По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 619:616.982.211:636.2

Туберкулин и причины сенсибилизации макроорганизма к нему

М. Баратов д-р вет. наук, зам. дир., Прикаспийский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт – филиал ФГБНУ «Федеральный аграрный научный центр Республики Дагестан», 367000, Россия, г. Махачкала, ул. Дахадаева, д. 88
П. Гусейнова мл. науч. сотр., Прикаспийский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт – филиал ФГБНУ «Федеральный аграрный научный центр Республики Дагестан», 367000, Россия, г. Махачкала, ул. Дахадаева, д. 88

Отсутствие универсальных методов дифференциации неспецифических реакций на туберкулин существенно затрудняет и сдерживает диагностику туберкулеза животных. Важно отметить, что практические усилия в дифференциальной диагностике направлены в основном на выявление сенсибилизации, вызванной атипичными микобактериями, не учитывая сенсибилизирующую роль других микроорганизмов, имеющих родоспецифическую общность с микобактериями. Очевидно, что результаты изучения роли этих микроорганизмов важны для установления благополучия животных по туберкулезу. Изучена сенсибилизирующая макроорганизм способность микобактериоподобных микроорганизмов, коринебактерий, нокардий и родококков. Зараженные морские свинки реагировали с более высокой интенсивностью на гомологичный аллерген, нежели гетерологичный. Выявлена низкая сенсибилизирующая роль эпизоотических штаммов. Наличие у коринебактерий, общих с микобактериями, антигена показали результаты реакции розеткообразования. У зараженных микобактериями отмечено повышение количества Т- и В-лимфоцитов на всем протяжении опыта, у зараженных коринебактериями – снижение В-клеток на третьем этапе исследования и Т-лимфоцитов – на втором. Результаты производственного опыта подтвердили лабораторные показатели. В благополучном по туберкулезу хозяйстве 14 реагирующих на туберкулин животных (КРС) с неопределенными результатами симультанной пробы разделили на 2 группы, 7 голов исследовали в симультанной пробе с туберкулином и коринебактериозным сенситином, 7 – с нокардиозным. Выявлена специфичность исследуемых моноаллергенов: на коринебактериозный сенситин реакция интенсивнее, нежели на туберкулин (6,3±0,09 и 5,8±0,17 соответственно), во второй группе интенсивность составляла 4,3±0,15 на нокардиозный аллерген и 6,2±0,27 – на туберкулин. Полученные данные расширяют представления о причинах сенсибилизации макроорганизма к туберкулину.

Литература:

1. Донченко А. С. Диагностика туберкулеза КРС / А. С. Донченко, Н. П. Овдиенко, Н. А. Донченко. – Новосибирск, 2004. – 306 с.

2. Найманов А. Х. Проблемы диагностики и профилактики туберкулеза КРС в современных условиях // Ветеринарная патология. – 2004. – № 1–2 (9). – С. 18–23.

3. Смирнов А. Н. Современные проблемы диагностики туберкулеза животных // Ветеринарная патология. – 2004. – № 1. – Т. 2 (9). – С. 10–13.

4. Collins M. D. Distribution of isoprenoid quinore structural types in bacteria and their taxonomic implications / M. D. Collins, D. Jones // Microbiol. Pev. – 1991. – Vol. 4. – № 2. – P. 316–354.

5. Баратов М. О. Кислотоустойчивые микроорганизмы – микобактерии, нокардии, родококки: химический состав, биологические свойства, антигенная структура / М. О. Баратов, Р. А. Нуратинов // Проблемы туберкулеза. – 2001. – № 5. – С. 54–58.

6. Баратов М. О. К выяснению причин неспецифических реакций на туберкулин / М. О. Баратов, М. М. Ахмедов, О. П. Сакидибиров // Ветеринарный врач. – Казань, 2014. – № 2. – С. 24–27.

7. Лискова Е. А. Новый подход к выделению микобактерий, нокардиоформных актиномицетов и коринебактерий / Е. А. Лискова, К. Н. Слинина // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. – 2016. – С. 23–28.

8. Нуратинов Р. А. К вопросу диагностики туберкулеза КРС // Ветеринария. – 1990. – № 8. – С. 20–21.

9. Goren M. B. Some observations on mycobacterial acidfastness / M. B. Goren, M. Cerneh, O. Brokl // Amer. Rev. Respirat. Discase. – 1990. – 188. – № 1. – P. 151–154.

10. Jensen H. L. Studies on the saprophytic mycobacteria and corynebacteria / H. L. Jensen // Proc. Linn. Soc. N.S.W. – 1994. – Vol. 59. – № 1 (2). – P. 19–61.

В настоящее время неспецифические реакции продолжают оставаться серьезной проблемой в диагностике туберкулеза животных. По мнению большинства исследователей, основной причиной сенсибилизации организма животных к туберкулину являются атипичные микобактерии. Имеются данные о том, что от реагирующих на туберкулин животных изолируются нетуберкулезные кислотоустойчивые микобактерии в 46,4 % случаев, от нереагирующих – 48,8 % [1–4].

Следует полагать, что атипичные микобактерии не всегда выступают причиной аллергизаций организма животных к туберкулину, и в более чем 53 % случаев из биоматериала от реагирующих животных не удается выделить культуру микобактерий, в том числе нетуберкулезные формы, и причина сенсибилизации остается невыясненной. Применительно к этой проблеме имеются данные о том, что при дополнительных исследованиях биоматериала удается изолировать культуры коринебактерий в 26,4 % случаев, нокардий – 14,2 и родококков – 19,7 % [5–8].

Такое положение авторы связывают с наличием общих родоспецифических свойств у этих таксонов с микобактериями, что подтверждено результатами экспериментальных исследований, выявлением чувствительности у зараженных коринебактериями, нокардиями и родококками лабораторных животных к туберкулину. Генетическая общность отражена в перекрестных реакциях клеточного и гуморального иммунитета, что явилось основанием рассматривать их как вероятные причины неспецифической сенсибилизации [9, 10].

Вместе с тем трудно отличить эти микроорганизмы от микобактерий по культурально-морфологическим свойствам, в связи с чем представляется важным выбор минимального числа тестов для надежной дифференциации.

При оценке дифференцирующих методов учитывали простоту и доступность. Дифференцирующий коринебактерии, нокардии и родококки от микобактерий признак – липид LCN-А (свободная миколовая кислота) в этанол-эфирных экстрактах выявляли с помощью тонкослойной хроматографии (ТСХ). Высокомолекулярные миколовые кислоты микобактерий не извлекаются данным растворителем и не выявляются на хроматограмме. Метод (Kanetsuna F. аnd Bartoli A, 1972) относительно простой и легкий в исполнении, не требующий больших материальных затрат, включает три этапа: получение и подготовку бактериальной массы, экстракцию миколовых кислот и тонкослойную хроматографию на силикагеле.

Для Цитирования:
М. Баратов, П. Гусейнова, Туберкулин и причины сенсибилизации макроорганизма к нему. Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2020;11.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: