По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 612.45.67 DOI:10.33920/MED-12-2108-05

Роль факторов антимикробной защиты в патогенезе иммунных нарушений при искривлении носовой перегородки

Корнова Наталья Викторовна к.м.н., доцент кафедры оториноларингологии Федерального государственного бюджетного образовательного учреждения высшего образования «Южно-Уральский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Челябинск, Россия, тел.+7351909-72-80, е-mail: versache-k@mail.ru

В статье представлены данные отечественной и зарубежной литературы о состоянии гуморальных и клеточных факторов локальной антимикробной защиты слизистой оболочки полости носа и околоносовых пазух в патогенезе иммунных нарушений при искривлении носовой перегородки. Проанализирована роль клеточных, гуморальных факторов, межрецепторных взаимодействий клеток респираторного, железистого эпителия, фагоцитов, лимфоцитов при патологических состояниях слизистой оболочки носа и околоносовых пазух. Показана роль иммунных механизмов в развитии патологических реакций при искривлении носовой перегородки. Представленный обзор расширит представление о роли антимикромных факторов в патогенезе иммунных нарушений при искривлении носовой перегородки.

Литература:

1. Завгородняя Е.Г. Цитокины и их место в диагностике и лечении ряда заболеваний ЛОР-органов. Вестник оториноларингологии. 2008. 3: 74–76. [Zavgorodnaya E.G. Cytokines and their place in the diagnosis and treatment of a number of diseases of ENT organs. Vestnik otorinolaringologii 2008. 3: 74–76 (In Russ.).] https:// doi.org/10.1789 6/rosakush20151514–8.

2. Kato A, Hulse KE, Tan BK, Schleimer RP. B lymphocyte lineage cells and the respiratory system. The Journal of allergy and clinical immunology. 2013; 131 (4): 933–957. https://doi.org/10.1016/j.jaci. 2013.02.023

3. Doss М., White M.R., Tecle Т., Hartshorn K.L. Defensins and mucosal immunity.Journal of Leukocyte Biology. 2010..8: 79–92 https://doi.org/10.1189/jib. 069382

4. Exspression of toll-like receptors in human endometrial cells and cell lines /S.L. Young, T. D..Lyddon, R.L. Jorgerson. American Journal of Reproductive Immunology. 2004. 52. 1: 67–73. https://doi.org/10.1155/2010/976024

5. Тырнова Е. В, Алешина Г. М, Янов Ю.К. Сравнительная оценка экспрессии гена toll-подобного рецептора-2 в слизистой оболочке верхних дыхательных путей. 2018. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова, 104 (12), 1503–1515. Tyrnova E.V. Comparative evaluation of the expression of the TOLL-like receptor-2 gene in the upper respiratory tract mucosa. Rossijskij fiziologicheskij zhurnal im. I.M. Sechenova. (In Russ.).] https://doi. org/10.1134/S0869813918120105

6. Mistry P., Laird M.H., Schwarz R.S., Greene S., Dyson T., Snyder G.A., Xiao T.S., Chauhan J., Fletcher S., Toshchakov V.Y., MacKerell A. D., jr., Vogel S.N. Inhibition of TLR signaling by small molecule inhibitors targeting a pocket within the TLR TIR domain. Proc. Natl Acad.Sci. USA.2015. 112 (17): 5455–5460. https://doi.org/10.1074/jbc.M112.360925. Epub 2012 May 30.

7. Egorov V.I., Savlevich E.L. The role of innate immunity in the development of chronic rhinosinusitis and perspectives of its conservative management. Almanac of Clinical Medicine. 2016;44 (7):850–856 https://doi.org/10.15789/15630625-2017-6-731-738

8. Lin L, Chen Z, Tang X, Dai F, Wei J, Sun G. 5-Oxo-ETE from Nasal Epithelial Cells Upregulates Eosinophil Cation Protein by Eosinophils in Nasal Polyps in vitro. Int. Arch. Allergy Immunol. 2018;177 (2):107–115 https://doi.org/ 10.1159/000489819.

9. Чернеховская Н.Е., Выренкова Н.Ю., Мальцева И.М., Волова А.В., Поваляев А.В., Вычужанина Н.В. Состояние мерцательного эпителия бронхов и мукоцилиарного транспорта при хроническом бронхите на фоне длительного курения. Туберкулез и болезни легких. 2018;96 (12):43–48 [Chernekhovskaya N.E., Vyrenkova N.Yu., Maltseva I.M., Volova A.V., Povalyaev A.V., Vychuzhanina N.V. The condition of the ciliated epithelium of the bronchi and mucociliary transport in chronic bronchitis on the background of prolonged smoking. Tuberkulez i bolezni legkih. 2018;96 (12):43–48 (In Russ.)] https://doi.org/10.21292/2075-1230-2018-96-12-43-48

10. Linden S.K. Mucins in the mucosal barrier to infection. Mucosal Immunology. 2008. 1 (3):183–197. https://doi.org/ 10.1038/mi.2008.5

11. Mansson A., Adner M., Hцckerfelt U., Cardell L.O. A distinct Toll-like receptor repertoire in human tonsillar B cells, directly activated by PamCSK, R-837 and CpG 2006 stimulation. Immunology. 2006. 118 (4): 539–548. published: 10 July 2006. https://doi.org/10.1111/j.1365–2567.2006.02392.x

12. Wang J, Li Q, Xie J, Xu Y. Cigarette smoke inhibits BAFF expression and mucosal immunoglobulin A responses in the lung during influenza virus infection. Respiratory Research. 2015; 16 (1): 37. https://doi.org/10.1186/s12931-015-0201-y.

13. Gizinger OA, Ishpakhtina KG. The study of expression of apoptosis receptors (CD95+) on the surface of neutrophils from cervical secretion of women with chlamydial infection and the possibility of its correction by magnetic laser radiation. Vopr Kurortol Fizioter Lech Fiz Kult. 2010 May-Jun; (3):29–31.

14. Никифорова Г.Н. Оптимизация послеоперационного периода у больных после хирургической коррекции носового дыхания. Российская оториноларингология. 2013. 5: 140–144 [Nikiforova G.N. Optimization of the postoperative period in patients after surgical correction of nasal breathing. Rossiyskaya otorinolaringologiya. 2013. 5: 140–144 (In Russ.)]

15. Komorowska A., Komorowski J., Banasik M. Cytokines locally produced by lymphocytes removed from the hypertrophic nasopharyngeal and palatine tonsils Int.J. Pediatr. Otorinolaringol. 2015. 69 (7): 937–941 https://doi. org/10.1016/j.ijporl.2015.01.035

16. Крюков, А.И. Послеоперационный гемостаз при внутриносовых вмешательствах. Русский мед. журн. 2011. 24: 1465–1467 [Kryukov, A.I. Postoperative hemostasis during intranasal interventions. Russkij med. zhurn.. 2011. 24: 1465–1467 (In Russ.)]

17. Terskova, N.V. Shnayder N.A., Vakhrushev S.G. Polymorphism of interleukin-1 gene and susceptibility to chronic adenoiditis development at children of Siberia. Med. Health Sci.J. 2013. 14 (3): 150–159.

18. Koch A.E., Polverini P.J., Kunkel S.L., et al. Interleukin-8 as a macrophage-derived mediator of angiogenesis. Science. 1992. 258: 1798–1801

19. Kishimoto T. Interleukin-6: discovery of pleiotropic cytokine. Arthritis Res. Ther. 2016. 8 (2); 2–14: https://doi. org/10.1186/ar1916

20. Lin Z.-Q., Kondo T., Ishida Y. et al. Essential involvement of IL6 in the skin wound-healing process as evidenced by delayed wound healing in IL--6-deficient mice.J. Leukoc. Biol. 2003. 73: 713–721: https://doi.org/ 10.1189/jlb.0802397

21. Hutmacher C, Núñez N, Liuzzi AR, Becher B, Neri D. Targeted delivery of IL2 to the tumor stroma potentiates the action of immune checkpoint inhibitors by preferential activation of NK and CD8+ T cells. Cancer Immunol Res. 2019 Feb19. pii: canimm.0566.2018. https://doi.org/ 10.1158/2326–6066. CIR-18–0566

22 Galkin A.A., Demidova V.S. The role of adhesion in activation of neutrophils and cytotoxic interaction between neutrophils and the endothelium //Uspekhi sovremennoy biologii. Progress of Modern Biology. 2011. 131 (1):62–78. https://doi.org/ 10.17650/2408-9613-2015-2-2-25-31

23. Вишняков В.В. Профилактика и лечение постимплантационных верхнечелюстных синуситов при проведении восстановительных операций на альвеолярном отростке верхней челюсти. Российская ринология. 2018. 26 (3): 9–14 [Vishnyakov V.V. Prevention and treatment of post-implantation maxillary sinusitis during reconstructive operations on the alveolar process of the upper jaw. Rossiyskaya rinologiya. 2018. 26 (3): 9–14 (In Russ.)] https://doi. org/10.17116/rosrino2018260319

24. Bhattacharyya N. Cytological characterization of persistent paranasal sinussecretions after endoscopic sinus surgery. Am J. Rhinol. 2007 Jan-Feb;21 (1):1–4. https://doi.org/ 10.2500/ajr.2007.21.2982

25. Gursoy U.K., Kononen E., Luukkonen N., Uitto V.-J. Human neutrophil defensins and their effect on epithelial cells. J. Periodontol. 2013; 84 (1): 126–133 https://doi.org/10.1902/jop.2012.120017.

1. Zavgorodnaia E.G. Tsitokiny i ikh mesto v diagnostike i lechenii riada zabolevanii LOR-organov [Cytokines and their place in the diagnosis and treatment of a number of diseases of ENT organs]. Vestnik otorinolaringologii [Bulletin of otorhinolaryngology] 2008. 3: 74–76. https://doi.org/10.1789 6/rosakush20151514–8. (In Russ.).

2. Kato A, Hulse KE, Tan BK, Schleimer RP. B lymphocyte lineage cells and the respiratory system. The Journal of allergy and clinical immunology. 2013; 131 (4): 933–957. https://doi.org/10.1016/j.jaci. 2013.02.023

3. Doss М., White M.R., Tecle Т., Hartshorn K.L. Defensins and mucosal immunity.Journal of Leukocyte Biology. 2010..8: 79–92 https://doi.org/10.1189/jib. 069382

4. Expression of toll-like receptors in human endometrial cells and cell lines /S.L. Young, T. D..Lyddon, R.L. Jorgerson. American Journal of Reproductive Immunology. 2004. 52. 1: 67–73. https://doi.org/10.1155/2010/976024

5. Tyrnova E.V., Aleshina G. M, Ianov Iu.K. Sravnitelnaia otsenka ekspressii gena toll-podobnogo retseptora-2 v slizistoi obolochke verkhnikh dykhatelnykh putei [Comparative evaluation of the expression of the TOLL-like receptor-2 gene in the upper respiratory tract mucosa]. Rossiiskii fiziologicheskii zhurnal im. I.M. Sechenova [Russian physiological journal named after I.M. Sechenov]. (In Russ.). https://doi.org/10.1134/S0869813918120105

6. Mistry P., Laird M.H., Schwarz R.S., Greene S., Dyson T., Snyder G.A., Xiao T.S., Chauhan J., Fletcher S., Toshchakov V.Y., MacKerell A. D., jr., Vogel S.N. Inhibition of TLR signaling by small molecule inhibitors targeting a pocket within the TLR TIR domain. Proc. Natl Acad.Sci. USA.2015. 112 (17): 5455–5460. https://doi.org/10.1074/jbc.M112.360925. Epub 2012 May 30.

7. Egorov V.I., Savlevich E.L. The role of innate immunity in the development of chronic rhinosinusitis and perspectives of its conservative management. Almanac of Clinical Medicine. 2016;44 (7):850–856 https://doi.org/10.15789/1563-0625 -2017-6-731-738

8. Lin L, Chen Z, Tang X, Dai F, Wei J, Sun G. 5-Oxo-ETE from Nasal Epithelial Cells Upregulates Eosinophil Cation Protein by Eosinophils in Nasal Polyps in vitro. Int. Arch. Allergy Immunol. 2018;177 (2):107–115 https://doi.org/ 10.1159/000489819.

9. Chernekhovskaia N.E., Vyrenkova N.Iu., Maltseva I.M., Volova A.V., Povaliaev A.V., Vychuzhanina N.V. Sostoianie mertsatelnogo epiteliia bronkhov i mukotsiliarnogo transporta pri khronicheskom bronkhite na fone dlitelnogo kureniia [The condition of the ciliated epithelium of the bronchi and mucociliary transport in chronic bronchitis on the background of prolonged smoking]. Tuberkulez i bolezni legkikh [Tuberculosis and lung diseases]. 2018;96 (12):43–48 (In Russ.)] https://doi.org/10.21292/2075-1230-2018-96-12-43-48

10. Linden S.K. Mucins in the mucosal barrier to infection. Mucosal Immunology. 2008. 1 (3):183–197. https://doi.org/ 10.1038/mi.2008.5

11. Mansson A., Adner M., Hцckerfelt U., Cardell L.O. A distinct Toll-like receptor repertoire in human tonsillar B cells, directly activated by PamCSK, R-837 and CpG 2006 stimulation. Immunology. 2006. 118 (4): 539–548. published: 10 July 2006. https://doi.org/10.1111/j.1365–2567.2006.02392.x

12. Wang J, Li Q, Xie J, Xu Y. Cigarette smoke inhibits BAFF expression and mucosal immunoglobulin A responses in the lung during influenza virus infection. Respiratory Research. 2015; 16 (1): 37. https://doi.org/10.1186/s12931-015-0201-y.

13. Gizinger OA, Ishpakhtina KG. The study of expression of apoptosis receptors (CD95+) on the surface of neutrophils from cervical secretion of women with chlamydial infection and the possibility of its correction by magnetic laser radiation. Vopr Kurortol Fizioter Lech Fiz Kult. 2010 May-Jun; (3):29–31.

14. Nikiforova G.N. Optimizatsiia posleoperatsionnogo perioda u bolnykh posle khirurgicheskoi korrektsii nosovogo dykhaniia [Optimization of the postoperative period in patients after surgical correction of nasal breathing]. Rossiiskaia otorinolaringologiia [Russian otorhinolaryngology]. 2013. 5: 140–144 (In Russ.)

15. Komorowska A., Komorowski J., Banasik M. Cytokines locally produced by lymphocytes removed from the hypertrophic nasopharyngeal and palatine tonsils Int.J. Pediatr. Otorinolaringol. 2015. 69 (7): 937–941 https://doi.org/10.1016/j. ijporl.2015.01.035

16. Kriukov, A.I. Posleoperatsionnyi gemostaz pri vnutrinosovykh vmeshatelstvakh [Postoperative hemostasis during intranasal interventions]. Russkii med. zhurn. [Russian medical journal]. 2011. 24: 1465–1467 (In Russ.)

17. Terskova, N.V. Shnayder N.A., Vakhrushev S.G. Polymorphism of interleukin-1 gene and susceptibility to chronic adenoiditis development at children of Siberia. Med. Health Sci.J. 2013. 14 (3): 150–159.

18. Koch A.E., Polverini P.J., Kunkel S.L., et al. Interleukin-8 as a macrophage-derived mediator of angiogenesis. Science. 1992. 258: 1798–1801

19. Kishimoto T. Interleukin-6: discovery of pleiotropic cytokine. Arthritis Res. Ther. 2016. 8 (2); 2–14: https:// doi.org/10.1186/ar1916

20. Lin Z.-Q., Kondo T., Ishida Y. et al. Essential involvement of IL6 in the skin wound-healing process as evidenced by delayed wound healing in IL--6-deficient mice.J. Leukoc. Biol. 2003. 73: 713–721: https://doi.org/ 10.1189/jlb.0802397

21. Hutmacher C, Núñez N, Liuzzi AR, Becher B, Neri D. Targeted delivery of IL2 to the tumor stroma potentiates the action of immune checkpoint inhibitors by preferential activation of NK and CD8+ T cells. Cancer Immunol Res. 2019 Feb 19. pii: canimm.0566.2018. https://doi.org/ 10.1158/2326–6066. CIR-18–0566

22 Galkin A.A., Demidova V.S. The role of adhesion in activation of neutrophils and cytotoxic interaction between neutrophils and the endothelium //Uspekhi sovremennoy biologii. Progress of Modern Biology. 2011. 131 (1):62–78. https:// doi.org/ 10.17650/2408-9613-2015-2-2-25-31

23. Vishniakov V.V. Profilaktika i lechenie postimplantatsionnykh verkhnecheliustnykh sinusitov pri provedenii vosstanovitelnykh operatsii na alveoliarnom otrostke verkhnei cheliusti [Prevention and treatment of post-implantation maxillary sinusitis during reconstructive operations on the alveolar process of the upper jaw]. Rossiiskaia rinologiia [Russian rhinology]. 2018. 26 (3): 9–14 (In Russ.) https://doi.org/10.17116/rosrino2018260319

24. Bhattacharyya N. Cytological characterization of persistent paranasal sinussecretions after endoscopic sinus surgery. Am J. Rhinol. 2007 Jan-Feb;21 (1):1–4. https://doi.org/ 10.2500/ajr.2007.21.2982

25. Gursoy U.K., Kononen E., Luukkonen N., Uitto V.-J. Human neutrophil defensins and their effect on epithelial cells. J. Periodontol. 2013; 84 (1): 126–133 https://doi.org/10.1902/jop.2012.120017.

Принятые сокращения:

IL — интерлейкины

PAMP — патоген-ассоциированные молекулярные паттерны

TNF-α — туморонекротический фактор

sIgA — секреторный иммуноглобулин А

ЛФ — лимфоциты

НГ — нейтрофильные гранулоциты

Treg-Т — регуляторные лимфоциты

mRNA — матричная РНК

CD — кластер дифференцировки

IFN-α — интерферон гамма

MALT — мукозоассоциированная лимфоидная ткань

MUCs — гелеобразующие муцины

ERK киназа — endothelial extracellular signal-regulated kinase

Слизистая оболочка полости носа и околоносовых пазух — сложно организованная система, участвующая в поддержании гомеостатической регуляции организма, кондиционировании вдыхаемого воздуха, обеспечении колонизационной резистентности дыхательных путей, задержке и инактивации антигенов. Вышеописанные процессы обеспечивается взаимодействием анатомических структур, физиологических, иммунологических механизмов и их нарушение, связанное с изменением структуры, приводит к нарушениям на клеточном, тканевом и органном уровнях.

Иммунная система слизистой оболочки полости носа представляет собой совокупность клеток и продуцируемых ими веществ, активно реагирующих на эндо- и экзогенные воздействия. Совокупность лимфоидных клеток слизистой оболочки, клеточных и гуморальных факторов врожденного иммунитета, находится в тесном контакте, реализуя протективные эффекты с участием мукозоассоциированной лимфоидной ткани — MALT [1]. А. Каto и соавторы указали на роль межрецепторных взаимодействий клеток респираторного, железистого эпителия, фагоцитов, ЛФ, провоспалительных цитокинов, лизоцима, лактоферрина при патологических состояниях слизистой деформированной носовой полости [2]. При деформации носовой перегородки увеличивается риск контаминации патогенами слизистой оболочки полости носа. Данный процесс находится в прямой корреляционной зависимости от количества и функционального статуса Toll-подобных рецепторов врожденного иммунитета: Toll-Like Receptors 2, 6, 9 [3]. Данный тип образ-распознающих рецепторов относится к семейству трансмембранных и обнаружен на поверхности эпителиоцитов, моноцитов/макрофагов, полиморфноядерных лейкоцитах. Усиление их экспрессии напрямую связано с функцией патоген-ассоциированных молекулярных паттернов (PAMP) [4]. Экспрессия гена TLR2 детектирована в образцах слизистой оболочка носа и околоносовых пазух, барабанной и мастоидальной полости, небных миндалинах. При искривлении носовой перегородки и воспалительных процессах полости носа зарегистрировано снижение экспрессии гена TLRs-2 на 34% [5] P. Mistry с соавт. заявил о снижении на 14% экспрессии гена Toll-подобного рецептора-9 (TLRs9) на поверхности эпителиоцитов слизистой оболочки верхних дыхательных путей при нарушении носового дыхания [6].

Для Цитирования:
Корнова Наталья Викторовна, Роль факторов антимикробной защиты в патогенезе иммунных нарушений при искривлении носовой перегородки. Терапевт. 2021;8.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: