По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.51 DOI:10.33920/sel-09-2601-04

Технологические решения в искусственном воспроизводстве и выращивании речных раков (Аstacinae) для дальнейшего развития отрасли в России (обзор)

Ирина Евгеньевна Липпо научный сотрудник отдела воспроизводства объектов аквакультуры, старший научный сотрудник Всероссийского научно-исследовательского института интегрированного рыбоводства — филиала федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный исследовательский центр животноводства — ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста» (ВНИИР). Россия, 142460, Московская область, Ногинский район, пос. имени Воровского, ул. Сергеева, д. 24. E-mail: lippoir@bk.ru. ORCID: 0000-0003-0215-126X. SPIN: 6715-6703.
Анна Александровна Белоус канд. биол. наук, директор Всероссийского научноисследовательского института интегрированного рыбоводства — филиала федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный исследовательский центр животноводства — ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста» (ВНИИР). Россия, 142460, Московская область, Ногинский район, пос. имени Воровского, ул. Сергеева, д. 24. E-mail: belousa663@gmail.com. ORCID: 0000-0001-7533-4281. SPIN: 2717-0957.

Данный обзор посвящен систематизации современных технологий выращивания пресноводных раков. Цель работы заключалась в обобщении обширного массива научных данных для выявления ключевых проблем и определения наиболее эффективных и перспективных подходов в их аквакультуре. В результате проведенного исследования на основе анализа более 120 отечественных и зарубежных источников были получены следующие результаты. Установлено, что биологические особенности раков, в частности асинхронный рост и ярко выраженный каннибализм, являются определяющими факторами, формирующими фундаментальные отличия их культивирования от технологий работы с другими гидробионтами. Каннибализм идентифицирован как основной лимитирующий фактор плотности посадки и общей продуктивности. В ходе анализа были выделены и детально охарактеризованы два принципиальных направления в аквакультуре раков: индустриальное (УЗВ, бассейны) и пастбищное (естественные водоемы). Определено, что индустриальные методы позволяют организовать круглогодичное производство в контролируемых условиях, но требуют значительных энергозатрат, в то время как пастбищное выращивание экономически выгодно за счет использования естественной кормовой базы, но его эффективность критически зависит от внешних абиотических факторов, прежде всего температурного режима. Для решения ключевой проблемы каннибализма разработан и систематизирован комплекс технологических мер, включающий обеспечение укрытий, регулярную сортировку особей по размерным группам, строгое нормирование плотности посадки, а также инновационные методы, такие как иммобилизация клешней. В качестве наиболее рациональной и перспективной производственной модели определен гибридный подход, который интегрирует этапы индустриального получения и подращивания жизнестойкого посадочного материала в контролируемых условиях УЗВ с последующим его доращиванием до товарной кондиции в естественных водоемах. Данная стратегия позволяет нивелировать недостатки каждого из методов в отдельности и способствует максимизации экономической эффективности и экологической устойчивости производства ценных гидробионтов.

Литература:

1. Александрова, Е.Н. Основные положения стратегии воспроизводства ресурсов российских речных раков (Astacinae Latreille, 1802) / Е.Н. Александрова // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. — 2017. — № 4. — С. 9–21.

2. Александрова, Е.Н. Оценка природных популяций речных раков при выборе источников диких производителей при разведении / Е.Н. Александрова // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. — 2014. — № 4. — С. 31–39.

3. Александрова, Е.Н. Анализ результатов выращивания речных раков подсемейства Astacinae с целью усовершенствования способов их культивирования в малых водоемах / Е.Н. Александрова // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. — 2015. — № 2. — С. 47–56. — EDN TYIASZ.

4. Алехнович, А.В. Выращивание молоди длиннопалого рака (Astacus leptodactylus) в прудах с естественным температурным режимом / А.В. Алехнович, А.А. Углянец // Экологический вестник. — 2012. — № 4. — С. 104–111. — EDN QTPWYL.

5. Анкешева, Б.М. Формирование ремонтно-маточного стада австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) в индустриальной аквакультуре / Б.М. Анкешева, Р.Р. Тангатарова, О.В. Пятикопова // Известия ТИНРО. — 2021. — Т. 201, № 4. — С. 948–959. — DOI 10.26428/1606-9919-2021-201-948-959. — EDN MSBBZU.

6. Бородулин, И.В. Обоснование технологии индустриального производства аквакультуры (раки) при оптимальных условиях для их развития в естественной среде, в том числе в ООПТ / И.В. Бородулин, Е.А. Агарков, В.А. Милюткин, С.А. Толпекин // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. — 2021. — Т. 30, № 1. — С. 72–76. — DOI 10.24412/2073-1035-2021-10380.

7. Борисов, Р.Р. Биология и культивирование австралийского красноклешневого рака Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1898) / Р.Р. Борисов, Н.П. Ковачева, М.Ю. Акимова, А.В. Паршин-Чудин. — М.: ВНИРО, 2013. — С. 47.

8. Борисов, Р.Р. Аквакультура австралийского красноклешневого рака Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) / Р.Р. Борисов, Н.П. Ковачева, А.В. Жигин [и др.]. — М.: ВНИРО, 2024. — 200 с. — EDN PHWXGF.

9. Дерхо, М.А. Особенности эколого-санитарного состояния рыбохозяйственных водоемов в условиях лесостепной зоны Челябинской области / М.А. Дерхо, Л.В. Чернышова, Т.Н. Макарова [и др.] // АПК России. — 2022. — Т. 29, № 2. — С. 192–199.

10. Жарников, В. Влияние плотности посадки на результаты выращивания в искусственных условиях австралийского краснокоготого рака с иммобилизованными клешнями / В. Жарников // Известия ТИНРО. — 2025. — Т. 205. — С. 167-178.

11. Жигин, А.В. Влияние температуры воды на рост и выживаемость австралийских красноклешневых раков / А.В. Жигин, В.А. Арыстангалиева, Н.П. Ковачева // Природные ресурсы, их современное состояние, охрана, промысловое и техническое использование : мат-лы 8-й Всерос. науч.-практ. конф., посвящ. 75-летию рыбохозяйственного образования на Камчатке. — Петропавловск-Камчатский: КамчатГТУ, 2017. — Ч. 1. — С. 86–89.

12. Илюшина, П.С. Эффективность применения технологии «Биофлок» в аквакультуре / П.С. Илюшина, А.В. Бригида, А.С. Мамонова // Ветеринария и кормление. — 2024. — № 3. — С. 57–60. — DOI 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2024-3-10.

13. Кулеш, В.Ф. Выращивание молоди длиннопалого рака (Astacus leptodactylus) в садках и прудах в поликультуре с рыбой на подогретых сбросных водах теплоэлектростанции / В.Ф. Кулеш, А.В. Алехнович // Гидробиол. журнал. — 2010. — Т. 46, № 1. — С. 47–61.

14. Лагуткина, Л.Ю. Новый объект тепловодной аквакультуры австралийский красноклешневый рак (Cherax quadricarinatus) / Ю.Л. Лагуткина, С.В. Пономарев // Вестник АГТУ.- 2008.- № 6 (47).- С. 220- 223.

15. Макарова, Т.Н. Влияние абиотических факторов на жизнедеятельность молоди гибридной формы сига чудского / Т.Н. Макарова, Л.В. Чернышова, Д.С. Лазоренко // Актуальные вопросы развития аграрной науки: сборник материалов Всероссийской (национальной) научно-практической конференции, посвященной 15-летию со дня образования института биотехнологии и ветеринарной медицины, Тюмень, 12 октября 2021 года. – Тюмень: Государственный аграрный университет Северного Зауралья, 2021. – С. 812-821.

16. Нефедов, В.Н. Результаты опытно-производственной проверки методических рекомендаций по биотехнологии получения молоди длиннопалого рака / В.Н. Нефедов // Сб. научн. тр. ГосНИОРХ. — Л., 1989. — Вып. 300. — С. 56–73.

17. Нгуен, Т.Т. Способы изменения пола у десятиногих раков Decapoda (Latreille, 1802) в аквакультуре / Т.Т. Нгуен // Естественные и математические науки в современном мире. — 2013. — № 7. — С. 29–34.

18. Панчишный, М.А. Технология культивирования длиннопалых раков (Astacus leptodactylus) в системах с замкнутым циклом водообмена / М.А. Панчишный // Животноводство и ветеринарная медицина. — 2019. — № 1. — С. 20–23.

19. Панчишный, М.А. Влияние силы освещения помещения на рост и развитие длиннопалых раков (Astacus leptodactylus (Eschscholz, 1823)) при искусственном разведении / М.А. Панчишный, С.О. Баско, А.В. Базаева // Животноводство и ветеринарная медицина. — 2018. — № 4. — С. 33–37.

20. Патент № 2099943 C1 Российская Федерация, МПК A01K 61/00. Способ получения и выращивания личинок речных раков: № 96119124/13: заявл. 26.09.1996: опубл. 27.12.1997 / Е.Н. Александрова, С.И. Веселовзоров, Е.В. Аверьянова; заявитель Всероссийский научно-исследовательский институт ирригационного рыбоводства.

21. Патент № 199367 U1 РФ, МПК A01K 61/00. Многоярусная конструкция для выращивания речного рака: заявл. 27.01.2020: опубл. 10.08.2020.

22. Патент на полезную модель № 25823 U1 РФ, МПК A01K 61/00. Устройство для культивирования личинок речных раков: № 2000130598/20: заявл. 07.12.2000: опубл. 27.10.2002 / Е.Н. Александрова, Р.Р. Борисов, Л.С. Чистова; заявитель государственное научное учреждение «ВНИИР».

23. Сыздыков, К.Н. Искусственное выращивание австралийского рака в установке замкнутого водоснабжения / К.Н. Сыздыков, Ж.Б. Куанчалеев, Э.Б. Марленов [и др.] // Вестник науки Казахского агротехнического университета им. С. Сейфуллина. — 2018. — № 3 (98). — С. 140–153.

24. Утеушев, Р.Р. Размерно-массовые характеристики ракообразных Волго-Каспийского региона и пути их рационального использования / Р.Р. Утеушев // Нефтегазовые технологии и экологическая безопасность. — 2004. — № 2. — С. 102–107.

25. Хохряков, Д.Д. Влияние экологического состояния водоемов на морфометрические показатели широкопалых речных раков (Astacus astacus) / Д.Д. Хохряков // Студенческая наука — взгляд в будущее: мат-лы ХIХ Всероссийской студенческой научной конференции, Красноярск, 27–29 февраля 2024 года. — Красноярск: Красноярский государственный аграрный университет, 2024. — С. 410–413.

26. Шокашева, Д.И. Рост молоди австралийского рака Cherax quadricarinatus в индустриальных условиях в зависимости от температуры среды // Вестник АГТУ. Серия: Рыб. хоз-во. — 2018. — № 2. — С. 98–103. — DOI 10.24143/2073-5529-2018-2-98-103.

27. Cheng, S. A study on primary diets for juveniles of red claw crayfish Cherax quadricarinatus / S. Cheng, Y. Wei, Y. Jia et al. // Aquaculture Research. — 2020. — Vol. 52, № 5. — P. 2138–2145.

28. De Bock, M.S. Sex reversal and growth performance in juvenile females of the freshwater crayfish Cherax quadricarinatus (Parastacidae): effect of increasing temperature and androgenic gland extract in the diet / M.S. De Bock, L.S. Lopez Greco // Aquacult Int. — 2010. — Vol. 18. — P. 231–243.

29. Dvoretsky, A.G. Farming of Indigenous Crayfish in Russia: A Mini-Review of Recent Studies / A.G. Dvoretsky, V.G. Dvoretsky // Animals. — 2025. — № 15. — P. 223. — DOI 10.3390/ANI15020223.

30. Duan, D. Influence of Rice-Crayfish Co-Culture Systems on Soil Properties and Microbial Communities in Paddy Fields / D. Duan, D. He, Z. Liangjie et al. // Plants. — 2025. — Vol. 14, № 15. — P. 2320. — DOI 10.3390/plants14152320.

31. Feng, J. Effects of integrated rice-crayfish farming on soil biodiversity and functions / J. Feng, R. Pan, H.-W. Hu et al. // Science Bulletin. — 2023. — Vol. 68. — P. 2311–2315.

32. Holdich, D. A review of astaciculture: freshwater crayfish farming / D. Holdich // Aquatic Living Resources. — 1993. — Vol. 6 (4). — P. 307–317. — DOI 10.1051/alr:1993032.

33. Ismail, N. First wild record of Australian redclaw crayfish Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) in the East Coast of Peninsular Malaysia / N. Ismail, M.S.A.M. Nasir, A.G. Khaleel et al. // BioInvasions Records. — 2023. — Vol. 12, № 2. — P. 360–368.

34. Jones, C.M. Production of juvenile red claw cray fish, Cherax quadricarinatus (von Martens) (Decapoda, Parastacidae). Development of hatchery and nursery procedures / C.M. Jones // Aquaculture. — 1995. — Vol. 138, № 1-4. — P. 221–238.

35. Li, J. Effects of Different Cultivation Modes on Morphological Traits and Correlations between Traits and Body Mass of Crayfish (Procambarus clarkii) / J. Li, Q. Qin, X. Tian et al. // Biology. — 2024. — Vol. 13, № 6. — P. 395. — DOI 10.3390/biology13060395.

36. Little, P. Influence of temperature and density on crayfish behavior / P. Little, M. Childress, T. Cronin. — 2025. — DOI 10.13140/RG.2.2.18703.09125.

37. Longshaw, M. Biology and Ecology of Crayfish / M. Longshaw, P. Stebbing. — London: CRC Press, 2016. — 374 p.

38. Marenkov, O. Biotechnological bases of organization of industrial crayfish farm in Ukraine / O. Marenkov // Scientific Horizons. — 2019. — Vol. 77 (4). — P. 70–78.

39. Ribeiro, F. Crayfish: Evolution, Habitat and Conservation Strategies / F. Ribeiro. — Nova Science Publishers, Incorporated, 2020. — 253 p.

40. Rodgers, L.J. The effects of monosex culture and stocking density on survival, growth and yield of red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) in earthen ponds / L.J. Rodgers, P.I. Saoud, D.B. Rouse // Aquaculture. — 2006. — Vol. 259. — P. 164–168.

41. Rungsin, W. Production of all-male stock by neofemale technology of the Thai strain of freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii / W. Rungsin, N. Paankhao, U. Na-Nakom // Aquaculture. — 2006. — Vol. 259. — P. 88–94.

42. Shevchenko, V. The Australian red-clawed crayfish (Cherax quadicarinatus Von Martens 1868) is a promising aquaculture object for the south of the Russian Federation / V. Shevchenko, D. Rudoy, Y. Ivanov et al. // BIO Web of Conferences. — 2024. — Vol. 113. — P. 05039. — DOI 10.1051/bioconf/202411305039.

43. Xia, Z. Differentiating pond-intensive, paddy-ecologically, and free-range cultured crayfish (Procambarus clarkii) using stable isotope and multi-element analysis coupled with chemometrics / Z. Xia, Z. Liu, Y. Liu et al. // Foods. — 2024. — Vol. 13, № 18. — P. 2947. — DOI 10.3390/foods13182947.

44. Zhang, W. Optimal fertilization strategy promotes the sustainability of rice–crayfish farming systems by improving productivity and decreasing carbon footprint / W. Zhang, M. Xu, T. Ma et al. // Agronomy for Sustainable Development. — 2024. — Vol. 44. — DOI 10.1007/s13593-024-00952-w.

45. Zharchynska, V. Improving the technology of growing crustaceans the example of redclaw crayfish Cherax quadricarinatus / V. Zharchynska, N. Hrynevych // Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. — 2022. — Vol. 24. — P. 16–23.

1. Aleksandrova, E.N. Main provisions of the strategy for the reproduction of resources of Russian river crayfish (Astacinae latreille, 1802). Vestnik of Astrakhan State Technical University. Series: Fishing Industry, 2017, no. 4, pp. 9–21 (in Russian).

3. Aleksandrova, E.N. Assessment of natural populations of river crayfish when choosing sources of wild breeders for breeding. Vestnik of Astrakhan State Technical University. Series: Fishing Industry, 2014, no. 4, pp. 31–39 (in Russian).

3. Aleksandrova, E.N. Analysis of the results of growing river crayfish of the subfamily Astacinae in order to improve the methods of their cultivation in small reservoirs. Vestnik of Astrakhan State Technical University. Series: Fishing Industry, 2015, no. 2, pp. 47–56 (in Russian).

4. Alekhnovich, A.V., Uglyanets, A.A. Rearing of juvenile narrow-clawed crayfish (Astacus leptodactylus) in ponds with a natural temperature regime. Ecological Bulletin, 2012, no. 4, pp. 104–111 (in Russian).

5. Ankesheva, B.M., Tangatarova, R.R., Pyatikopova, O.V. Formation of a broodstock of Australian redclaw crayfish (Cherax quadricarinatus) in industrial aquaculture. Bulletin of TINRO, 2021, vol. 201, no. 4, pp. 948–959. DOI 10.26428/1606-9919-2021-201-948-959 (in Russian).

6. Borodulin, I.V., Agarkov, E.A., Milyutkin, V.A., Tolpekin, S.A. Justification of the technology for industrial aquaculture (crayfish) production under optimal conditions for their development in the natural environment, including in protected areas. Samara Luka: Problems of Regional and Global Ecology, 2021, vol. 30, no. 1, pp. 72–76. DOI 10.24412/2073-10352021-10380 (in Russian).

7. Borisov, R.R., Kovacheva, N.P., Akimova, M.Yu., Parshin-Chudin, A.V. Biology and cultivation of the Australian red-clawed crayfish Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1898). VNIRO, Moscow, 2013. 47 p. (in Russian).

8. Borisov, R.R., Kovacheva, N.P., Zhigin, A.V. et al. Aquaculture of the Australian redclaw crayfish Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868). VNIRO, Moscow, 2024. 200 p. (in Russian).

9. Derkho, M.A., Chernyshova, L.V., Makarova, T.N. et al. Features of the ecological and sanitary state of fishery reservoirs in the forest-steppe zone of the Chelyabinsk region. AgroIndustrial Complex of Russia, 2022, vol. 29, pp. 192–199 (in Russian).

10. Zharnikov, V. Effect of planting density on the results of growing in artificial conditions for Australian red-clawed crayfish with immobilized claws. Izvestiya TINRO, 2025, vol. 205, pp. 167–178.

11. Zhigin, A.V., Arystangalieva, V.A., Kovacheva, N.P. Influence of water temperature on the growth and survival of Australian redclaw crayfish. In: Natural Resources, Their Current State, Conservation, Commercial and Technical Use: Proceedings of the 8th AllRussian Scientific and Practical Conference Dedicated to the 75th Anniversary of Fisheries Education in Kamchatka. KamchatSTU, Petropavlovsk-Kamchatsky, 2017, рart 1, pp. 86–89 (in Russian).

12. Ilyushina, P.S., Brigida, A.V., Mamonova, A.S. Efficiency of using “Biofloc” technology in aquaculture. Veterinary Medicine and Feeding, 2024, no. 3, pp. 57–60 (in Russian).

13. Kulesh, V.F., Alekhnovich, A.V. Rearing of juvenile narrow-clawed crayfish (Astacus leptodactylus) in cages and ponds in polyculture with fish using heated discharge water from a thermal power plant. Hydrobiological Journal, 2010, vol. 46, pp. 47–61 (in Russian).

14. Lagutkina, L.Yu., Ponomarev, S.V. New object of warm-water aquaculture Australian redclaw crayfish (Cherax quadricarinatus). Vestnik of Astrakhan State Technical University, 2008, no. 6 (47), pp. 220–223 (in Russian).

15. Makarova, T.N., Chernyshova, L.V., Lazorenko, D.S. Influence of abiotic factors on the vital activity of juvenile hybrid whitefish. In: Collection of Materials of the All-Russian (National) Scientific and Practical Conference Dedicated to the 15th Anniversary of the Institute of Biotechnology and Veterinary Medicine “Current Issues in the Development of Agricultural Science”. State Agrarian University of the Northern Trans-Urals, Tyumen, 2021, pp. 812–821 (in Russian).

16. Nefedov, V.N. Results of pilot production testing of methodological recommendations on the biotechnology of obtaining juvenile narrow-clawed crayfish. Collection of Scientific Works of the State Research Institute of Lake and River Fisheries, Leningrad, 1989, Is. 300, pp. 56–73 (in Russian).

17. Nguyen, T.T. Methods of sex change in decapod crustaceans Decapoda (Latreille, 1802) in aquaculture. Natural and Mathematical Sciences in the Modern World, 2013, no. 7, pp. 29–34 (in Russian).

18. Panchishny, M.A. Technology for cultivation of narrow-clawed crayfish (Astacus leptodactylus) in recirculating aquaculture systems. Animal Husbandry and Veterinary Medicine, 2019, no. 1, pp. 20–23 (in Russian).

19. Panchishny, M.A., Basko, S.O., Bazaeva, A.V. Influence of room lighting intensity on the growth and development of narrow-clawed crayfish (Astacus leptodactylus (Eschscholz, 1823)) under artificial breeding. Animal Husbandry and Veterinary Medicine, 2018, no. 4, pp. 33–37 (in Russian).

20. Russian Federation Patent no. 2099943.Method for obtaining and growing larvae of river crayfish. (in Russian).

21. Russian Federation Patent no. 199367 U1. Multi-tiered construction for growing river crayfish. (in Russian).

22. Russian Federation Patent for Utility Model no. 25823. Device for cultivating larvae of river crayfish. (in Russian).

23. Syzdykov, K.N., Kuanchaleev, Zh.B., Marlenov, E.B. et al. Artificial cultivation of Australian crayfish in a recirculating aquaculture system. Science Bulletin of S. Seifullin Kazakh Agro Technical University, 2018, no. 3 (98), pp. 140–153 (in Russian).

24. Uteushev, R.R. Dimensional and weight characteristics of crustaceans in the VolgaCaspian region and ways of their rational use. Oil and Gas Technologies and Environmental Safety, 2004, no. 2, pp. 102–107 (in Russian).

25. Khokhryakov, D.D. Influence of the ecological state of water bodies on the morphometric parameters of the noble crayfish (Astacus Astacus). In: Student Science — a View into the Future: Proceedings of the XIX All-Russian Student Scientific Conference. Krasnoyarsk State Agrarian University. Krasnoyarsk, 2024, pp. 410–413 (in Russian).

26. Shokasheva, D.I. Growth of juvenile Australian crayfish Cherax quadricarinatus under industrial conditions depending on ambient temperature. Vestnik of Astrakhan State Technical University. Series: Fishing Industry, 2018, no. 2, pp. 98–103 (in Russian).

27. Cheng, S., Wei, Y., Jia, Y. et al. A study on primary diets for juveniles of red claw crayfish Cherax quadricarinatus. Aquaculture Research, 2020, vol. 52, pp. 2138–2145.

28. De Bock, M.S., Lopez Greco, L.S. Sex reversal and growth performance in juvenile females of the freshwater crayfish Cherax quadricarinatus (Parastacidae): effect of increasing temperature and androgenic gland extract in the diet. Aquaculture International, 2010, vol. 18, pp. 231–243.

29. Dvoretsky, A.G., Dvoretsky, V.G. Farming of Indigenous Crayfish in Russia: A Mini-Review of Recent Studies. Animals, 2025, vol. 15, pp. 223.

30. Duan, D., He, D., Liangjie, Z. et al. Influence of Rice–Crayfish Co-Culture Systems on Soil Properties and Microbial Communities in Paddy Fields. Plants, 2025, vol. 14, pp. 2320.

31. Feng, J., Pan, R., Hu, H.-W. et al. Effects of integrated rice-crayfish farming on soil biodiversity and functions. Science Bulletin, 2023, vol. 68, pp. 2311–2315.

32. Holdich, D. A review of astaciculture: freshwater crayfish farming. Aquatic Living Resources, 1993, vol. 6, pp. 307–317.

33. Ismail, N., Nasir, M.S.A.M., Khaleel, A.G. et al. First wild record of Australian redclaw crayfish Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) in the East Coast of Peninsular Malaysia. BioInvasions Records, 2023, vol. 12, pp. 360–368.

34. Jones, C.M. Production of juvenile red claw cray fish, Cherax quadricarinatus (von Martens) (Decapoda, Parastacidae). I. Development of hatchery and nursery procedures. Aquaculture, 1995, vol. 138, pp. 221–238.

35. Li, J., Qin, Q., Tian, X. et al. Effects of different cultivation modes on morphological traits and correlations between traits and body mass of crayfish (Procambarus clarkii). Biology, 2024, vol. 13, pp. 395. DOI 10.3390/biology13060395.

36. Little, P., Childress, M., Cronin, T. Influence of temperature and density on crayfish behavior, 2025. DOI 10.13140/RG.2.2.18703.09125.

37. Longshaw, M., Stebbing, P. Biology and Ecology of Crayfish. CRC Press, London, 2016. 374 p.

38. Marenkov, O. Biotechnological bases of organization of industrial crayfish farm in Ukraine. Scientific Horizons, 2019, vol. 77, pp. 70–78.

39. Ribeiro, F. Crayfish: Evolution, Habitat and Conservation Strategies. Nova Science Publishers, Incorporated, 2020. 253 p.

40. Rodgers, L.J., Saoud, I.P., Rouse, D.B. The effects of monosex culture and stocking density on survival, growth and yield of red claw crayfish (Cherax quadricarinatus) in earthen ponds. Aquaculture, 2006, vol. 259, pp. 164–168.

41. Rungsin, W., Paankhao, N., Na-Nakom, U. Production of all-male stock by neofemale technology of the Thai strain of freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii. Aquaculture, 2006, vol. 259, pp. 88–94.

42. Shevchenko, V., Rudoy, D., Ivanov, Y. et al. The Australian red-clawed crayfish (Cherax quadricarinatus Von Martens 1868) is a promising aquaculture object for the south of the Russian Federation. BIO Web of Conferences, 2024, vol. 113, pp. 05039.

43. Xia, Z., Liu, Z., Liu, Y. et al. Differentiating Pond-Intensive, Paddy-Ecologically, and FreeRange Cultured Crayfish (Procambarus clarkii) Using Stable Isotope and Multi-Element Analysis Coupled with Chemometrics. Foods, 2024, vol. 13, pp. 2947.

43. Zhang, W., Xu, M., Ma, T. et al. Optimal fertilization strategy promotes the sustainability of rice-crayfish farming systems by improving productivity and decreasing carbon footprint. Agronomy for Sustainable Development, 2024, vol. 44.

45. Zharchynska, V., Hrynevych, N. Improving the technology of growing crustaceans the example of redclaw crayfish Cherax quadricarinatus. Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies, 2022, vol. 24, pp. 16–23.

Раки (лат. Astacus) — одна из самых знаковых групп пресноводных ракообразных в мире. Удивителен широкий спектр биологических адаптаций пресноводных раков к жизни в пресноводных экосистемах [39]. Речные раки занимают важное место среди промысловых гидробионтов, обладая высокой пищевой ценностью. Их мясо содержит сбалансированный белок, жиры, витамины и минеральные вещества, что делает его ценным диетическим продуктом [29; 37]. В российской ихтиофауне речные раки представляют особый интерес как единственные массовые пищевые беспозвоночные континентальных водоемов, что открывает значительные перспективы для расширения производства деликатесной продукции и отрасли в целом. На территории РФ наиболее распространены два вида раков: длиннопалый (Astacus leptodactylus) и широкопалый (Astacus astacus) [24].

Экологические особенности данного вида определяют его значение как индикатора состояния водных экосистем. Большинство обитает исключительно в чистых водоемах, хотя длиннопалый рак демонстрирует определенную толерантность к антропогенному загрязнению [9]. Критическими факторами среды для этих организмов являются концентрация растворенного кислорода и содержание кальция в воде: дефицит первого приводит к гибели, недостаток второго — к замедлению развития. Температурный режим также играет ключевую роль, поскольку выход за пределы физиологического оптимума вызывает метаболические нарушения и может привести к летальному исходу [11; 15].

Важным условием успешного культивирования раков является обеспечение их выживаемости за счет создания оптимальных условий [20; 21; 22]. Технология их выращивания имеет фундаментальные отличия по сравнению с другими гидробионтами, обусловленные биологией: рост носит асинхронный характер и происходит через линьку [27], а основным лимитирующим фактором плотности посадки и продуктивности выступает каннибализм, что определяет все последующие технологические особенности [28].

Согласно классификации ФАО, популяции астацин относятся к ценным природным ресурсам продовольственного значения [1]. Актуальность развития данной отрасли аквакультуры подчеркивается тем, что численность населения к 2050 году может достигнуть 9,6 млрд человек, что, в свою очередь, повлечет нехватку производимого на сегодняшний день продовольствия [12]. Помимо хозяйственной ценности, эти ракообразные выполняют важные экологические функции, участвуя в трофических цепях и препятствуя процессам эвтрофикации [2]. Наличие устойчивых популяций астацин служит надежным показателем благополучия водной экосистемы.

Для Цитирования:
Ирина Евгеньевна Липпо, Анна Александровна Белоус, Технологические решения в искусственном воспроизводстве и выращивании речных раков (Аstacinae) для дальнейшего развития отрасли в России (обзор). Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2026;1.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: