По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

  • Главная
  • Журналы
  • Терапевт
  • №9 2021
  • Роль факторов антимикробной защиты в патогенезе иммунных нарушений при искривлении носовой перегородки. Часть 2
УДК: 612.45.67 DOI:10.33920/MED-12-2109-06

Роль факторов антимикробной защиты в патогенезе иммунных нарушений при искривлении носовой перегородки. Часть 2

Корнова Наталья Викторовна канд. мед. наук, доц. кафедры оториноларингологии, Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Южно-Уральский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации», г. Челябинск, Россия, тел.+7351909‑72‑80, е-mail: versache-k@mail.ru
Ключевые слова: носовая перегородка , врожденный иммунитет , цитокины , искривление носовой перегородки

В статье представлены данные отечественных и зарубежных исследователей о состоянии гуморальных и клеточных факторов антимикробной защиты слизистых оболочек полости носа и околоносовых пазух в патогенезе иммунных и оксидативных нарушений при искривлении носовой перегородки. Одним из факторов, влияющих на интенсивность воспалительной реакции и скорость эпителизации слизистой оболочки, является снижение экспрессии рецепторов к IL-10 и, как следствие, уменьшение его эндогенной выработки. В экспериментах in vivo показано, что сниженная экспрессия генов, ответственных за синтез интерлейкина-10, ингибирует инфильтрацию раневой послеоперационной поверхности фагоцитов, снижая экспрессию СС-хемокинов (MCP-1, MIP-1α), их рецепторов, цитокинов интерлейкина-1α. Проанализирована роль клеточных, гуморальных факторов, межрецепторных взаимодействий клеток респираторного, железистого эпителия, фагоцитов, лимфоцитов при патологических состояниях слизистой оболочки носа и околоносовых пазух. Показана роль иммунных механизмов в развитии патологических реакций при искривлении носовой перегородки. Представленный обзор расширит представление о роли антимикробных факторов в патогенезе иммунных нарушений при искривлении носовой перегородки.

Литература:

1. Larkson B.D., LaFrance-Corey R.G., Kahoud R.J., Farias-Moeller R., Payne E. T., Howe.C. L.. Functional deficiency in endogenous interleukin-1 receptor antagonist in patients with febrile infectionrelated epilepsy syndrome (FIRES). Ann Neurol.2019 Feb 18. https://doi.org/ 10.1002/ana.25439.

2. Lee HM, Choi JH, Chae SW, et al. Expression of epidermal growth factor receptor and its ligands in chronic sinusitis // Ann. Otol. Rhinol. Laryngol. — 2003. — V.112. — P.132–138. https://doi.org/ 10.1002/lio2.117

3. Thornton S.C., Pot S.B., Walsh B.J. et al. Interaction of immune and connective tissue cells: the effects of lymphokines and monokines on fibroblasts growth. J. Leuk. Biol. 1990. 47: 312–320. https://doi. org/ 10.15789/1563‑0625‑2008‑4‑5‑439‑448

4. Goldring M.B., Krane S.M. Modulation by recombinant interleukin-1 synthesis of types I and III collagens and associated procollagen mRNA levels in cultured human cells. J. Biol. Chem. 1987. 262: 16724–16729

5. Soma Y., Dvonch V., Grotendorst G.R. Platelet-derived growth factor AA homodimer is the predominant isoform in human platelets 250 and acute human wound fluid. FASEB.2012. 6.2996– 3001 https://doi.org/ 10.1172/JCI118169

6. Sato Y., Ohshima T. The expression of mRNA of proinflammatory cytokines during skin wound healing in mice: a preliminary study for forensic wound age estimation (II). Int.J. Legal. Med. 2010. 113:140–145. https://doi.org/ 10.1002/ana.32469.

7. Kusunoki M, Yuki M, Ishitobi H, Kobayashi Y, Nagaoka M, Takahashi Y, Fukuba N, Komazawa Y, Shizuku T, Kinoshita Y. Effect of Age on Effectiveness of Vonoprazan in Triple Therapy for Helicobacter pylori Eradication. Intern Med. 2019 Feb 1. https://doi.org/ 10.2169/internalmedicine.2233–18.

8. Rennekampff H.-O., Hansbrough J. F., Kiessig V. et al. Bioactive interleukin-8 is espressed in wounds and enchances wound healing. J. Surg. Res. 2000. 93: 41–54. https://doi.org/ 10.1006/jsre.2000.5892

9. Zielinski MS, Vardar E, Vythilingam G, Engelhardt EM, Hubbell JA, Frey P,Larsson HM. Quantitative intrinsic auto-cathodoluminescence can resolve spectral signatures of tissue-isolated collagen extracellular matrix. Commun Biol. 2019. Feb 18:2:69. https://doi.org/ 10.1038/s41551‑019‑0469‑1

10. Wei Y, Chhiba KD, Zhang F, Ye X, Wang L, Zhang L, Robida PA, Moreno-Vinasco L,Schnaar RL, Roers A, Hartmann K, Lee CM, Demers D, Zheng T, Bochner BS, Zhu Z. Mast Cell-Specific Expression of Human Siglec-8 in Conditional Knock-in Mice. Int J.Mol. Sci. 2018 Dec 21; 20 (1) https://doi.org/ 10.3390/ijms20010019.

11. Kusunoki M, Yuki M, Ishitobi H, Kobayashi Y, Nagaoka M, Takahashi Y, Fukuba N, Komazawa Y, Shizuku T, Kinoshita Y. Effect of Age on Effectiveness of Vonoprazan in Triple Therapy for Helicobacter pylori Eradication. Intern Med. 2019 Feb 1. https://doi.org/ 10.2169/internalmedicine.2233–18

12. Chen YP, Wu HL, Boyé K, Pan CY, Chen YC, Pujol N, Lin CW, Chiu LY, Billottet C, Alves ID, Bikfalvi A, Sue SC. Oligomerization State of CXCL4 Chemokines Regulates G Protein-Coupled Receptor Activation. ACS Chem Biol. 2017 Nov 17;12 (11):2767–2778; https://doi.org/ 10.1021/acschembio.7b00704

13. Affandi AJ, Silva-Cardoso S.C., Garcia S, Leijten EFA, van Kempen TS, Marut W, van Roon JAG, Radstake TRDJ. CXCL4 is a novel inducer of human Th17 cells and correlates with IL-17 and IL-22 in psoriatic arthritis. Eur.J. Immunol. 2018 Mar;48 (3):522–531; https://doi.org/ 10.1002/eji.201747195

14. Fuller R.W., Bromer W.W., Snoddy H.D., Baker J.C. Regulation of enzyme activity by glucagon: increased hormonal activity of iodinated glucagon. Adv. Enzyme Regul.1975; 13:201–215; https:// doi.org/ 10.1016/0065–2571 (75) 90016–3

15. Тенчурин Т.Х., Люндуп А.В., Демченко А.Г., Крашенинников М. Е., Балясин М.В., Клабуков И.Д., Шепелев А.Д., Мамагулашвили В.Г., Орехов А.C., Чвалун С.Н., Дюжева Т.Г. Модификация биодеградируемого волокнистого матрикса эпидермальным фактором роста при эмульсионном электроформовании для стимулирования пролиферации эпителиальных клеток. Гены и клетки. 2017. 12 (4): 47–52.

16. Gerding DN, Bean B, Peterson LR, Moody J, Bettin K. Cephalothin clearance of Staphylococcus aureus from two experimental infection sites in the presence andabsence of local phagocytic cells. J. Antimicrob. Chemother. 1987 Nov;20 (5):685–95. https://doi.org/ 10.1093/jac/20.5.685

17. Koyama T, Kariya S, Sato Y, Gion Y, Higaki T, Haruna T, Fujiwara T, Minoura A,Takao S, Orita Y, Kanai K, Taniguchi M, Nishizaki K, Okano M. Significance of IgG4‑positive cells in severe eosinophilic chronic rhinosinusitis. Allergol Int. 2018 Oct 10. https://doi.org/ 1323–8930 (18) 30138–2

18. Nirodi CS, Devalaraja R, Nanney LB, Arrindell S, Russell S, Trupin J, RichmondA. Chemokine and chemokine receptor expression in keloid and normal fibroblasts. Wound Repair Regen. 2000 SepOct;8 (5):371–82. https://doi.org/ 10.1111/j.1524-475x.2000.00371.x

19. Reinke J. M, SorgH. Wound repair and regeneration. Eur. Surg. Res. 2012; 49 (1): 35–43 https://doi. org/ 10.1159/000339613

20. Oskeritzian C.A. Mast cells and wound healing. Adv. Wound Care. 2012; 1 (1): 23–28; Wulff B.C., Wilgus T.A. Mast cell activity in the healing wound: more than meets the eye? Exp. Dermatol. 2013; 22 (8): 507–510. https://doi.org/ 10.1089/wound.2011.0357

21. Gizinger OA, Korkmazov AM, Sumerkina VA. Functional activity of neutrophils and local manifestations of oxidative stress in the mucous membrane of the nasal cavity in the early postoperative period. Vestn Otorinolaringol.2019;84 (2):40–45. https://doi.org/ 10.17116/otorino20198402140.

1. Larkson B.D., LaFrance-Corey R.G., Kahoud R.J., Farias-Moeller R., Payne E. T., Howe.C. L.. Functional deficiency in endogenous interleukin-1 receptor antagonist in patients with febrile infection-related epilepsy syndrome (FIRES). Ann Neurol.2019 Feb 18. https://doi.org/ 10.1002/ana.25439.

2. Lee HM, Choi JH, Chae SW, et al. Expression of epidermal growth factor receptor and its ligands in chronic sinusitis // Ann. Otol. Rhinol. Laryngol. — 2003. — V.112. — P.132–138. https://doi.org/ 10.1002/lio2.117

3. Thornton S.C., Pot S.B., Walsh B.J. et al. Interaction of immune and connective tissue cells: the effects of lymphokines and monokines on fibroblasts growth. J. Leuk. Biol. 1990. 47: 312–320. https:// doi.org/ 10.15789/1563‑0625‑2008‑4‑5‑439‑448

4. Goldring M.B., Krane S.M. Modulation by recombinant interleukin-1 synthesis of types I and III collagens and associated procollagen mRNA levels in cultured human cells. J. Biol. Chem. 1987. 262: 16724–16729

5. Soma Y., Dvonch V., Grotendorst G.R. Platelet-derived growth factor AA homodimer is the predominant isoform in human platelets 250 and acute human wound fluid. FASEB.2012. 6.2996– 3001 https://doi.org/ 10.1172/JCI118169

6. Sato Y., Ohshima T. The expression of mRNA of proinflammatory cytokines during skin wound healing in mice: a preliminary study for forensic wound age estimation (II). Int.J. Legal. Med. 2010. 113:140–145. https://doi.org/ 10.1002/ana.32469.

7. Kusunoki M, Yuki M, Ishitobi H, Kobayashi Y, Nagaoka M, Takahashi Y, Fukuba N, Komazawa Y, Shizuku T, Kinoshita Y. Effect of Age on Effectiveness of Vonoprazan in Triple Therapy for Helicobacter pylori Eradication. Intern Med. 2019 Feb 1. https://doi.org/ 10.2169/internalmedicine.2233–18.

8. Rennekampff H.-O., Hansbrough J. F., Kiessig V. et al. Bioactive interleukin-8 is espressed in wounds and enchances wound healing. J. Surg. Res. 2000. 93: 41–54. https://doi.org/ 10.1006/jsre.2000.5892

9. Zielinski MS, Vardar E, Vythilingam G, Engelhardt EM, Hubbell JA, Frey P,Larsson HM. Quantitative intrinsic auto-cathodoluminescence can resolve spectral signatures of tissue-isolated collagen extracellular matrix. Commun Biol. 2019. Feb 18:2:69. https://doi.org/ 10.1038/s41551‑019‑0469‑1

10. Wei Y, Chhiba KD, Zhang F, Ye X, Wang L, Zhang L, Robida PA, Moreno-Vinasco L,Schnaar RL, Roers A, Hartmann K, Lee CM, Demers D, Zheng T, Bochner BS, Zhu Z. Mast Cell-Specific Expression of Human Siglec-8 in Conditional Knock-in Mice. Int J.Mol. Sci. 2018 Dec 21; 20 (1) https://doi.org/ 10.3390/ijms20010019.

11. Kusunoki M, Yuki M, Ishitobi H, Kobayashi Y, Nagaoka M, Takahashi Y, Fukuba N, Komazawa Y, Shizuku T, Kinoshita Y. Effect of Age on Effectiveness of Vonoprazan in Triple Therapy for Helicobacter pylori Eradication. Intern Med. 2019 Feb 1. https://doi.org/ 10.2169/internalmedicine.2233–18

12. Chen YP, Wu HL, Boyé K, Pan CY, Chen YC, Pujol N, Lin CW, Chiu LY, Billottet C, Alves ID, Bikfalvi A, Sue SC. Oligomerization State of CXCL4 Chemokines Regulates G Protein-Coupled Receptor Activation. ACS Chem Biol. 2017 Nov 17;12 (11):2767–2778; https://doi.org/ 10.1021/acschembio.7b00704

13. Affandi AJ, Silva-Cardoso S.C., Garcia S, Leijten EFA, van Kempen TS, Marut W, van Roon JAG, Radstake TRDJ. CXCL4 is a novel inducer of human Th17 cells and correlates with IL-17 and IL-22 in psoriatic arthritis. Eur.J. Immunol. 2018 Mar;48 (3):522–531; https://doi.org/ 10.1002/eji.201747195

14. Fuller R.W., Bromer W.W., Snoddy H.D., Baker J.C. Regulation of enzyme activity by glucagon: increased hormonal activity of iodinated glucagon. Adv. Enzyme Regul.1975; 13:201–215; https:// doi.org/ 10.1016/0065–2571 (75) 90016–3

15. Tenchurin T.Kh., Liundup A.V., Demchenko A.G., Krasheninnikov M. E., Baliasin M.V., Klabukov I.D., Shepelev A.D., Mamagulashvili V.G., Orekhov A.C., Chvalun S.N., Diuzheva T.G. Modifikatsiia biodegradiruemogo voloknistogo matriksa epidermalnym faktorom rosta pri emulsionnom elektroformovanii dlia stimulirovaniia proliferatsii epitelialnykh kletok [Modification of a biodegradable fibrous matrix with epidermal growth factor by emulsion electroforming to stimulate the proliferation of epithelial cells]. Geny i kletki [Genes and cells]. 2017.12 (4): 47–52. (In Russ.)

16. Gerding DN, Bean B, Peterson LR, Moody J, Bettin K. Cephalothin clearance of Staphylococcus aureus from two experimental infection sites in the presence andabsence of local phagocytic cells. J. Antimicrob. Chemother. 1987 Nov;20 (5):685–95. https://doi.org/ 10.1093/jac/20.5.685

17. Koyama T, Kariya S, Sato Y, Gion Y, Higaki T, Haruna T, Fujiwara T, Minoura A,Takao S, Orita Y, Kanai K, Taniguchi M, Nishizaki K, Okano M. Significance of IgG4‑positive cells in severe eosinophilic chronic rhinosinusitis. Allergol Int. 2018 Oct 10. https://doi.org/ 1323–8930 (18) 30138–2

18. Nirodi CS, Devalaraja R, Nanney LB, Arrindell S, Russell S, Trupin J, RichmondA. Chemokine and chemokine receptor expression in keloid and normal fibroblasts. Wound Repair Regen. 2000 SepOct;8 (5):371–82. https://doi.org/ 10.1111/j.1524-475x.2000.00371.x

19. Reinke J. M, SorgH. Wound repair and regeneration. Eur. Surg. Res. 2012; 49 (1): 35–43 https:// doi.org/ 10.1159/000339613

20. Oskeritzian C.A. Mast cells and wound healing. Adv. Wound Care. 2012; 1 (1): 23–28; Wulff B.C., Wilgus T.A. Mast cell activity in the healing wound: more than meets the eye? Exp. Dermatol. 2013; 22 (8): 507–510. https://doi.org/ 10.1089/wound.2011.0357

21. Gizinger OA, Korkmazov AM, Sumerkina VA. Functional activity of neutrophils and local manifestations of oxidative stress in the mucous membrane of the nasal cavity in the early postoperative period. Vestn Otorinolaringol.2019;84 (2):40–45. https://doi.org/ 10.17116/otorino20198402140.

Принятые сокращения:

IL — интерлейкины

PAMP — патоген-ассоциированные молекулярные паттерны

TNF- — туморонекротический фактор

sIgA — секреторный иммуноглобулин

А ЛФ — лимфоциты

НГ — нейтрофильные гранулоциты

Treg-Т — регуляторные лимфоциты

mRNA — матричная РНК

CD — кластер дифференцировки

IFN- — интерферон гамма

MALT — мукозоассоциированная лимфоидная ткань

MUCs — гелеобразующие муцины

ERK киназа — endothelial extracellular signal-regulated kinase

Хирургическое вмешательство, устраняя дефекты искривления носовой перегородки, приводит к девиации иммунных реакций слизистых оболочек полости носа и околоносовых пазух. Процесс послеоперационной репарации эпителия также связан с иммунными механизмами. По мнению B. D., Larkson с соавторами, регуляция процесса послеоперационной репарации эпителия осуществляется через рецепторы эпидермального фактора роста (EGFR) и цитокины семейства IL-1 [1]. Роль IL-1β на этапе грануляции состоит в стимулировании роста и активации метаболических процессов в соединительной ткани, индукции синтеза эйкозаноидов фибробластами, в частности простагландина Е2. Представители семейства IL-1 взаимно усиливают провоспалительные эффекты, повышая пролиферативную активность фибробластов и синтез данной клеточной популяцией глюкозамингликанов [2]. При заживлении раневой поверхности в грануляционной ткани, под действием IL-8, TNF-α, фактора роста сосудистого эндотелия (VEGF) происходит массивное образование новых кровеносных сосудов и синтез коллагена [3]. По мнению М. Perez-Ruiz, IL-1 значительно повышает экспрессию генов, регулирующих выработку коллагена, и этот процесс скорее носит компенсаторный характер, в условиях распада коллагена. M. B Goldring с соавторами также сообщает о возможности IL-1 влиять на увеличение синтеза коллагена фибробластами человека, in vitro [4]

Повреждение тканей, сопровождающее оперативное вмешательство, используемое для устранения девиаций носовой перегородки, приводит к деструкции кровеносных сосудов, что влияет на активацию системы гемостатического регулирования. Тромбоциты, как активные участники процессов гемостаза принимают участие в формировании кровяного сгустка и секретируют ростовые факторы: эпидермальный (ЕGF), тромбоцитарный (PDGF) и трансформирующий фактор роста-β (TGF-β). Роль вышеперечисленных пептидов — это регуляция и нормализация гомеостаза in situ, активации фагоцитов и фибробластов [5]

Для Цитирования:
Корнова Наталья Викторовна, Роль факторов антимикробной защиты в патогенезе иммунных нарушений при искривлении носовой перегородки. Часть 2. Терапевт. 2021;9.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными:
В избранное
Рекомендовать
Цитировать
Получить выпуск бесплатно!

Цитировать

Для Цитирования:

Получить бесплатно

Нажимая кнопку "Получить доступ" вы даёте своё согласие обработку своих персональных данных

Войти

Забыли пароль?
Сменить через SMS или по Email

Регистрация

Ошибка капчи

Введите код подтверждения

На указанный Вами номер телефона был отправлен код подтверждения.
Повторно запросить код можно будет через секунд.

Войдите в учетную запись

Активация промокода

Введите код подтверждения

На указанный Вами номер телефона был отправлен код подтверждения.
Повторно запросить код можно будет через секунд.

Введите код подтверждения

На указанный Вами номер телефона был отправлен код подтверждения.
Повторно запросить код можно будет через секунд.

Введите код подтверждения

На указанный Вами номер телефона был отправлен код подтверждения.
Повторно запросить код можно будет через секунд.

Войдите в учетную запись

Войдите в учетную запись

Заявка на подписку

Обратная связь

Использовать это устройство?

Одновременно использовать один аккаунт разрешено только с одного устройства.

Введите код подтверждения

На указанный Вами номер телефона был отправлен код подтверждения.
Повторно запросить код можно будет через секунд.

Выберите тип

Мы перевели вас на Русскую версию сайта
You have been redirected to the Russian version
Этот сайт использует cookies
Подробности