По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.3:628.355.2

Влияние изменения солености воды на работу системы биологической очистки УЗВ в условиях низких температур

Тырин Д.В. канд. с.-х. наук, старший научный сотрудник отдела гидробиологии и оценки приемной емкости водоемов России, ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии», Москва, E-mail: tyrin@vniro.ru
Жигин А.В. д-р с.-х. наук, профессор, главный научный сотрудник отдела аквакультуры беспозвоночных, ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии», ФГБОУ ВО «Российский государственный аграрный университет — МСХА им. К.А. Тимирязева», Москва, E-mail: azhigin@gmail.com
Загорская Д.С. канд. биол. наук, начальник отдела ВНИРО-ТЕСТ, ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии», Москва, E-mail: dz83vniro@gmail.com

В рыбоводных циркуляционных установках перевод биофильтра с работы в условиях пресной воды в условия морской (или обратно) требует плавного, постепенного перехода. Однако одномоментная смена воды осуществима быстрее и технологически легче. Этим и определялась актуальность проводимого исследования. Цель — определение влияния последовательных одномоментных смен солености воды (морской на пресную и пресной на морскую) на способность биоценоза активного ила биофильтров сохранять или восстанавливать свою деятельность в холодноводной УЗВ. Шесть модельных биофильтров были заполнены морской водой и шесть — пресной. При одновременном понижении температуры воды с 21 до 9 °C на первом этапе осуществляли проведение пускового периода биологической очистки воды, на втором — в стабильном рабочем режиме, одномоментно морскую воду меняли на пресную, а пресную на морскую. В процессе гидрохимических измерений определяли исходные концентрации аммония, нитритов и нитратов, затем, на следующие сутки после внесения культуры бактерий, — нашатырного спирта в качестве источника аммонийного азота и далее — 2 раза в неделю. Показателем окончания каждого этапа считали устойчивое снижение концентрации аммония в воде до 0,2 мг/л, нитритов — до 0,3 мг/л. Показано, что продолжительность пускового периода биологической очистки как в пресной, так и в морской воде была примерно одинакова и составила 138 и 134 суток соответственно. С одномоментной сменой морской воды на пресную или пресной на морскую полной гибели биоценоза активного ила биофильтра не происходит, на что указывает продолжающееся увеличение концентрации нитратов. Однако способность биоценоза биофильтров очищать оборотную воду от аммонийного азота и нитритов закономерно снижается с последующим постепенным восстановлением работоспособности. Биоценоз биофильтра из системы с морской водой адаптировался к работе в условиях резкого опреснения в 1,5 раза быстрее, чем биоценоз из пресной воды при переводе в морскую.

Литература:

1. Верещагин Г.В. Об ускорении созревания биофильтров в морском аквариуме с системой оборотного водоснабжения / Г.В. Верещагин // Актуальн. пробл. рыбохоз. науки в творчестве молодых ученых: Сб. науч. тр. ВНИРО. — М., 1990. — С. 87–90.

2. Жигин А.В. Пути и методы интенсификации выращивания объектов аквакультуры в установках с замкнутым водоиспользованием (УЗВ): 06.02.04 Частная зоотехния, технология производства продуктов животноводства: дис…. д-ра с.-х. наук / А.В. Жигин; Моск. сельскохоз. акад. им. К.А. Тимирязева. — М., 2002. — 331 с.

3. Жигин А.В. Замкнутые системы в аквакультуре / А.В. Жигин. — М.: РГАУ-МСХА, 2011. — 664 с.

4. Жигин А.В. Рыбоводные установки в аквакультуре. Учебное пособие / А.В. Жигин. — М.: ЭйПиСиПаблишинг, 2018. — 296 с.

5. Киселев А.Ю. Биологические основы и технологические принципы разведения и выращивания объектов аквакультуры в установках с замкнутым циклом водообеспечения: 03.00.10 Ихтиология: автореф. дис…. д-ра биол. наук / А.В. Киселев; Всерос. науч.-иссл. инс-т пруд. рыбн. хоз-ва. — М., 1999. — 62 с.

6. Сапожников В.В. Руководство по гидрохимическому анализу морских и пресных вод при экологическом мониторинге рыбохозяйственных водоемов и перспективных для промысла районов Мирового океана / В.В. Сапожников, А.И. Агатова, Н.В. Аржанова, Н.В. Мордасова, Н.М. Лапина, В.Л. Зубаревич, О.Н. Лукьянова, Н.И. Торгунова. — М.: ВНИРО, 2003. — 202 c.

7. Тырин Д.В. Биотехнические основы содержания камчатского краба Paralithodes camtschaticus и американского омара Homarus americanus в установках с замкнутым водоиспользованием: 06.04.01 Рыбное хозяйство и аквакультура: дис…. канд. с.-х. наук / Д.В. Тырин; РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева. — М., 2011. — 141 с.

8. Abeliovich A. The nitrite oxidizing bacteria / A. Abeliovich, In М. Dworkin, S. Falkow, E. Rosenberg, K.-H. Schleifer, E. Stackebrandt (Eds.) // The Prokaryotes: Proteobacteria: Alpha and Beta Subclasses. — New York: Springer, 2006. — Vоl. 5. — Р. 861–872.

9. Blancheton J.P. Insight into bacterial population in aquaculture systems and its implication / J.P. Blancheton, K.J. K. Attramadal, L. Michaud, E. Roque d»Orbcastel, O. Vadstein // Aquacultural Engineering. — 2013. — № 53. — Р. 30–39. — DOI: 10.1016/j. aquaeng. 2012.11.009.

10. Cortés-Lorenzo, C. Effect of salinity on nitrification efficiency and structure of ammonia-oxidizing bacterial communities in a submerged fixed bed bioreactor / C. Cortés-Lorenzo, M. Rodríguez-Díaz, D. Sipkema, B. Juárez-Jiménez, B. Rodelas, H. Smidt // Chemical Engineering Journal. — 2015. — V. 266. — P. 233–240. — DOI: 10.1016/j. cej. 2014.12.083.

11. Graham D.W. Experimental demonstration of chaotic instability in biological nitrification / D.W. Graham, C.W. Knapp, E. S. Van Vleck, K. Bloor, T.B. Lane, C. E. Graham // Isme Journal. — 2007. — № 1 (5). — Р. 385–393. — DOI: 10.1038/ismej.2007.45.

12. Kinyage J.P. H. Effects of abrupt salinity increase on nitrification processes in a freshwater moving bed biofilter / J.P. H. Kinyage, P.B. Pedersen, L. F. Pedersen // Aquacultural Engineering. — 2019. — V. 84. — P. 91–98. — DOI: 10.1016/j. aquaeng. 2018.12.005.

13. Kuhl, H., Meeresforsch, M.K. Modellversuch zum Stoffhaushal in Aquarien bei verschiedenen Salzgehalt // Der Bundesforschungsanstalt für Fischerei, Hamburg und Cuxhaven. — 1962. — № 18. — P. 89–92.

14. Roalkvam I. A case study of biofilter activation andmicrobial nitrification in a marine recirculation aquaculturesystem for rearing Atlantic salmon (Salmo salar L.) / I. Roalkvam, K. Dronen, H. Dahle, H. I. Wergeland // Aquac. Research. — 2021. — № 52. — Р. 94–104. — DOI: 10.1111/are. 14872.

15. Spieck E. The lithoautotrophic nitrite-oxidizing bacteria / E. Spieck, In E. Bock, W.B. Whitman, F. Rainey, P. Kämpfer, M. Trujillo, J. Chun, P. DeVos, B. Hedlund, S. Dedysh (Eds.) // Bergey' s manual of systematics of Archaea and bacteria. — 2015. — P. 259–610. — DOI: 10.1002/9781118960608.gbm007.

На сегодняшний день зарубежные и российские специалисты провели значительный комплекс всевозможных исследований в области разработки, проектирования, создания и эксплуатации рыбоводных установок с замкнутым водоиспользованием (УЗВ). Накоплен богатый опыт содержания и разведения различных гидробионтов в циркуляционных системах, сформулированы принципы их эффективного выращивания, основные требования к условиям среды, методам и аппаратам для их обеспечения. Вместе с тем исследования в этой области продолжают свое развитие в самых разных направлениях, как фундаментальных, так и прикладных.

Так, периодически в научно-исследовательской и коммерческой деятельности приходится сталкиваться с необходимостью попеременного содержания гидробионтов с различными экологическими условиями обитания в одной и той же циркуляционной установке. При этом, меняя гидробионтов и, соответственно, создаваемые иные условия содержания, биоценоз активного ила биофильтра в УЗВ остается прежним и подвергается существенным колебаниям параметров водной среды вплоть до прямо противоположных.

В частности, в отделе аквакультуры беспозвоночных ФГБНУ «ВНИРО» попеременно проводили исследования по содержанию холодноводных морских гидробионтов (например, камчатского краба) и нативных речных раков (например, узкопалых) в одной и той же системе.

Хорошо известно, что низкие температуры воды создают неблагоприятный фон для жизнедеятельности биоценоза активного ила биофильтров. Так, выход на рабочий режим биофильтров в установках для выращивания холодолюбивых гидробионтов растягивается до 1–2 месяцев, поскольку оптимальная температура воды для осуществления нитрификационных процессов составляет примерно 25 °С [2–4].

Соленость среды также отрицательно отражается на работе сооружений биологической очистки воды УЗВ, снижая эффективность их работы. С необходимостью адаптации нитрифицирующих бактерий к работе в соленой воде с повышенным рН связан и более длительный период пускового периода биофильтра в УЗВ с морской водой: при 20 °С он растягивается до двух месяцев по органическим загрязнениям и до трех месяцев — по соединениям азота [1; 5] против 20–25 суток в пресноводных системах. Кроме того, сам процесс нитрификации в УЗВ с морской водой протекает медленнее, чем в пресноводных [12; 13]. Показана возможность ускорения стартового периода биологической очистки воды в УЗВ с морской водой при низких температурах с помощью ее плавного понижения с одновременным внесением источника аммония, а также влияния на этот процесс типа наполнителя биофильтра [7].

Для Цитирования:
Тырин Д.В., Жигин А.В., Загорская Д.С., Влияние изменения солености воды на работу системы биологической очистки УЗВ в условиях низких температур. Водоочистка. 2024;11.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: