По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 597.554.3:577.1 DOI:10.33920/sel-09-2502-04

Уровень окислительных процессов и общих липидов в иммунокомпетентных органах леща Саратовского водохранилища

С.В. Кузьмичева Институт биологии внутренних вод РАН — ИБВВ, Россия, Ярославская область, пос. Борок, Е-mail: kuzmicheva.sv@ibiw.ru

В качестве биомаркеров в экологических и экологотоксикологических исследованиях для оценки качества условий среды обитания часто используются данные уровня окислительных процессов и антиокислительной защиты в тканях гидробионтов. В настоящей работе определены показатели интенсивности окислительных процессов и содержания общих липидов в иммунокомпетентных органах половозрелого леща из центральной части и низовьев Саратовского водохранилища. Рыб отлавливали с помощью донного трала в ходе комплексной гидробиологической экспедиции на научно-исследовательском судне. У отловленных особей после вскрытия отбирали в стерильные пробирки образцы почки, селезенки и печени. Из тканей органов при помощи гомогенизатора готовили гомогенаты с 0,65%-ным физиологическим раствором в соотношении 1:6 и 1:1 (масса к объему). В гомогенатах анализировали содержание продуктов перекисного окисления по содержанию малонового диальдегида, уровень антиокислительной активности и общих липидов. Анализ полученных результатов показал, что лещи, отловленные на разных станциях, значительно различались по количественным показателям малонового диальдегида и антиокислительной активности и незначительно по количеству общих липидов. Наиболее низкий уровень малонового диальдегида отмечен в органах рыб со станции Кашпир-Рудник по сравнению с особями других станций. Выявленные отличия интенсивности окислительных процессов в иммунокомпетентных органах, видимо, обусловлены разным уровнем содержания антиоксидантных ферментов и низкомолекулярных соединений, обеспечивающих динамическое равновесие в прооксидант-антиоксидантной системе. Вероятно, это связано с воздействием на организм рыб различных экологических факторов и качеством воды в исследуемых участках Саратовского водохранилища. Отличие качества воды, скорее всего, обусловлено массовым развитием сине-зеленых водорослей («цветением» воды), биомасса которых возрастает в направлении от верхнего участка водохранилища к нижнему.

Литература:

1. Андреева, Л.И. Модификация методов определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой / Л.И. Андреева, Н.А. Кожемякин, А.А. Кишкун // Лаб. дело. — 1988. — № 11. — С. 41–43.

2. Антонов, А.И. Использование реакции на гипоксию с целью управления поведением рыб в заморных озерах / А.И. Антонов // Молодой ученый. — 2016. — № 26 (130). — С. 422–424.

3. Атлас пресноводных рыб России / Под ред. Ю.С. Решетникова. — М.: Наука, 2002. — Т. 1. — 379 с.

4. Барабой, В.А. Перекисное окисление и стресс / В.А. Барабой, И.И. Брехман, В.Г. Голотин, Ю.Б. Кудряшов. — СПб.: Наука, 1992. — 148 c.

5. Герасимова, Н.А. Фитопланктон Саратовского и Волгоградского водохранилищ / Н.А. Герасимова. — Тольятти, 1996. — 200 с.

6. Гершанович, А.Д. Особенности обмена липидов у рыб / А.Д. Гершанович, В.И. Лапин, М.И. Шатуновский // Успехи соврем. биол. — 1991. — Т. 3. — Вып. 2. — С. 207–219.

7. Грубинко, В.В. Перекисное окисление липидов и антиоксидантная защита у рыб (обзор) / В.В. Грубинко, Ю.В. Леус // Гидробиол. журн. — 2001. — Т. 37, № 1. — С. 64–78.

8. Ермолин, В.П. Состав ихтиофауны Саратовского водохранилища / В.П. Ермолин // Вопросы ихтиологии. — 2010. — Т. 50, № 2. — С. 280−284.

9. Завьялов, Е.В. Рыбы севера Нижнего Поволжья: в 3 т. Т. 1. Состав ихтиофауны, методы изучения / Е.В. Завьялов, А.Б. Ручин, Г.В. Шляхтин и др. — Саратов: Сарат. ун-т, 2007. — 208 с.

10. Зенков, Н.К. Внутриклеточный окислительный стресс и апоптоз / Н.К. Зенков, Е.Б. Меньшикова, Н.Н. Вольский, В.А. Козлов // Успехи соврем. биол. — 1999. — Т. 119, № 5. — С. 440–450.

11. Корнева, Л.Г. «Цветение» воды цианобактериями и методы борьбы с их массовым развитием / Л.Г. Корнева, А.Н. Шаров, С.И. Сиделев, А.А. Зубишина, Н.Г. Медведева, Г.А. Лазарева. — Дубна, 2023. — 258 с. — http://www.cnshb.ru/content/2024/04290283. pdf.

12. Микряков, В.Р. Реакция иммунной системы рыб на загрязнение воды токсикантами и закисление среды / В.Р. Микряков, Л.В. Балабанова, Е.А. Заботкина, Т.Б. Лапирова, А.В. Попов, Н.И. Силкина. — М.: Наука, 2001. — 126 с. — https://www.ibiw.ru/index. php?p=downloads&id=46887.

13. Обзор состояния и загрязнения окружающей среды на территории деятельности Саратовского ЦГМС — филиала ФГБУ «Приволжское УГМС» за 2021 год. — Саратов, 2021. — 92 с.

14. Руднева, И.И. Применение биохимических маркеров для оценки здоровья рыб / И.И. Руднева // Проблемы иммунологии, патологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов: мат-лы II междун. научн.-практич. конф. — М.: Россельхозакадемия, 2007. — С. 234–238.

15. Селезнева, А.В. Оценка диффузного загрязнения Саратовского водохранилища / А.В. Селезнева // Водное хозяйство России. — 2018. — № 5. — С. 101–115.

16. Семенов, В.Л. Метод определения антиокислительной активности биологического материала / В.Л. Семенов, А.М. Ярош // Укр. биохим. журн. — 1985. — Т. 57, № 3. — C. 50–52.

17. Сенатор, С.А. Энциклопедия Самарской области / С.А. Сенатор, С.В. Саксонов. — https://www.sites.google.com/site/enciklopediasamarskojoblastit2/home/gidrographia/ saratovskoe-vdhr.

18. Силкина, Н.И. Сезонная динамика липидов сыворотки крови и ее связь с иммунологической реактивностью рыб: 03.00.10 Ихтиология: автореф. ... дис. канд. биол. наук / Н.И. Силкина; Институт эволюционной морфологии и экологии животных им. А.Н. Северцова. — М., 1988. — 17 с.

19. Силкина, Н.И. Состояние процессов перекисного окисления липидов и антирадикальной системы тканей рыб при воздействии фенола и нафталина на рыб / Н.И. Силкина, В.Р. Микряков // Токсикологич. вестн. — 2006. — № 3. — С. 19–23.

20. Смирнов, Л.П. Липиды в физиолого-биохимических адаптациях эктотермных организмов к абиотическим и биотическим факторам среды / Л.П. Смирнов, В.В. Богдан. — М.: Наука, 2007. — 182 с.

21. Шатуновский, М.И. Экологические закономерности обмена веществ морских рыб / М.И. Шатуновский. — М.: Наука, 1980. — 238 с.

22. Экотоксикологические исследования прибрежной черноморской ихтиофауны в районе Севастополя / Под ред. И.И. Рудневой. — М.: ГЕОС, 2016. — 360 с.

23. Ardavin, A.D. Ultrastructure and changes during metamorphosis of the lymphohaemopoietic tissue of the larval anadromous sea lamprey Petromyzon marinus / A.D. Ardavin, A.G. Zapata // Develop. and Comp. Immunol. — 1987. — V. 11. — № 1. — P. 79–93. — DOI: 10.1016/0145-305x(87)90010-3.

24. Fange, R. Aspects of lymphoid tissues in fish / R.Fange // 3 Confer. Immunology and immunization of fish. Wageningen. Netherlands. — 1981. — P. 22–23.

25. Folch, J.A. simple method for the isolation and purification of total lipids from animals tissues / J. Folch, M. Lees, G.N. Stenley // J. Biol. Chem. — 1957. — V. 226. — № 3. — P. 497–509.

26. Fiho, W.D. Fish antioxidant defences — A comparative ap proach / W.D. Fiho // Braz. J. Med. and Biol. Res. — 1996. — V. 29. — № 12. — P. 1735–1742.

27. https://www.tursar.ru/page-joy.php?j=2519&ysclid=lwai57vnkz811509147.

28. Winston, G.W. Oxidants and antioxidants in aquatic animals / G.W. Winston // Compar. biochem. and Physiol. — 1991. — V. 100. — №. 1–2. — P. 173–176.

29. Zapata, A.G. Ultrastructural study of the teleost fish kidney / A.G. Zapata // Develop. and Comp. Immunol. — 1979. — № 3. — P. 55–65.

1. Andreeva, L.I., Kozhemyakin, N.A., Kishkun, A.A. Modification of methods for determining lipid peroxides in the thiobarbituric acid test. Lab. delo, 1988, no. 11, pp. 41–43 (in Russian).

2. Antonov, A.I. Using the reaction to hypoxia to control fish behavior in dead lakes. Molodoi uchenyi, 2016, no. 26 (130), pp. 422–424 (in Russian).

3. Atlas of Russian Freshwater Fishes. Ed. Yu.S. Reshetnikova. Moscow, 2002, vol. 1. 379 р. (in Russian).

4. Baraboy, V.A. Perekisnoe okislenie i stress [Peroxidation and stress]. Saint Petersburg, 1992. 148 p. (in Russian).

5. Gerasimova, N.A. Fitoplankton Saratovskogo i Volgogradskogo vodokhranilishch [Phytoplankton of the Saratov and Volgograd reservoirs]. Tolyatti, 1996. 200 p. (in Russian).

6. Gershanovich, A.D., Lapin, V.I., Shatunovsky, M.I. Features of lipid metabolism in fish. Uspekhi sovrem. biol., 1991, vol. 3 (2), pp. 207–219 (in Russian).

7. Grubinko, V.V., Leus, Yu.V. Lipid peroxidation and antioxidant defense in fish (review). Hydrobiological Journal, 2002, vol. 38, no. 2, pp. 56–71 (in Russian).

8. Ermolin, V.P. Composition of the ichthyofauna of the Saratov reservoir. Journal of ichthyology, 2010, vol. 50, no. 2, pp. 211–215 (in Russian).

9. Zavyalov, E.V. Fishes of the Northern Lower Volga Region. Book 1. Composition of the ichthyofauna, methods of study. Saratov, 2007. 208 p. (in Russian).

10. Zenkov, N.K., Menshikova, E.B., Volsky, N.N., Kozlov, V.A. Intracellular oxidative stress and apoptosis. Advances in Current Biology, 1999, vol. 119, no. 5, pp. 440–450 (in Russian).

11. Korneva, L.G. Water blooms with cyanobacteria and methods of combating their mass development. Dubna, 2023. 258 p. (in Russian). http://www.cnshb.ru/content/2024/04290283.pdf.

12. Mikryakov, V.R. The reaction of the immune system of fish to water pollution with toxicants and acidification of the environment. Nauka, Moscow, 2001. 126 p. (in Russian). https://www.ibiw.ru/index.php?p=downloads&id=46887.

13. Review of the state and pollution of the environment in the territory of the Saratov Center for Hydrometeorological and Environmental Monitoring — a branch of the Federal State Budgetary Institution “Privolzhskoye UGMS” for 2021. Saratov, 2021. 92 p. (in Russian).

14. Rudneva, I.I. Application of biochemical markers for fish health assessment. In: Problems of immunology, pathology and health protection of fish and other aquatic organisms: materials II of the international conference. Moscow, 2007, pp. 234–238 (in Russian).

15. Selezneva, A.V. Assessment of diffuse pollution of the Saratov reservoir. Water sector of Russia: problems, technologies, management, 2018, no. 5, pp. 101–115 (in Russian).

16. Semenov, V.L., Yarosh, A.M. Method for determining the antioxidant activity of biological material. Ukrainian Biochemical Journal, 1985, no. 3 (57), pp. 50–52 (in Russian).

17. Senator, S.A., Saksanov, S.V. Encyclopedia of Samara Region [website]. http://www. sites.google.com/site/enciklopediasamarskojoblastit2/home/gidrographia/saratovskoe-vdhr.

18. Silkina, N.I. Seasonal dynamics of blood serum lipids and its relationship with immunological reactivity of fish. Abstr. Cand. Boilogi. Sci. diss. 1988. 17 p. (in Russian).

19. Silkina, N.I., Mikryakov, V.R. The state of lipid peroxidation processes and the antiradical system of fish tissues under the influence of phenol and naphthalene on fish. Toxicological Review, 2000, no. 3, pp. 19–23 (in Russian).

20. Smirnov, L.P. Lipids in physiological and biochemical adaptations of ectothermic organisms to abiotic and biotic environmental factors. Moscow, 2007. 182 p. (in Russian). https://search.rsl.ru/ru/record/01003379401.

21. Shatunovsky, M.I. Ecological patterns of metabolism of marine fish. Moscow, 1980. 238 p. (in Russian).

22. Ecotoxicological studies of the coastal Black Sea ichthyofauna in the Sevastopol region. Ed. by I.I. Rudneva. Moscow, 2016. 360 p. (in Russian).

23. Ardavin, A.D., Zapata, A.G. Ultrastructure and changes during metamorphosis of the lymphohae-mopoietic tissue of the larval anadromous sea lamprey Petromyzon marinus. Develop. and Comp. Immunol. 1987, vol. 11, no. 1, pp. 79-93. DOI: 10.1016/0145305x(87)90010-3.

24. Fange, R. Aspects of lymphoid tissues in fish. In: 3 Confer. Immunology and immunization of fish. Wageningen. Netherlands, 1981, pp. 22–23.

25. Folch, J., Lees, M., Stenley, G.N. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animals tissues. J. Biol. Chem., 1957, vol. 226, no. 3, pp. 497–509.

26. Fiho, W.D. Fish antioxidant defences — A comparative ap proach. Braz. J. Med. and Biol. Res, 1996, vol. 29, no. 12, pp. 1735–1742.

27. https://www.tursar.ru/page-joy.php?j=2519&ysclid=lwai57vnkz811509147.

28. Winston, G.W. Oxidants and antioxidants in aquatic animals. Compar. biochem. and Physiol., 1991, vol. 100, no. 1–2, pp. 173–176.

29. Zapata, A.G. Ultrastructural study of the teleost fish kidney. Develop. and Comp. Immunol., 1979, no. 3, pp. 55–65.

Саратовское водохранилище — крупное водохранилище на реке Волге, образованное плотиной Саратовской ГЭС у г. Балаково. Расположено в Среднем и частично Нижнем Поволжье на территории Самарской, Саратовской и Ульяновской областей. Объем водоема — 12,9 км3 , площадь — 1831 км2 . Длина по руслу Волги — 341 км; ширина — 0,8–12 км; средняя глубина — 8 м, наибольшая — 28 м. Заполнение происходило в 1967–1968 годах, и в настоящее время его водами затоплено 1245 км2 . Водохранилище осуществляет суточное и недельное регулирование стока Волги и ее притоков; уровень колеблется в пределах 0,5–1 м. Проточность — 0,27–0,56 м/с; водообмен 19 раз в год [17].

Видовой состав ихтиофауны Саратовской области достаточно богат, насчитывает около 70 видов, относящихся к двум классам: круглоротых и костных рыб. Костные рыбы Саратовской области в соответствии с современной систематикой относятся к 10 отрядам. Наиболее богаты в видовом отношении отряды карпообразных и окунеобразных, насчитывающие в своем составе 35 и 11 представителей соответственно, тогда как другие отряды представлены лишь 1–3 видами. Промысловые виды рыб условно подразделяются на две группы: ценные и малоценные. К ценным промысловым видам рыб относятся: лещ, судак, берш, сазан, щука, жерех, сом. Преобладает лещ, что обусловлено наличием хорошей кормовой базы и условий размножения. К малоценным видам относятся: плотва, окунь, густера, синец, чехонь, карась и др. Высокие концентрации мелких рыб, таких как бычки, уклейка, верховка, ерш, молодь окуня и плотвы, создают благоприятные условия для нагула хищных рыб [27].

Среди промысловых рыб ихтиофауны Волжско-Каспийского бассейна ведущее место занимает лещ Abramis brama (Linnaeus, 1758) [8; 9]. Это типичный бентофаг семейства карповых (Cyprinidae), предпочитает медленнотекущие водоемы и озера. В основном питается донными беспозвоночными (личинки насекомых, моллюски, черви, ракообразные и др.). Ведет стайный образ жизни [3]. Важное место в экосистеме водоемов, высокая численность вида, длительный жизненный цикл и отсутствие протяженных миграций позволяют использовать его в качестве биоиндикатора.

Для Цитирования:
С.В. Кузьмичева, Уровень окислительных процессов и общих липидов в иммунокомпетентных органах леща Саратовского водохранилища. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2025;2.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: