По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.3.09 DOI:10.33920/sel-09-2112-06

Особенности паразитарных болезней в форелевых хозяйствах Северо-Запада России

Тамара Алексеевна Нечаева канд. биол. наук; доцент кафедры водных биоресурсов; ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный аграрный университет», Россия, 196601, г. Санкт-Петербург, г. Пушкин, Петербургское шоссе, д. 2, e-mail: tamara.73@list.ru, ORCID 0000-0003-4858-567X
Владимир Сергеевич Турицин канд. биол. наук, доцент кафедры водных биоресурсов и аквакультуры, ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный аграрный университет», e-mail: wba2009@mail.ru, ORCID 0000-0001-9066-0026

Исследования паразитофауны радужной форели позволили выявить ряд возбудителей паразитарных болезней на предприятиях, использующих открытые водоемы в качестве источников водоснабжения. Из паразитических простейших наиболее опасен ихтиофтириус (Ichthyophthirius multifiliis). Это связано с наличием у этой инфузории свободно живущей стадии, а также с возможностью локализации под чешуей рыбы. Из гельминтозов, встречающихся у радужной форели при искусственном выращивании в хозяйствах Северо-Западного региона России, наибольшую проблему представляют моногенеи и цестоды, вызывающие гиродактилез и триенофороз. Плероцеркоиды цестодыTriaenophorus сrassus, в частности, локализируются в мускулатуре рыб и при высокой степени инвазии форель утрачивает товарную ценность. При наличии очага паразитарных болезней в естественных водоемах дикие рыбы являются резервуаром инвазии, водные беспозвоночные (планктонные ракообразные, моллюски) представляют собой важнейший элемент системы паразит-хозяин, а рыбоядные птицы, являясь окончательным хозяином, способствуют распространению инвазий. В садковых хозяйствах вследствие особенностей технологии выращивания борьба с паразитическими простейшими чрезвычайно затруднена и требует значительных трудовых затрат. В бассейновых хозяйствах, напротив, конструкция рыбоводных емкостей и система водоподачи позволяет максимально эффективно осуществлять лечебно-профилактические мероприятия. Тем не менее, вспышки паразитарных болезней могут наблюдаться при нарушении технологии выращивания (переуплотнении посадки, нарушение режима кормления и т. д.). Контроль эпизоотического состояния дает возможность выявить заражение и провести комплекс необходимых лечебно-профилактических мероприятий.

Литература:

1. Бауэр, О. Н. Определитель паразитов рыб пресноводных рыб фауны СССР. Паразитические простейшие / О. Н. Бауэр. – Л.,1984. – т.1 – 428 с.

2. Бауэр, О. Н. Определитель паразитов рыб пресноводных рыб фауны СССР. Паразитические многоклеточные. Первая часть /О. Н. Бауэр. – Л.,1985. – т. 2 – 425 с.

3. Бауэр, О. Н. Определитель паразитов рыб пресноводных рыб фауны СССР. Паразитические многоклеточные. Вторая часть / О. Н. Бауэр. – Л.,1987. – т. 2 – 583с.

4. Быховская-Павловская, Е. И. Паразиты рыб: руководство по изучению/ Е. И. Быховская-Павловская. – Л.:Наука. –1985. – 108 с.

5. Воронин, В. Н. Характеристика очага триенофороза форели и меры борьбы с заболеванием в условиях садкового хозяйства / В. Н. Воронин, Н. Б. Чернышева, И. Н.Стрельбицкая // Сборник научных трудов ГосНИОРХ. – СПб., 1992. – вып. 311. – С. 9 – 22.

6. Евсеева, Н. В. Ихтиопатологические исследования в форелевых хозяйствах Карелии / Н. В. Евсеева // Проблемы воспроизводства, кормления и борьбы с болезнями рыб при выращивании в искусственных условиях: материалы научной конференции. – Петрозаводск, 2002. – С. 134 – 138.

7. Иешко, Е. П. Особенности популяционной биологии цестод рода Triaenophorus в естественно и техногенно-трансформированных водоемах / Е. П. Иешко, Л. В Аникеева, Д. И. Лебедева, Н. В. Ильмаст // Паразитология. – 2012. – Т. 46.–вып. 6. – С. 434–443.

8. Минеева, О. Н. Чужеродная цестода Triaenophorus crassus Forel, 1868 (Cestoda, Pseudophyllidea) у рыб Саратовского водохранилища /О.В. Минеева, А.К. Минеев // Ученые записки Казанского Университета. Серия Естественные науки. – Тольятти, 2019. – Т. 16., кн. 2. – С. 325–338. – DOI:10.26907/2542-064X.2019Е. И. .2.325-338

9. Нечаева, Т. А. Эпизоотическая ситуация по паразитарным болезням радужной форели в рыбоводных хозяйствах Карелии / Т. А. Нечаева // Вопросы нормативно-правового урегулирования в ветеринарии. – 2014. – №1. – С. 36 – 39.

10. Нечаева, Т. А. Особенности выращивания радужной форели в садковом хозяйстве на озере Копанское / Т. А. Нечаева, В. С. Турицин, С. У. Темирова, А. Э. Шубелев // Научное обеспечение развития АПК в условиях импортозамещения: материалы междунар. науч.-практ. конф. часть I. – СПб., 2016. – С. 227 – 230.

11. Нечаева, Т.А. Триенфороз и аэромоноз у радужной форели при садковом выращивании /Т. А. Нечаева, В. С. Турицин // Материалы национальной науч. конфер. преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ. –СПб.,2018. –С.75 – 76.

12. Нечаева, Т.А. Паразитарные болезни радужной форели при выращивании в садковых и бассейновых хозяйствах Ленинградской области /Т. А. Нечаева, В. С. Турицин // Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации: материалы V Национальной науч.-практ. конф. – Калининград, 2021. – С. 181 – 184.

13. Нечаева, Т.А. Эпизоотическое состояние ихтиофауны озера Копанское (Кенгисеппский район, Ленинградская область) / Т. А. Нечаева, А. Э. Шубелев // Знания молодых для развития ветеринарной медицины и АПК страны: материалы Международной научной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых. – СПб., 2015. – С. 151 – 152.

14. Рыжков, Л. П. Садковое рыбоводство – проблемы здоровья рыб / Л. П. Рыжков, Т. А. Нечаева, Н. В. Евсеева. – Петрозаводск: Издательство ПетрГУ, 2007. – 120 с.

15. Balta, F. Gryodactylus sp. Infection in cultured rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / F. Balta, Z. D. Balta //Journal of Anatolian Environmental and Animal Sciences. – 2018. – V. 3 (3). – Р. 141-144. – DOI:10.35229/jaes.477438

16. Bruneaux, М. Parasite infection and decreased thermal tolerance: impact of proliferative kidney disease on a wild salmonid fish in the context of climate change / M. Bruneaux, M. Visse, R. Gross, L. Pukk, L. Saks, A. Vasemagi //Functional Ecology. – 2017. – V. 31. – Р. 216–226. – DOI: 10.1111/1365-2435.12701

17. Hansen, H. Infections with Gyrodactylus spp. (Monogenea) in Romanian fish farms: Gyrodactylus salaris Malmberg 1957 extends its range /H. Hansen, C-D. Cojocaru, T. Atle Mo // Parasites & Vectors. – 2016. – V. 9(444). – P. 2 – 10. –DOI 10.1186/s13071-016-1727-7

18. Mizuno, S. The Epidemiology of the Trichodinid Ciliate Trichodina truttae on Hatchery-reared and Wild Salmonid Fish in Hokkaido/ S. Mizuno, S. Urawa, M. Miyamoto, M. Hatakeyama, H. Saneyoshi, Y. Sasaki, N. Koide, H. Ueda//Fish Pathology. – V. 2016. – № 51 (4). – P. 199–209. –DOI:10.3147/jsfp.51.199 19.Ogut, H. Prevalence and Intensity of Ectoparasites in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) from Larvae Stage to Market Size in Turkey/ H. Ogut, A. Akyol //The Israeli journal of aquaculture. – 2007. – V. 59 (1). – Р. 23-31. – DOI:10.46989/001c.20508

20. Ogut, H., Monthly variation in the morphological characteristics of Trichodina sp. (Ciliophora: Peritrichida) found on whiting Merlangius merlanguseuxinus/ H. Ogut, C. Altuntas//Revista de Biología Marina y Oceanografía. – 2016. – Vol. 46. – № 2. – P. 269-274. – DOI:10.4067/S0718-19572011000200017

21. Ozer, A. Trichodinid fauna of freshwater fishes with infestation indices in the Lower Kızılırmak Delta in Turkey and a checklist of trichodinids (Ciliophora: Trichodinidae) in Turkish water/A. Ozer, T.Ozturk //Turkish Journal of Zoology. – 2015. – V. 39. – P. 749-761. – DOI: 10.3906/zoo-1407-13

22. Paladini, G. Geographical distribution of Gyrodactylus salaris Malmberg, 1957 (Monogenea, Gyrodactylidae)/ G. Paladini, P. Andrew, P. Shinn, G.Nicholas, H. Taylor, E. James, E. Bron, H. Hansen//Parasites &Vectors. – 2021. – V.14(1). – P.2 –20. – DOI:10.1186/ s13071-020-04504-5

23. Schahle, Z. Infection levels of plerocercoids of the tapeworm Triaenophorus crassus and feeding strategy in two fish speciens from the ultra-oligotrophic Lace Achensee / Z. Schahle, N. Medgyesy, R. Psenner // Austria Journal of Helminthology. – 2016. – V. 90 (1). – Р. 54 – 61. – DOI: 10.1017/ S0022149X14000777

24. Skov, J. Parasite infections of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) from Danish mariculture /J.Skov, F. Mehrdana, M. H. Marana, Z. M. Qusay, R.Bahlool, M. Jaafar, D. S.Hannah, M. JensenPer, W. Kania, K. Buchmann//Aquaculture. – 2014. – V. 434. – Р. 486-492. –DOI:10.1016/j.aquaculture.2014.08.041

1. Вauer, O. N. Opredelitel’ parazitov ryb presnovodnyh ryb fauny SSSR. Paraziticheskie prostejshie. [Determinant of parasites of freshwater fish of the fauna of the USSR. Parasitic protozoa]. Leningrad, 1984, vol. 1. 428 p. (In Russian).

2. Bauer, O. N. Opredelitel’ parazitov ryb presnovodnyh ryb fauny SSSR. Paraziticheskie mnogokletochnye. Pervaya chast’ [Determinant of parasites of freshwater fish of the fauna of the USSR. Parasitic multicellular. The first part]. Leningrad, 1984, vol. 2. 425 p. (In Russian).

3. Bauer, O. N. Opredelitel’ parazitov ryb presnovodnyh ryb fauny SSSR. Paraziticheskie mnogokletochnye. Vtoraya chast’. [Determinant of parasites of freshwater fish of the fauna of the USSR. Parasitic multicellular. The second part]. Leningrad, 1984, vol. 2. 583 p. (In Russian).

4. Byhovskaya-Pavlovskaya, E. I. Parazity ryb: rukovodstvo po izucheniyu [Fish Parasites: A Guide to Learning]. Leningrad, 1985. 108 p. (In Russian).

5. Voronin, V. N., CHernysheva, N. B., Strel’bickaya, I. N. Harakteristika ochaga trienoforoza foreli i mery bor’by s zabolevaniem v usloviyah sadkovogo hozyajstva [Characteristics of the outbreak of trout trienophorosis and disease control measures in the conditions of the cage farm]. Sbornik nauchnyh trudov GosNIORH. [Collection of scientific papers of the State Research Institute of Lake and River Fisheries]. St. Petersburg, 1992, vol. 311, pp. 9 – 22. (In Russian).

6. Evseeva, N. V. Ihtiopatologicheskie issledovaniya v forelevyh hozyajstvah Karelii [Ichthyopathological studies in trout farms in Karelia]. In: Problemy vosproizvodstva, kormleniya i bor’by s boleznyami ryb pri vyrashchivanii v iskusstvennyh usloviyah: materialy nauchnoj konferencii [Problems of reproduction, feeding and control of fish diseases when reared in artificial conditions: materials of a scientific conference].Petrozavodsk, 2002, pp. 134 – 138. (In Russian).

7. Ieshko, E. P., Anikeeva, L. V, Lebedeva, D. I., Il’mast,N. V.Osobennosti populyacionnoj biologii cestod roda Triaenophorus v estestvenno i tekhnogenno-transformirovannyh vodoemah [Features of the population biology of cestodes of the genus Triaenophorus in naturally and technogenically transformed water bodies]. Parasitology, 2012, vol. 46, no. 6, pp. 434–443. (In Russian).

8. Mineeva, O. V. Mineev A. K. Chuzherodnaya cestoda Triaenophorus crassus Forel, 1868 (Cestoda, Pseudophyllidea) u ryb Saratovskogo vodohranilishcha [Alien cestode Triaenophorus crassus Forel, 1868 (Cestoda, Pseudophyllidea) in fish from the Saratov Reservoir]. Uchenye zapiski Kazanskogo Universiteta. Seriya Estestvennye nauki. [Scientific notes of Kazan University. Series Natural Sciences], Tolyatti, 2019, vol. 16, is.2, 16, pp. 325 – 338. DOI:10.26907/2542-064X.2019.2.325-338 (In Russian).

9. Nechaeva, T. A. Epizooticheskaya situaciya po parazitarnym boleznyam raduzhnoj foreli v rybovodnyh hozyajstvah Karelii [Epizootic situation on parasitic diseases of rainbow trout in fish farms in Karelia]. Issues of regulatory and legal regulation in veterinary medicine, 2014, no. 1, pp. 36-39. (in Russian).

10. Nechaeva, T. A., Turicin, V. S., Temirova, S. U.,SHubelev A. E. Osobennosti vyrashchivaniya raduzhnoj foreli v sadkovom hozyajstve na ozere Kopanskoe [Features of growing rainbow trout in a cage farm on Lake Kopanskoe]. In: Nauchnoe obespechenie razvitiya APK v usloviyah importozameshcheniya: materialy mezhdunar. nauch.-prakt. konf. Chast’ I. [Scientific support for the development of the agro-industrial complex in the context of import substitution: materials of the international. scientific-practical conf. part]. St. Petersburg, 2016, pp. 227 – 230. (in Russian).

11. Nechaeva, T.A.,Turicin, V. S. Trienforoz i aeromonoz u raduzhnoj foreli pri sadkovom vyrashchivanii [Trienforosis and aeromonosis in rainbow trout in cage rearing]. In: Materialy nacional’noj nauch. konfer. prepodavatel’skogo sostava, nauchnyh sotrudnikov i aspirantov SPbGAVM [Materials of the national scientific. confer. teaching staff, researchers and graduate students of St. Petersburg State Academy of Veterinary Medicine]. St. Petersburg, 2018, pp. 75 - 76. (in Russian).

12. Nechaeva, T.A.,Turicin, V. S. Parazitarnye bolezni raduzhnoj foreli pri vyrashchivanii v sadkovyh i bassejnovyh hozyajstvah Leningradskoj oblasti [Parasitic diseases of rainbow trout when reared in cage and basin farms of the Leningrad region]. In: Sostoyanie i puti razvitiya akvakul’tury v Rossijskoj Federacii: materialy V Nacional’noj nauch.-prakt. konf [Status and development of aquaculture in the Russian Federation: materials of the V National scientific-practical. conf.]. Kaliningrad, 2021, pp. 181 - 184. (in Russian).

13. Nechaeva, T. A., SHubelev, A. E. Epizooticheskoe sostoyanie ihtiofauny ozera Kopanskoe (Kengiseppskij rajon, Leningradskaya oblast’) [Epizootic state of the ichthyofauna of Lake Kopanskoye (Kengiseppsky district, Leningrad region)]. In:Znaniya molodyh dlya razvitiya veterinarnoj mediciny i APK strany: materialy Mezhdunarodnoj nauchnoj konferencii studentov, aspirantov i molodyh uchenyh [Knowledge of young people for the development of veterinary medicine and agro-industrial complex of the country: materials of the International scientific conference of students, graduate students and young scientists]. St. Petersburg, 2015, pp. 151 – 152. (in Russian).

14. Ryzhkov, L. P., Nechaeva, T. A., Evseeva, N. V. Sadkovoe rybovodstvo – problemy zdorov’ya ryb [Cage fish farming - problems of fish health]. Publisher Petrozavodsk State University, Petrozavodsk, 2002. 120 p. (in Russian).

15. Balta, F., Balta, Z. D. Infection in Cultured Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Anatolian Environmental and Animal Sciences, 2018, vol.3, no.3, pp. 141-144. DOI:10.35229/jaes.477438

16. Bruneaux, M., Visse, M., Gross, R., Pukk, L., Saks, L. Vasemagi, A. Parasite infection and decreased thermal tolerance: impact of proliferative kidney disease on a wild salmonid fish in the context of climate change. Functional Ecology, 2017, vol. 31, pp. 216–226. DOI: 10.1111/1365-2435.12701

17. Hansen, H., Cojocaru, C-D., Atle, M. T. Infections with Gyrodactylus spp. (Monogenea) in Romanian fish farms: Gyrodactylus salaris Malmberg, 1957 extends its range. Parasites & Vectors, 2016, vol. 9(444), pp. 2 – 10. DOI 10.1186/s13071-016-1727-7

18. Mizuno, S., Urawa, S., Miyamoto, M., Hatakeyama, M., Saneyoshi, H., Sasaki, Y., Koide, N., Ueda, H. The Epidemiology of the Trichodinid Ciliate Trichodina truttae on Hatcheryreared and Wild Salmonid Fish in Hokkaido. Fish Pathology, 2016, vol. 51 (4), pp. 99–209. DOI:10.3147/jsfp.51.199

19. Ogut, H., Akyol, A. Prevalence and Intensity of Ectoparasites in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) from Larvae Stage to Market Size in Turkey. The Israeli journal of aquaculture, 2007, vol.59, no. 1, pp. 23-31. DOI:10.46989/001c.20508

20. Ogut, H., Altuntas, С. Monthly variation in the morphological characteristics of Trichodina sp. (Ciliophora: Peritrichida) found on whiting Merlangius merlanguseuxinus. Revista de Biología Marina y Oceanografía, 2016, vol. 46, no. 2, pp. 269 – 274. DOI:10.4067/S071819572011000200017

21. Ozer, A, Ozturk, T. Trichodinid fauna of freshwater fishes with infestation indices in the Lower Kızılırmak Delta in Turkey and a checklist of trichodinids (Ciliophora: Trichodinidae) in Turkish water. Turkish Journal of Zoology, 2015, vol. 39, pp. 749-761. DOI: 10.3906/zoo-1407-13

22. Paladini, G., Andrew, P., Shinn, P., Nicholas G., Taylor, H., James, E., Bron, E., Hansen, H. Geographical distribution of Gyrodactylus salaris Malmberg, 1957 (Monogenea, Gyrodactylidae). Parasites & Vectors, 2021, vol.14(1), pp. 2–20. DOI:10.1186/s13071-020-04504-5

23. Schahle, Z., Medgyesy, N., Psenner, R. Infection levels of plerocercoids of the tapeworm Triaenophorus crassusand feeding strategy in two fish speciens from the ultra-oligotrophic Lace Achensee. Austria Journal of Helminthology, 2016, vol. 90, no. 1, pp. 54 – 61. DOI: 10.1017/ S0022149X14000777

24. Skov, J., Mehrdana, F., Marana, M. H., Qusay Z. M., Bahlool, R. M. Jaafar, D. S.Hannah, M., JensenPer, Kania, W., Buchmann K. Parasite infections of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) from Danish mariculture. Aquaculture, 2014, vol. 434, pp. 486-492. DOI:10.1016/j. aquaculture.2014.08.041

Для современных рыбоводных предприятий Северо-Западного региона России в последние годы главную проблему представляют бактериальные болезни. Водоисточниками подавляющего числа форелевых хозяйств (бассейновых) являются открытые водоемы – озера, реки, водохранилища. Садки же устанавливают непосредственно в водоеме. Поэтому вероятность возникновения паразитарных болезней весьма велика. Дикие рыбы являются резервуаром инвазии, промежуточными и окончательными хозяевами целого ряда паразитов, опасных для радужной форели. Водные беспозвоночные (планктонные ракообразные, моллюски) представляют собой важнейший элемент (промежуточные хозяева) системы паразит-хозяин для такого широко распространенного заболевания, как триенофороз. Рыбоядные птицы, в первую очередь чайки, являясь окончательным хозяином, способствуют распространению инвазий. В садковых хозяйствах вследствие особенностей технологии выращивания борьба с паразитическими простейшими чрезвычайно затруднена и требует значительных трудовых затрат. В бассейновых хозяйствах, использующих открытые источники водоснабжения, возможен занос возбудителей с током воды, а также попадание зараженной сорной рыбы. В связи с этим, как в садковых, так и бассейновых хозяйствах необходим регулярный паразитологический мониторинг.

Цель работы: изучение особенностей паразитарных болезней в форелевых хозяйствах Северо-Запада России. Для выполнения данной цели поставлены следующие задачи:

— выявить возбудителей наиболее опасных паразитарных болезней;

— изучить особенности течения паразитарных болезней в форелевых хозяйствах разного типа;

— дать рекомендации по оздоровлению рыбоводных предприятий.

Материал и методика

В течение ряда лет нами проведены исследования паразитофауны радужной форели. В период с 2014 по 2021 гг. было обследовано 24 садковых и 3 бассейновых хозяйства в Ленинградской области и Республике Карелия. Контроль за гидрохимическим состоянием воды осуществляли с помощью тестов специалистами хозяйств и в сертифицированных лабораториях. Температуру воды и содержание кислорода определяли с помощью термооксиметров. Обследование рыб на наличие паразитов проводили по методике полного паразитологического вскрытия [4] с использованием микроскопа МБР-1. Для видового и родового определения паразитов использовали «Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР» под редакцией О.Н. Бауэра [1; 2; 3].

Форель кормили специализированными кормами фирм БиоМар (Дания), РехуРайсио (Финляндия), Ле Груассан (Франция). Нормы кормления соответствовали рекомендациям производителей данных кормов.

Результаты исследования

Из гельминтозов, встречающихся у радужной форели при искусственном выращивании в хозяйствах Северо-Западного региона России, наибольшую проблему представляют моногенеи и цестоды, и в меньшей мере – трематоды.

В Ленинградской области и Карелии проявление триенофороза возможно в целом ряде водоемов, где осуществляется выращивание форели, например, на озере Копанском. (Ленинградская область), Ладожском озере (Ленинградская область и Республика Карелия), Онежском озере (Республика Карелия). Возбудители болезни – плероцеркоиды цестод Triaenophorus crassus, поражающие мускулатуру и Triaenophorus nodulosus, локализирующиеся в печени и в полости тела. Окончательным хозяином паразитов является щука, у которой взрослые особи паразитируют в кишечнике. Заражение происходит при переходе молоди форели на питание планктоном, а именно циклопами – первыми промежуточными хозяевами цестод рода Triaenophorus. Плероцеркоиды T. сrassusпредставляют большую опасность, так портят мясо рыбы. При поражении триенофорозом потери товарной продукции достигают 10,0 – 25,0%, гибель посадочного материала – до 25,0%.

В садковых хозяйствах Карелии T. crassus pl. встречается редко. Гораздо чаще на печени и в полости тела выращиваемой радужной форели выявляется цистыс плероцеркоидами T. nodulosus. Это подтверждают исследования зараженности окончательного хозяина этих паразитов - щуки. В 2019 году было проведено обследование 45 щук из Ладожского озера. Подавляющее большинство особей (46,6%) было заражено T. nodulosus при интенсивности инвазии1-5 экз., 13,3% щук было заражено T. crassus при интенсивности инвазии 1 –3 экз.

Триенофороз, вызываемый T. nodulosus pl., отмечен в озерных садковых хозяйствах Карелии на Онежском и Ладожском озерах, оз. Водлозеро, оз. Юпинга и оз. Сундозеро при экстенсивности заражения 10,0% и интенсивности 1 – 2 экз. В редких случаях интенсивность заражения достигала10 экз. При высокой интенсивности заражения было выявлено негативное влияние плероцеркоидов T. nodulosus на рыб. Это выражается в разрастании соединительной ткани, которая вытесняет большое количество паренхиматозных клеток печени. В результате нарушается функция печени, снижается упитанность, такие рыбы существенно отстают в росте.

В садковых хозяйствах на Ладожском озере в весенне-летний период 2011 – 2014 гг. было зафиксировано заражение плероцекроидами T. nodulosus годовиков форели средней массой тела 300 – 400 г при экстенсивности 20,0– 26,7 % и интенсивности 2 – 4 экз. на рыбу. При этом у рыб с массой не более 100 г экстенсивность составляла 5 – 10 экз.; печень имела желтый цвет либо была мраморной, в области локализации плероцеркоидов зафиксировано характерное разрастание соединительной ткани; выявлено некротическое поражение плавников. После зимовки наблюдали гибель таких рыб.

Заражение форели T. crassus pl. было отмечено в июне – июле 2018 году в садковом хозяйстве на Онежском озере. Экстенсивность заражения T. сrassus pl. составляла 10 – 15 % при интенсивности 1 – 3 экз. Температура воды превышала 20°С, в связи с чем молодь не кормили.

Значительный очаг триенофороза существовал на озере Копанское, где в 1998 году наблюдали сильное заражение сеголеток форели T.crassus pl., сопровождавшееся высокой смертностью рыбы (до 25%). Как выяснилось, T. crassus pl. представлял опасность не только для мальков форели, но и для более крупной рыбы. В июле 1999 года на Копанском озере было зафиксировано заражение форели массой 100 – 200 г. Паразиты были обнаружены у 10 – 15 % рыб при интенсивности заражения 1 – 5 экз. Локализация гельминтов в мускулатуре форели сопровождалась развитием вторичных инфекций (аэромоноз, сапролегниоз) и повышением гибели форели. Экстенсивность заражения сеголеток составляла 44,6 %, по достижении рыбами возраста четырех лет она составила 25 %.

Для садковых хозяйств опасность представляют также гиродактилусы (возбудители - моногенеи из рода Gyrodactylus. В период с 2011 по 2014 гг. гиродактилусы были обнаружены в ряде карельских форелевых хозяйствах (Онежское озеро, Ладожское озеро, озера Тарасмозеро, Святозеро, Вендюрское, Янисъярви, Семчезеро, Вохтозеро). Чаще всего регистрировали носительство, реже – вспышки болезни. При сильном поражении у рыб проявляется характерный некроз плавников, в некоторых случаях возможно поражение жабр и покровов тела. К сожалению, не было возможности установить видовую принадлежность паразитов с использованием метода ПЦР. Экстенсивность поражения была незначительна – 10 % при интенсивности от 1 до 3 экз. в поле зрения микроскопа (7х8). При проведении рекомендованных лечебно-профилактических мероприятий (обработки с формалином при концентрации 1:5000, однократно, при необходимости - двукратно) форель освобождалась от паразитов.

Весной (март – апрель) 2020 года в некоторых садковых хозяйствах Ленинградской области были обнаружены представители рода Gyrodactylus при экстенсивности заражения 10 - 15 % и интенсивности от 1 до 3 экз. в поле зрения микроскопа (7х8). Гиродактилез был выявлен в садках у двухлетков радужной форели с массой тела 400 – 500 г.

В бассейновом хозяйстве (Ленинградская область) гиродактилусы были зафиксированы у сеголеток с массой тела 50 г. Вода в хозяйство поступает по системе труб из озера, которое пополняется грунтовыми водами и родниками. В водоисточнике присутствует ручьевая форель, которая и может быть носителем эктопаразитов.

Во всех случаях были проведены лечебно-профилактические обработки с формалином (1:5000, однократно) и поваренной солью. При повторном осмотре гиродактилусы не были обнаружены, что позволяет говорить об успешном оздоровлении данных хозяйств. Однако в сентябре 2020 г. в хозяйстве с ключевым водоснабжением вновь был выявлен Gyrodactylus sp. У сеголеток форели с массой тела 7 – 10 г, содержащихся в выростном цехе, экстенсивность заражения составляет 12 % и интенсивности 1 экз. в поле зрения микроскопа (7х8). Рекомендована лечебно-профилактическая обработка с формалином (1:4000, однократно). Точную видовую принадлежность паразитов, обнаруженных в хозяйствах Ленинградской области, также не представлялось возможным определить при отсутствии ПЦР-диагностики.

У форели с массой 100 – 200 г, содержащейся в бетонных бассейнах с взаимозависимым водоснабжением экстенсивность заражения была очень высокой – 75 % при интенсивности 1 – 4 экз. в поле зрения микроскопа (7х8). Этому способствовала высокая плотность посадки, что вместе с органическим загрязнением ухудшало физиологическое состояние рыб и способствовало увеличению численности гиродактилусов. Кроме того, в соскобах с поверхности тела у форели данной группы единично обнаружены паразитические инфузории Trichodina sp. С учетом неблагополучного на данный момент санитарного состояния хозяйства, было рекомендовано снижение плотности посадки с последующими лечебно-профилактическими обработками с формалином (1:5000, одно- и двукратно) и поваренной солью.

В садковых хозяйствах Карелии встречается моногенея Discocotyle sagittata - возбудитель дискокотилеза. D. sagittata была обнаружена в форелевых хозяйствах на озерах Вендюрское, Пальоезеро, Сегозеро, Момсоярви, Вохтозеро, Топозеро, Сяргозеро и Маслозеро. D.sagittata на рыбоводных предприятиях встречается гораздо реже чем гиродактилез, вспышек заболеваний выявлено не было. Тем не менее, такие случаи нельзя оставлять без внимания, D. sagittata - крупный паразит (6 – 9 мм в длину), и способен вызвать сильное поражение жаберного аппарата [12].

Диплостомоз широко распространен в Карелии, обнаруживаясь практически на каждом озерном садковом хозяйстве. В острой (церкариозный диплостомоз) форме заболевание не проявлялось. В некоторых случаях можно было обнаружить разрушение хрусталика и паразитарную катаракту в результате поражения метацеркариями трематод рода Diplostomum. При этом характерного истощения рыбы со значительным ущербом от недополучения товарной продукции не наблюдалось. Обычно интенсивность заражения достигает 1 – 35 экз. в хрусталике глаза при экстенсивности 10 - 100 %. Реже можно наблюдать интенсивность заражения, составляющую 50 – 70 экз. в хрусталике глаза. При этом отмечено помутнение хрусталика и его разрушение. В настоящее время диплостомоз отмечен в 80 – 85 % хозяйств Карелии.

Высокие температуры воды в летний период приводят к снижению физиологического статуса форели и способствуют развитию вспышек ихтиофтириоза. Заражение радужной форели Ichthyophthirius multifiliis в садках на Копанском озере в 90-е гг. достигало 80 % при интенсивности 5 – 10 экз. в поле зрения микроскопа (7х8). Обследование дикой рыбы позволило установить носительство этого паразита у плотвы (25 %) и окуня (6,6 %). Заражение щуки составляло 100% при интенсивности 2 - 5 экз. на рыбу. В настоящее время удается за счет контроля за состоянием рыбы и соблюдения биотехнических нормативов удается избегать заражения I. multifiliis, несмотря на достаточно высокие температуры воды в летний период (20 – 23°С).

В последние годы ихтиофтириоз был зарегистрирован в садковых хозяйствах Карелии у мальков с низкой массой тела (3,0 – 3,5 г) и слабым иммунитетом. Усугубляет ситуацию стресс вследствие транспортировки. Возбудитель болезни был обнаружен на Онежском и Ладожском озерах, на озерах Суоярви, Муй, Сегозеро, Топозеро, Шуезеро и Шагозеро. В большинстве случаев повышенного отхода рыб не наблюдалось. Однако некоторые случаи заслуживали особого внимания. Так, ихтиофтириоз был обнаружен осенью у крупного сеголетка (массой 100 г) при сравнительно низких температурах воды 8 – 10°С (Онежское озеро). Экстенсивность заражения составила 40 – 50 %, интенсивность 5 – 7 экз. в поле зрения микроскопа (7х8). При этом на поверхности тела были заметны белые бугорки (так называемая «манка»), что характерно для сильного поражения. В хозяйстве использовались корма с истекшим сроком годности, что привело к снижению физиологического статуса рыб и сделало их более чувствительными к возбудителям протозойных болезней. Самые ослабленные рыбы были истощены, полостной жир отсутствовал.

При вскрытии была выявлена печень желтого или глинистого цвета. Ткань почек была разрыхлена, сами почки увеличены в объеме, имели зеленоватый оттенок, что характерно при токсикозе. Гибель рыб была незначительной, благодаря невысоким температурам воды. Проведение лечебно-профилактических обработок, использование качественных кормов с добавлением витамина С позволили в течение короткого времени нормализовать эпизоотическую ситуацию в хозяйстве.

Отмечены отдельные случаи обнаружения ихтиофтириуса у сеголеток форели (массой 50 - 70 г) в водоемах Карелии при температуре воды 5 – 6 °С. Экстенсивность заражения составила 10 %, интенсивность 1 - 2 экз. в поле зрения микроскопа(7х8). Таких клинических признаков как характерная при вспышке ихтиофтириоза «манка» не наблюдались. Однако при повышении температуры воды возможно активное развитие возбудителя с последующей вспышкой заболевания. Поэтому даже при столь незначительном заражении необходимо принимать меры по освобождению рыб от паразитов [12].

В одном из садковых хозяйств (Ленинградская область) у сеголеток форели было выявлено наличие сидячих паразитических инфузории рода Apiosoma при экстенсивности заражения 100% и интенсивности 1 – 7 экз. в поле зрения микроскопа (7х8). Эти инфузории используют рыбу как субстрат и их появление связано с высоким уровнем органического загрязнения [8]. Были предприняты меры по оздоровлению рыбы перед ее перевозкой. Повторный осмотр позволил констатировать полное освобождение форели от паразитических инфузорий.

В некоторых случаях возможно появление инвазионных заболеваний не только у сеголеток, но и у производителей форели. В бассейновом хозяйстве (Ленинградская область) у производителей радужной форели, находившихся в пятой стадии зрелости, было выявлено заражение триходинами при экстенсивности заражения 100% и интенсивности 12 – 30 экз.в поле зрения микроскопа (7х8). Это связано с органическим загрязнением бассейнов и физиологическим состоянием рыбы.

Высокие температуры воды в летний период (20°С и выше) могут привести к появлению аргулеза (возбудитель - паразитические рачки из отряда жаброхвостых Argulus foliaceus). Летом 2020 г. аргулюс в незначительном количестве наблюдался в садках у крупной форели с навеской около 1 кг и выше. Экстенсивность заражения 10 %, интенсивность 1 – 2 экз. на рыбу. Для такой рыбы аргулюс не представляет непосредственной опасности, однако повреждая поверхность тела, паразит создает ворота для проникновения бактериальных и грибковых инфекций, что в летний период особенно опасно.

Обсуждение

Садковая аквакультура – наиболее перспективное и массовое направление в рыбоводстве Северо-Западного региона. В то же время рыбы при содержании в садках подвержены воздействию различных внешних факторов среды, что может значительно усложнить эпизоотическую ситуацию в хозяйстве, способствуя возникновению инвазионных болезней [16; 19; 24].

Большую роль играет выбор места для размещения садкового хозяйства. Садковые хозяйства не следует размещать вблизи любых зарослей водной растительности. Минимальное расстояние садков от зарослей растительности должно быть не менее 100 м. В противном случае возрастает возможность заболевания рыб, так как в зарослях скапливается зоопланктон, который является промежуточным хозяином для многих видов паразитов [11; 12; 18; 23]. Дель садков в летний период интенсивно зарастает водорослями и заселяется водными организмами. В районе садков скапливаются зоопланктон, а также сорные рыб, которые могут быть источниками инвазии для форели. Важное значение в рыбоводстве имеет температура воды, поскольку от нее зависят количество потребляемого корма, обмен веществ и скорость роста рыб. Для радужной форели оптимальной температурой является 13 – 18°С. При высоких температурах воды эффективность кормления рыб снижается, вероятность паразитарной инвазии увеличивается.

Рыбы растут неравномерно. К паразитарным болезням наиболее чувствительна мелкая, отстающая в росте форель. Поэтому в течение вегетационного сезона рекомендуется проводить сортировку выращиваемой рыбы в течение 2 – 3 раз [14].

Первые случаи массового поражения радужной форели триенофорозом (возбудитель мышечной формы данного заболевания – T.crassus pl.), при садковом выращивании в водоемах Северо-Запада России впервые были выявлены в 70 – 80 гг. прошлого века, когда стали практиковать выращивание при высоких плотностях посадки [5; 6].

Заражение молоди форели триенофорусом связано с высокими температурами воды в летний период, когда вода естественных водоемах прогревается до температуры 20 – 23°С [7; 8; 23]. Это отражается на режиме кормления рыбы, и в итоге приводит к росту зараженности плероцеркоидами цестод рода Triaenophorus. Нормы кормления из-за высоких температур воды резко снижаются либо кормление прекращается вовсе. Сеголетки с навеской менее 250 г могут переходить на питание планктоном. Пик заражения триенофорозом в водоемах Северо-Запада приходится на июнь – июль. В августе – сентябре заражения не происходит.

В 2003 году сотрудниками ФГУП Федеральный селекционно-генетический центр рыбоводства (ФСГЦР) по результатам многолетнего эпизоотического обследования форели на Копанском озере было рекомендовано высаживать весной в садки рыб массой тела не менее 250 – 300 г, устойчивых к большинству опасных паразитарных болезней [10; 13].

В 2017 – 2018 гг. в данном водоеме было проведено исследование щуки, что позволило выявить ее 100% зараженность T. nodulosus pl. при интенсивности 2 – 5 экз. на рыбу. В связи с этим зарыбление садкового участка на озере Копанское в мае 2019 было проведено с учетом данных рекомендаций. Был завезен посадочный материал радужной форели со средней массой 103 – 198 г. Последний завоз форели был проведен в августе 2019 г; когда в садки была высажена рыба со средней массой 300 г. В результате заражение гельминтами не произошло, в итоге была получена высококачественная продукция.

Избежать заражения гельминтами со сложным циклом развития позволяет использование таких схем выращивания, при которых осуществляется разрыв системы паразит-хозяин. Исключить заражение форели триенофорозом, в особенности его мышечной формой, возбудителем которой является T. crassus pl., можно используя такую схему выращивания, которая исключала бы контакт рыбы и паразита. Мероприятия, рекомендованные для профилактики триенофороза, такие как правильная организация выращивания и кормления, сортировка рыбы, поддержание оптимальных плотностей посадки и правильный режим кормления при наличии природного очага инвазии позволяют значительно снизить степень экстенсивности и интенсивности заражения, но не дают возможности избежать его полностью. Вылов щуки в акватории рыбоводного хозяйства также не всегда может быть осуществлен.

Наблюдения показали, что в садковых хозяйствах Северо-Запада, неблагополучных по триенофорозу и расположенных в зоне его природного очага, завоз сеголеток форели должен осуществляться в августе, когда заражения уже не происходит. В июле не рекомендуется содержать в садках таких хозяйств форель массой менее 200 – 250 г, так как даже при соблюдении нормативов кормления нельзя полностью исключить переход более мелких рыб на питание планктоном. Использование такой схемы позволило возобновить выращивание радужной форели в садковом хозяйстве на Копанском озере [9; 10; 11; 12; 13].

Первый случай заболевания гиродактилезом радужной форели в аквакультуре Карелии, сопровождавшийся значительной гибелью рыб, наблюдали в 2008 г. в трех садковых хозяйствах на Онежском озере [10]. В настоящее время инвазия моногенеями рода Gyrodactylus у радужной форели незначительна. Однако высокая плотность посадки и органическое загрязнение способствуют развитию гиродактилеза [15; 17; 22]. В связи с этим необходимым становится проведение ПЦР-диагностики, которая позволит определить видовую принадлежность выявленных паразитов.

В ФСГЦР исчез сильный очаг диплостомоза на рыбоводном участке с прудовым водоснабжением [12]. Это связано с совокупностью многих факторов. Ведущее значение при этом имеет изменение биотехники выращивания молоди и сеголеток. Для выращивания форели младших возрастных групп стали использовать рыбоводные цеха. До осени посадочный материал форели содержится в цехах бассейнового участка с использованием каптажного водозабора родниковой воды. Каптажный водозабор предотвращает контакт с промежуточными хозяевами – моллюсками и исключает попадание в бассейны с током воды церкарийдиплостомид и позволяет предотвратить контакт рыб с возбудителем на ранних стадиях развития. Перевод молоди на выращивание в бассейнах; установленных в закрытых павильонах, избавляет рыб от контакта с дефинитивными хозяевами паразита – чайками. Все это содействует разрыву системы паразит – хозяин и ликвидации болезни.

Развитию болезней, вызываемых паразитическими инфузориями, таким как ихтиофтириоз, триходиниоз, апиосомоз, способствуют органическое загрязнение, использование недоброкачественного корма, стрессы и низкий иммунофизиологический статус рыб [18; 20; 21; 22]. Протозоозы в равной степени могут встречаться в садковых и бассейновых хозяйствах.

Следует отметить, что в садковых хозяйствах вследствие особенностей технологии выращивания борьба с паразитическими простейшими чрезвычайно затруднена и требует значительных трудовых затрат. Проведение лечебно-профилактических обработок требует использования специального экрана, подводимого под садок, для создания необходимой концентрации лечебного препарата в течение определенного времени. Возможно, проведение лечебно-профилактических ванн путем вылова рыб из садков и погружением их в емкость с лечебным препаратом. Все эти способы вызывают дополнительный стресс у рыб. В бассейновых хозяйствах, напротив, конструкция рыбоводных емкостей и система водоподачи позволяет максимально эффективно осуществлять лечебно-профилактические мероприятия. Тем не менее, вспышки паразитарных болезней могут наблюдаться при нарушении технологии выращивания (переуплотнении посадки, нарушение режима кормления и т. д.).

Заключение

В ходе проведенных исследований были выявлены возбудители паразитарных болезней, представляющих наибольшую опасность в форелевых хозяйствах Северо-Запада России. Это триенофороз, гиродактилез и ихтиофтириоз, которые могут вызвать повышение смертности форели. Еще ряд гельминтов и инфузорий при обнаружении заслуживают особого внимания – моногенея Discocotyle sagittata, трематоды рода Diplostomum, апиозомы и триходины. Знание паразитофауны водоисточника позволит планировать и осуществлять оздоровление предприятия и не допускать проявления паразитарных болезней.

Вспышки паразитарных болезней зачастую напрямую связаны с санитарным состоянием бассейновых и садковых хозяйств. Органическое загрязнение садков и бассейнов способствует развитию инвазий, а стрессы, использование недоброкачественного корма, низкий физиологический статус рыб усугубляют течение болезни.

Своевременно предпринятые меры, включающие нормализацию условий содержания и кормления, а также лечебно-профилактические мероприятия, позволяют подавить развитие паразитарных болезней. Необходимо соблюдать биотехнику выращивания, обращать особое внимание на режим кормления, своевременную сортировку и санитарное состояние. При использовании открытого источника водоснабжения, будь то в садковых или бассейновых хозяйствах, необходим постоянный контроль эпизоотического состояния рыбы. Это позволит своевременно выявить заражение и провести комплекс необходимых лечебно-профилактических мероприятий.

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Conflict of interest. The author declares no conflicts of interest

Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.

Financing. The study had no sponsorship

Язык статьи:
Действия с выбранными: