011, no. 4, pp. 58–61 (in Russian). eLIBRARY ID 17092241.

8. Nechaeva, T.A. Application of recombinant interleukin-2 (Roncoleukin) in incubation of eggs and larval rearing of rainbow trout. Issues of regulatory and legal regulation in veterinary medicine, 2012, no. 1, рр. 48–51 (in Russian). eLIBRARY ID 17697068.

9. Nechaeva, T.A. The use of recombinant interleukin-2 (Roncoleukin) in growing Atlantic salmon fry. Questions of legal regulation in veterinary medicine, 2013, no. 2, pp. 15–19 (in Russian). eLIBRARY ID 19315784.

10. Nechaeva, T.A. Improvement of salmon farming technology in fish farms of North-West Russia. Doct. Agricult. Sci. diss., St. Petersburg, 2022, 345 р. eLIBRARY ID 59961016.

11. Nikandrov, V.Ya., Pavlisov, A.A., Shindavina, N.I., Lukin, A.A., Golod, V.M., Lipatova, M.I. Arctic char (Salvelinus alpinus L.) — a promising object for aquaculture in the North of Russia. Arctic: Ecology and Economics, 2018, no. 3 (31), рр. 137–143 (in Russian). DOI 10.25283/2223-4594-2018-3-137-143.

12. Nikandrov, V.Ya., Shindavina, N.I., Golod, V.M., Lukin, A.A. Scientific and methodological approaches and experience in breeding Arctic char on the example of factory cultivation of Ladoga palia Salvelinus lepecheni (Gmelin 1788). Fisheries, 2021, no. 6, рр. 104–112 (in Russian). DOI 10.37663/01316184-2021-6-104-112.

13. Pronina, G.I., Sanaya, O.V., Nechaeva, T.A. et al. Influence of Ronkoleikin on morphometric and hematological parameters and phagocytic activity of neutrophils of arctic char. News of the Timiryazev Agricultural Academy, 2024, no. 1, рр. 110–120 (in Russian). DOI 10.26897/0021-342X-2024-1-110120.

14. Andreeva, A., Nikolaeva, О., Altynbekov, О., Arslanova, Y. Comparative effectiveness of immune system stimulators in calves’ vaccination. J. Exp. Zool. A Ecol. Integr Physiol, 2022, no. 337 (3), рр. 221–

226. DOI 10.1002/jez.2559.

15. Anwar, S.K., Abdul, D., Smrity, J. et al. Biophysical assessments and blood profiling reveal physiological adaptations and environmental interactions of hilsa shad (Tenualosa ilisha). PLOS ONE, 2025, no. 20 (4), рр. 1–19. DOI 10.1371/journal.pone.0320628.

16. Geigert, J., Solli, N., Woehleke, Р., Vemuri S. Development and shelf-life determination of recombinant interleukin-2 (proleukin). Pharm Biotechnol, 1993, no. 5, рр. 249–262. DOI 10.1007/978-1-48991236-7_8.

17. Gladyshev, M.I., Sushchik N.N., Glushchenko, L.A. et al. Fatty Acid Composition and Contents of Fish of Genus Salvelinus from Natural Ecosystems and Aquaculture. Biomolecules, 2022, v. 12, no. 1, рр.

144. DOI 10.3390/biom12010144.

18. Knobloch, S., Skirnisdóttir,S., Dubois, M. et al. The gut microbiome of farmed Arctic char (Salvelinus alpinus) is shaped by feeding stage and nutrient presence. FEMS Microbes, 2024, v. 5, рр. 1–13. DOI 10.1093/femsmc/xtae011.

19. Li, J., Zhang, Z., Du, S., Guo, Q. Interleukin 2 Ameliorates Autoimmune Neuroinflammation by Modulating the Balance of T Helper 17 Cells and Regulatory T Cells in Mouse. Ann Clin Lab Sci, 2021, v. 51 (4), рр. 529–534. DOI 10.1016/0006-291х(75)90498-2.

20. Ranzani, P.M., Marcos, T.-D. Fish hematology in Brazil: A review. Boletim do Instituto de Pesca, 2024, no. 50, рр. 1–28. DOI 10.20950/1678-2305/bip.2024.50.e914.

21. Rokade, S., Damani, A.M., Oft, M. Emmerich J. IL-2 based cancer immunotherapies: an evolving paradigm. Front Immunol, 2024, no. 15, рр. 1433989. DOI 10.3389/fimmu.2024.1433989.

22. Yuan, Y., Kolios, A.G.A., Liu, Y., Zhang, B., Li, Н., Tsokos, G.C., Zhang, X. Therapeutic potential of interleukin-2 in autoimmune diseases. Trends Mol Med, 2022, no. 28 (7), рр. 596–612. DOI 10.1016/j. molmed.2022.04.010.

23. Zygmuntowicz, A., Burmańczuk, А., Markiewicz, W. Selected Biological Medicinal Products and Their Veterinary Use. Animals (Basel), 2020, no. 10 (12), рр. 2343. DOI 10.3390/ani10122343.

24. Witeska, M., Kondera, Е., Lugowska, К., Bojarski, В. Hematological methods in fish — Not only for beginners. Aquaculture. 2022, no. 547, 737498 р. DOI 10.1016/j.aquaculture.2021.737498.

Палия (Salvelinus alpines complex, Linnaeus 1758) представляет собой озерную форму арктического гольца. Обитает в целом ряде водоемов Северо-Запада России: в Ладожском, Онежском озерах, в озерах Топозеро, Пяозеро, Сегозеро и др. Нуждается в искусственном воспроизводстве для пополнения природных запасов, в том числе естественной популяции Ладожского озера. Эта рыба отличается эффектным внешним видом и прекрасными вкусовыми качествами. Кроме того, палия представляет собой перспективный объект аквакультуры для выращивания в холодноводных хозяйствах, для товарного производства и любительского рыболовства [1; 10; 11; 16; 17].

Опыт искусственного воспроизводства показал, что наиболее перспективным объектом аквакультуры является именно ладожская палия. В Федеральном селекционно-генетическом центре рыбоводства (Ленинградская область) создано стадо палии ладожской популяции, адаптированное для выращивания в холодноводных рыбоводных хозяйствах и отличающееся наиболее высоким темпом роста [1; 11]. В дальнейшем искусственное воспроизводство ладожской палии было организовано в ИП Романов.

Палия — холодолюбивая рыба, высокие температуры и недостаток кислорода для нее губительны. В природных водоемах она обитает на тех участках, где температура воды составляет 10–12 °С даже летом. В силу таких особенностей палия подходит для выращивания в холодноводных хозяйствах. Несмотря на требовательность к температурному и кислородному режиму, палии свойственна некоторая экологическая пластичность. Это позволяет ей адаптироваться в условиях современного индустриального хозяйства, в том числе и к предприятиям с замкнутым циклом водоснабжения (УЗВ) и бассейновому содержанию. С данной формой арктического гольца возможно проведение селекции, направленной на формирование продуктивных качеств и увеличение выживаемости [1; 8; 11].

Однако необходимо отметить, что палия еще недостаточно адаптирована к условиям индустриального выращивания и в силу этого более подвержена бактериальным и паразитарным болезням. Находясь в одних и тех же условиях выращивания с радужной форелью и атлантическим лососем, палия более чувствительна к ихтиофтириозу, а также к бактериальным болезням, в особенности аэромонозу. Инфекционное поражение легко может быть спровоцировано «хэндлинг-стрессом» в ходе рыбоводных работ, например при проведении сортировки. При вспышках миксобактериозов палия гораздо тяжелее переносит заболевание по сравнению с форелью и нуждается в длительном лечении. При этом во внутренних органах выявляются серьезные патологические процессы — нарушения структуры жаберного эпителия, отек и десквамация эпителия почечных канальцев, сильное кровенаполнение, застойная гиперемия и жировая дистрофия в печени, белковая дистрофия в тканях сердца [8].

Для Цитирования:
Т.А. Нечаева, Г.И. Пронина, В.А. Назаров, М.И. Ковальчук, С.А. Кошелева, А.А. Белинский, М.А. Тутрикова, Выращивание ладожской палии в холодноводном бассейновом хозяйстве с применением иммуномодулятора «Ронколейкина» . Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2025;7.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: