По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 595.384:591.134 DOI:10.33920/sel-09-2502-03

Особенности роста и выживаемости австралийского красноклешневого рака при иммобилизации клешней в искусственных условиях

В.С. Жарников Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии (ГНЦ РФ ФГБНУ), Россия, Москва, E-mail: 1zharnikov@mail.ru
И.Н. Никонова Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии (ГНЦ РФ ФГБНУ), Россия, Москва
А.А. Глазунов Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии (ГНЦ РФ ФГБНУ), Россия, Москва

На основе проведенного эксперимента определено влияние иммобилизации первых переопод у австралийского красноклешневого рака на показатели темпа линейного роста длины, массы тела, продолжительности межлиночных интервалов, количества совершенных линек, потребляемого комбикорма, уровня каннибализма и выживаемости особей, находящихся в искусственных условиях. При иммобилизации двух клешней у раков снижались показатели приростов длины, массы тела, частоты линек и количество съеденного корма, но повышалась их выживаемость даже при сохранении повышенной плотности в емкостях (32,5±6,5 экз./м² ). Фиксация одной клешни не отразилась на потреблении корма, но снизились агрессия, уровень каннибализма и увеличился межлиночный период. Раки со свободными клешнями росли неравномерно, снизились выживаемость и плотность до 20±5 экз./м² . Выявлено, что иммобилизация клешней способствовала увеличению выживаемости линяющих особей в сравнении с раками со свободными клешнями. Даны рекомендации применения иммобилизации клешней у австралийского красноклешневого рака для снижения агрессии и каннибализма при содержании раков в установках замкнутого водоснабжения.

Литература:

1. Борисов, Р.Р. Морфология и поведение десятиногих ракообразных (Crustacea: Decapoda) в постэмбриональном онтогенезе. 03.02.10 Гидробиология: дис. ... д-ра биол. наук / Р.Р. Борисов; ГНЦ РФ ФГБНУ. — М., 2020. — 395 с.

2. Борисов, Р.Р. Аквакультура австралийского красноклешневого рака Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1868) / Р.Р. Борисов, Н.П. Ковачева, А.В. Жигин, И.Н. Никонова, Н.В. Кряхова. — М.: ВНИРО, 2024. — 200 с.

3. Борисов, Р.Р. Управление пространственным распределением десятиногих ракообразных (отр. Decapoda) при культивировании в искусственных условиях / Р.Р. Борисов, Н.П. Ковачева, А.В. Паршин-Чудин // Рыбное хозяйство. — 2014. — № 3. — С. 84–89.

4. Борисов, Р.Р. Особенности роста десятиногих ракообразных в рециркуляционных установках на примере австралийского рака Cherax quadricarinatus (Decapoda: Parastacidae) / Р.Р. Борисов, И.Н. Никонова // Морской биологический журнал. — 2018. — Т. 3, № 3. — С. 3–12.

5. Борисов, Р.Р. Каннибализм у камчатского краба при выращивании в искусственных условиях / Р.Р. Борисов, А.Б. Эпельбаум, Н.В. Кряхова // Биология моря. — 2007. — Т. 33, № 4. — С. 267–271.

6. Брайнбалле, Я. Руководство по аквакультуре в установках замкнутого водоснабжения / Я. Брайнбалле // Введение в новые экологические и высокопродуктивные замкнутые рыбоводные системы. — Копенгаген: ФАО, 2010. — 70 с.

7. Жигин, А.В. Замкнутые системы в аквакультуры: монография / А.В. Жигин. — М.: РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева, 2011. — 664 с.

8. Мировое производство аквакультуры в 2016–2020 гг. — М.: ВНИРО, 2022. — 252 c.

9. Тертицкая, А.Г. Изучение роли перейоподов второй пары при агрессивных контактах у гигантской пресноводной креветки Macrobrachium rosenbergii (de Man) / А.Г. Тертицкая, Р.Р. Борисов // Беспозвоночные животные в коллекциях зоопарков. Материалы Второго международного семинара, г. Москва, 15–20 ноября 2004 г.: Межвед. сб. науч. и науч.-метод. тр. — Московский зоопарк, 2005. — С. 177–179.

10. Тертицкая, А.Г. Роль клешней, полового и размерного состава при агрессивных контактах у красного болотного рака Procambarus clarkii / А.Г. Тертицкая, Р.Р. Борисов // IV Всероссийская конференция по поведению животных. Сборник тезисов. — М.: Товарищество научных изданий КМК, 2007. — С. 217–218.

11. Федотов, В.П. О раках: От промысла к отраслевому направлению — раководству / В.П. Федотов. — СПб.: ПОЛИТЕХ-ПРЕСС, 2020. — 256 с.

12. Хорошко, А.И. Новые направления прудовой аквакультуры в южных регионах России / А.И. Хорошко, В.Н. Крючков // Теоретические и прикладные проблемы агропромышленного комплекса. — 2010. — № 2. — С. 51–55.

13. Цукерзис, Я.М. Каннибализм у широкопалого рака / Я.М. Цукерзис, И.А. Шаштоякс, Е.А. Тамкявичене // Труды АН ЛитССР. Серия В. — 1977. — Т. 3, № 79. — С. 97–103.

14. Barki, A. Ration and spation distribution of feed affect survival, growth, and competition in juvenile red-claw crayfish Cherax quadricarinatus, reared in the laboratory / A. Barki, T. Levi, A. Shrem, I. Karplus // Aquaculture. — 1997. — № 148. — P. 169–177. — DOI: 10.1016/S0044-8486(96)01418-4.

15. Diez, G. Effect of propodus excision on growth and survival in giant freshwater prawn Macrobrachuim rosenbergii / G. Diez, H. Nakagawa, S. Kasahara // J. Fac. Appl. Biol. Sci. Hiroshima Univ. — 1990. — № 29 (1). — P. 19–24.

16. Garm, А. Role of maxilla 2 and its setae during feeding in the shrimp Palaemon adspersus (Crustacea: Decapoda) / А. Garm, E. Hallberg, J.T. Hoeg // Biological Bulletin. — 2003. — № 204. — P. 126–137. — DOI: 10.2307/1543548.

17. Karplus, I. Social control of growth in Macrobrachium rosenbergii I. The effect of claw ablation on survival and growth of communally raised prawns / I. Karplus, E. Samsonov, G. Hulata, A. Milstein // Aquaculture. — 1989. — № 80. — P. 325–335. — DOI: 10.1016/00448486(89)90179-8.

18. Kendall, R.A. Effects of chelae immobilization on growth and survivorship for individually and communally raised lobsters, Homarus americanus / R.A. Kendall, J.C. Van Olst, J.M. Carlberg // Aquaculture. — 1982. — № 29. — P. 359–372. — DOI: 10.1016/00448486(82)90148-X.

19. Ling, S.W. Notes on the life and habits of the adults and larval stages of Macrobrachium rosenbergii (De Man) / S.W. Ling, A.B.O. Merican // Proceedings of the Indo-Pacific Fisheries Council, FAO, Bangkok. — 1961. — № 9 (2). — P. 55–60.

20. Mariappan, P. Decapod crustacean chelipeds: an overview / P. Mariappan, C. Balasundaram, B. Schmitz // Journal of Biophysical Chemistry. — 2009. — № 1. — P. 1–13. — DOI: 10.1007/BF02703939.

21. Ramalho, R.O. Effects of density on growth and survival of juvenile red swamp crayfish, Procambarus clarkii (Girard), reared under laboratory conditions / R.O. Ramalho, A.M. Correia, P.M. Anastacio // Aquaculture Research. — 2008. — № 39. — P. 577–586. — DOI: 10.1111/j.1365-2109.2008.01907.x.

22. Savolainen, R. Effect of stocking density on growth, survival and cheliped injuries of stage 2 juvenile signal crayfish Pasifastacus leniusculus Dana / R. Savolainen, K. Ruohonen, E. Railo // Aquaculture. — 2004. — № 231. — P. 237–248. — DOI: 10.1016/j.aquacultural.2003.09.045.

1. Borisov, R.R. Morphology and behavior of decapod crustaceans (Crustacea: Decapoda) in postembryonic ontogenesis. Dokt. Boilogi. Sci. diss. Moscow, 2020. 395 p. (in Russian).

2. Borisov, R.R., Kovacheva, N.P., Zhigin, A.V., Nikonova, I.N., Kryakhova, N.V. Aquaculture of the Australian red-clawed crayfish Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1868). VNIRO, Moscow, 2024. 200 p. (in Russian).

3. Borisov, R.R., Kovacheva, N.P., Parshin-Chudin, A.V. Management of spatial distribution of decapod crustaceans (order Decapoda) during cultivation in artificial conditions. Fisheries, 2014, no. 3, pp. 84–89 (in Russian).

4. Borisov, R.R., Nikonova, I.N. Features of growth of decapod crustaceans in recirculation systems using the Australian crayfish Cherax quadricarinatus (Decapoda: Parastacidae) as an example. Marine Biological Journal, 2018, vol. 3, no. 3, pp. 3–12 (in Russian).

5. Borisov, R.R., Epelbaum, A.B., Kryakhova, N.V. Cannibalism in Kamchatka crabs grown in artificial conditions. Biology of the sea, 2007, vol. 33, no. 4, pp. 267–271 (in Russian).

6. Brainballe, J. Guide to aquaculture in closed water supply systems. Introduction to new ecological and highly productive closed fish farming systems. Copenhagen (Denmark), Eurofish/FAO Subregional Office for Central and Eastern Europe. 2010. 70 p. (in Russian).

7. Zhigin, A.V. Closed systems in aquaculture. RGAU-MSHA named after. K.A. Timiryazev, Moscow, 2011. 664 p. (in Russian).

8. World aquaculture production 2016–2020. VNIRO, Moscow, 2022. 252 p. (in Russian).

9. Tertitskaya, A.G., Borisov, R.R. Study of the role of the second pair of pereopods during aggressive contacts in the giant freshwater shrimp Macrobrachium rosenbergii (de Man). Invertebrate animals in zoo collections. In: Materials of the Second International Seminar, Moscow, November 15–20, 2004: Interdisciplinary. Sat. scientific and scientific method. tr. Moscow Zoo, 2005, pp. 177–179 (in Russian).

10. Tertitskaya, A.G., Borisov, R.R. The role of claws, sex and size composition during aggressive contacts in the red swamp crayfish Procambarus clarkii. IV All-Russian Conference on Animal Behavior. Collection of abstracts. Partnership of scientific publications KMK, Moscow, 2007, рр. 217–218 (in Russian).

11. Fedotov, V.P. About crayfish: From fishing to an industry direction — crayfish farming. POLYTECH-PRESS, Saint Petersburg, 2020. 256 p. (in Russian).

12. Khoroshko, A.I., Kryuchkov, V.N. New directions of pond aquaculture in the southern regions of Russia. Theoretical and applied problems of the agro-industrial complex, 2010, no. 2, pp. 51–55 (in Russian).

13. Tsukerzis, Ya.M., Shashtoyaks, I.A., Tamkyavichene, E.A. Cannibalism in broad-clawed crayfish. Proceedings of the Academy of Sciences of the Lithuanian SSR, Series V, 1977, vol. 3, no. 79, pp. 97–103 (in Russian).

14. Barki, A., Levi, T., Shrem, A., Karplus, I. Ration and spation distribution of feed affect survival, growth, and competition in juvenile red-claw crayfish Cherax quadricarinatus, reared in the laboratory. Aquaculture, 1997, no. 148, pp. 169–177. DOI: 10.1016/S00448486(96)01418-4.

15. Diez, G., Nakagawa, H., Kasahara, S. Effect of propodus excision on growth and survival in giant freshwater prawn Macrobrachuim rosenbergii. J. Fac. Appl. Biol. Sci. Hiroshima Univ., 1990, no. 29 (1), pp. 19–24.

16. Garm, А., Hallberg, E., Hoeg, J.T. Role of maxilla 2 and its setae during feeding in the shrimp Palaemon adspersus (Crustacea: Decapoda). Biological Bulletin, 2003, no. 204, pp. 126–137. DOI: 10.2307/1543548.

17. Karplus, I., Samsonov, E., Hulata, G., Milstein, A. Social control of growth in Macrobrachium rosenbergii I. The effect of claw ablation on survival and growth of communally raised prawns. Aquaculture, 1989, no. 80, pp. 325–335. DOI: 10.1016/0044-8486(89)90179-8.

18. Kendall, R.A., Van Olst, J.C., Carlberg, J.M. Effects of chelae immobilization on growth and survivorship for individually and communally raised lobsters, Homarus americanus. Aquaculture, 1982, no. 29, pp. 359–372. DOI: 10.1016/0044-8486(82)90148-X.

19. Lawrence, C., Jones, C. Chapter 17. Cherax. In: Biology of Freshwater Crayfish. Great Britain (Oxford), Blackwell Science, 2002, pp. 635–670.

20. Ling, S.W., Merican, A.B.O. Notes on the life and habits of the adults and larval stages of Macrobrachium rosenbergii (De Man). Proceedings of the Indo-Pacific Fisheries Council, FAO, Bangkok, 1961, no. 9 (2), pp. 55–60.

21. Ramalho, R.O., Correia, A.M., Anastacio, P.M. Effects of density on growth and survival of juvenile red swamp crayfish, Procambarus clarkii (Girard), reared under laboratory conditions. Aquaculture Research, 2008, no. 39, pp. 577–586. DOI: 10.1111/j.13652109.2008.01907.x.

22. Savolainen, R., Ruohonen, K., Railo, E. Effect of stocking density on growth, survival and cheliped injuries of stage 2 juvenile signal crayfish Pasifastacus leniusculus Dana. Aquaculture, 2004, no. 231, pp. 237–248. DOI: 10.1016/j.aquacultural.2003.09.045.

Производство объектов аквакультуры 15 ведущими странами с 2016-го по 2020 год увеличилось со 108 до 122 млн т. Наиболее заметное развитие наблюдалось в производстве ракообразных, которое возросло за этот период с 7,6 млн до 11,1 млн т. В настоящее время ракообразные составляют около 12% выращиваемых в аквакультуре животных [8].

Начиная с 2000 года в аквакультуре расширилась роль установок замкнутого водоснабжения (УЗВ), которые позволяют выращивать десятиногих ракообразных в любой климатической зоне. В России использование УЗВ — единственный возможный способ культивирования тепловодных видов. Однако при многочисленных достоинствах УЗВ имеют ряд ограничений: дефицит площадей, высокие эксплуатационные затраты, небольшой объем используемых емкостей, высокая стоимость строительства. Для повышения рентабельности УЗВ необходимо увеличить плотность посадки гидробионтов. Однако существует одна из главных проблем при культивировании десятиногих ракообразных — высокий уровень агрессии и каннибализма в группах с повышенной плотностью содержания [3]. Агрессия и число случаев каннибализма возрастают при дефиците ресурсов среды (пищи, укрытий) и при повышении плотности содержания [1; 21; 22].

Одним из активно культивируемых в мире речных раков является австралийский красноклешневый рак Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1868). Уровень агрессии красноклешневого рака в группах обычно ниже других видов речных раков, а относительно высокая скорость роста среди ракообразных позволяет рассматривать данный вид в качестве перспективного объекта аквакультуры [4]. При температуре более 23–25 °С австралийский красноклешневый рак растет и размножается круглогодично [11]. В России ведутся работы по адаптации технологии его культивирования [2], но из-за короткого теплого сезона (до четырех месяцев) полный цикл роста красноклешневого рака (шесть месяцев) в прудах юга России невозможен, поэтому для успешного культивирования этого вида необходимо совместить технологии УЗВ и прудового выращивания [12].

Для Цитирования:
В.С. Жарников, И.Н. Никонова, А.А. Глазунов, Особенности роста и выживаемости австралийского красноклешневого рака при иммобилизации клешней в искусственных условиях. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2025;2.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: