По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 617–089 DOI:10.33920/med-15-2301-07

Нарушения гемостаза при проведении экстракорпоральной детоксикации и возможности их предотвращения. Обзор литературы

Шалаева Татьяна Ильинична д-р мед. наук, профессор кафедры общей хирургии, ФГАОУ ВО «РНИМУ имени Н. И. Пирогова» (117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1), врач-хирург, ГБУЗ «ГКБ № 24 ДЗМ» (127015, Россия, г. Москва, ул. Писцовая, д. 10), Е-mail: Ta.i.shalaeva@gmail.cоm, https://orcid.org/0000‑0003‑4753‑4766
Голубева Юлия Юсуповна старший лаборант кафедры общей хирургии, ФГАОУ ВО «РНИМУ имени Н. И. Пирогова», 117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1, Е-mail: raxmatullina@mail.ru, https://orcid.org/0000‑0003‑3802‑7930
Мисиков Заур Феликсович врач анестезиолог-реаниматолог, заведующий отделением реанимации и интенсивной терапии, ГБУЗ «ГКБ № 24 ДЗМ», 127015, Россия, г. Москва, ул. Писцовая, д. 10, Е-mail: Zaur.misikov.91@gmail.com, ORCID 0000‑0001‑8093‑6033

Значительная часть хирургических пациентов, нуждающихся в экстракорпоральной детоксикации (ЭКД), исходно имеют различные нарушения гемостаза и связанные с этим риски. Экстракорпоральное лечение может приводить к прогрессированию таких патологических состояний, в том числе с развитием клинически значимых кровотечений. В работе выполнен анализ современной литературы, освещающей развитие нарушений гемостаза при проведении ЭКД и возможности их предотвращения. В настоящее время отсутствует единое мнение о наиболее значимых причинах и механизмах нарушений коагуляции при ЭКД, часто приводящих к серьезным кровотечениям и ухудшению результатов лечения пациентов. Исследователи сходятся во мнении, что достоверное влияние на риск возникновения коагулопатии оказывает не тяжесть основного заболевания, а наличие нарушений коагуляции до начала лечения. У пациентов, исходно имевших коагулопатию и/или тромбоцитопению, кровоточивость после сеансов ЭКД наблюдается в 40–50 % случаев. До сих пор не получила окончательной оценки роль гепариновой антикоагуляции в развитии геморрагических осложнений ЭКД. В большинстве имеющихся в литературе публикаций авторы делают вывод об эффективности и безопасности цитратной антикоагуляции при различных вариантах экстракорпоральной детоксикации, отмечая, что использование цитрата вместо гепарина позволяет не только значительно продлить срок службы фильтра, но и снизить риск развития коагулопатий и кровотечений после процедуры. Вопросы использования, риски и преимущества цитратной антикоагуляции над гепариновой при проведении ЭКД у хирургических пациентов с коагулопатией требуют дальнейшего изучения.

Литература:

1. Rovegno M, Vera M, Ruiz A, Benítez C. Current concepts in acute liver failure. Ann Hepatol. 2019 Jul-Aug; 18 (4): 543–552. doi: 10.1016/j.aohep.2019.04.008.

2. Mullhaupt B, Kullak-Ublick GA, Ambühl P, Maggiorini M, Stocker R, Kadry Z, Clavien PA, Renner EL. First clinical experience with Molecular Adsorbent Recirculating System (MARS) in six patients with severe acute on chronic liver failure. Liver. 2002; 22 Suppl 2: 59–62. doi: 10.1034/j.1600–0676.2002.00012.x.

3. Ямпольский А.Ф., Еремеева Л.Ф., Меньшиков В.В., Заболоцкий И.В. Гемостаз во время MARS-терапии и гемодиафильтрации у пациентов с острой почечно-печеночной недостаточностью. Анестезиология и реаниматология. 2012 May-Jun; (3): 71–4.

4. Kramer L, Gendo A, Madl C, Ferrara I, Funk G, Schenk P, Sunder-Plassmann G, Hörl WH. Biocompatibility of a cuprophane charcoal-based detoxification device in cirrhotic patients with hepatic encephalopathy. Am J Kidney Dis. 2000 Dec; 36 (6): 1193–200. doi: 10.1053/ajkd.2000.19834.

5. Mitzner S, Klammt S, Stange J, Nöldge-Schomburg GF, Schmidt R. Extracorporeal blood purification in severe liver failure with the albumin dialysis MARS — impact on relevant intensive care parameters. Anasthesiol Intensivmed Notfallmed Schmerzther. 2005 Apr; 40 (4): 199–206. doi: 10.1055/s-2004–826116.

6. Krisper P, Tiran B, Fliser D, Haditsch B, Stadlbauer V, Otto R, Ernst T, Kretschmer U, Stauber RE, Haller H, Holzer H, Manns MP, Rifai K. Efficacy and safety of anticoagulation with heparin versus heparin plus epoprostenol in patients undergoing extracorporeal liver support with Prometheus. Artif Organs. 2010 Jan; 34 (1): 84–8. doi: 10.1111/j.1525–1594.2009.00793.x.

7. Bachli EB, Schuepbach RA, Maggiorini M, Stocker R, Mullhaupt B, Renner EL. Artificial liver support with the molecular adsorbent recirculating system: activation of coagulation and bleeding complications. Liver Int 2007; 27: 475–84.

8. Faybik P, Bacher A, Kozek-Langenecker SA, et al. Molecular adsorbent recirculating system and hemostasis in patients at high risk of bleeding: an observational study. Crit Care 2006; 10: R24.

9. Doria C, Mandala L, Smith JD, et al. Thromboelastography used to assess coagulation during treatment with molecular adsorbent recirculating system. Clin Transplant 2004; 18: 365–71.

10. Yang WS, Tan HK, Lui HF, Chow PK, Choong HL, Wong KS. Albumin dialysis in critically ill patients: use versus omission of intradialytic heparin. Artif Organs 2008; 32: 411–6.

11. Meijers BK, Verhamme P, Nevens F, et al. Major coagulation disturbances during fractionated plasma separation and adsorption. Am J Transplant 2007; 7: 2195–9.

12. Mallet SV, Cox DJ. Thrombelastography. Br J Aaesth 1992; 69: 307–13.

13. Wang Y., Yan Y., Wang Z. Diagnostic Value of Thromboelastography for Acute Disseminated Intravascular Coagulation. Zhongguo Shi Yan Xue Ye Xue Za Zhi. 2020 Oct; 28 (5): 1699–1703. doi: 10.19746/j.cnki.issn.1009–2137.2020.05.045.

14. Hughes RD, Nicolau N, Langley PG, Ellis AJ, Wendon JA, Williams R. Plasma cytokine levels and coagulation and complement activation during use of the extracorporeal liver assist device in acute liver failure. Artif Organs 1998: 22: 854.

15. Родоман Г.В., Шалаева Т.И., Александров М.И. Методы экстракорпоральной детоксикации при лечении пациентов с острым некротическим панкреатитом и развившимся ДВС-синдромом. Хирург 2020; 7–8 (178): 9–21.

16. Baldwin I: Continuous renal replacement therapy. Keeping pace with changes in technology and technique. Blood Purif 2002; 20: 269–274.

17. Van de Wetering J, Westendorp RGJ, Hoeven JG, et al: Heparin use in continuous renal replacement procedures: The struggle between filter coagulation and patient hemorrhage. J Am Soc Nephrol 1996; 7: 145–150.

18. Rifai K, Ernst T, Kretschmer U, et al. Prometheus — a new extracorporeal system for the treatment of liver failure. J Hepatol 2003; 39: 984–90.

19. Herget-Rosenthal S, Lison C, Treichel U, et al. Citrate anticoagulated modified fractionated plasma separation and adsorption: first clinical efficacy and safety data in liver failure. J Am Soc Nephrol 2003; 14: 729A.

20. Krisper P, Haditsch B, Stauber R, et al. In vivo quantification of liver dialysis: comparison of albumin dialysis and fractionated plasma separation. J Hepatol 2005; 43: 451–7.

21. Filippo Mariano a Ciro Tetta d Maurizio Stella b Piera Biolino c Antonio Miletto c Giorgio Triolo a Regional Citrate Anticoagulation in Critically Ill Patients Treated with Plasma Filtration and Adsorption. Blood Purif. 2004; 22: 313–319 DOI: 10.1159/000078788.

22. Morita Y, Johnson RW, Dorn RE, Hall DS: Regional anticoagulation during hemodialysis using citrate. Am J Med Sci 1961; 242: 32–42.

23. Mounchi M., Berghmans D., Ledoux D., Citrate vs. heparin for anticoagulation in continuous venovenous hemofiltration: a prospective randomized study. Intens. Care Med. 2006; 34: 260–265.

24. Hofbauer R., Moser D., Frass M. et al. Effect of anticoagulation on blood membrane interactions during hemodialysis. Kid. Int. 1999; 56: 1578–1583.

25. Gattas DJ, Rajbhandari D, Bradford C, Buhr H, Lo S, Bellomo R. A Randomized Controlled Trial of Regional Citrate Versus Regional Heparin Anticoagulation for Continuous Renal Replacement Therapy in Critically Ill Adults. Crit Care Med. 2015 Aug; 43 (8): 1622–9.

26. Schilder L, Nurmohamed SA, Bosch FH, Purmer IM, den Boer SS, Kleppe CG, et al.; CASH study group. Citrate anticoagulation versus systemic heparinisation in continuous venovenous hemofiltration in critically ill patients with acute kidney injury: a multi-center randomized clinical trial. Crit Care. 2014 Aug; 18 (4): 472.

27. Stucker F, Ponte B, Tataw J, Martin PY, Wozniak H, Pugin J, et al. Efficacy and safety of citrate-based anticoagulation compared to heparin in patients with acute kidney injury requiring continuous renal replacement therapy: a randomized controlled trial. Crit Care. 2015 Mar; 19 (1): 91.

28. Khadzhynov D, Schelter C, Lieker I, Mika A, Staeck O, Neumayer HH, et al. Incidence and outcome of metabolic disarrangements consistent with citrate accumulation in critically ill patients undergoing continuous venovenous hemodialysis with regional citrate anticoagulation. J Crit Care. 2014 Apr; 29 (2): 265–71.

29. Apsner R., Buchmayer H., Lang T. at al. Simplified citrate anticoagulation for high flux haemodialysis. Am.J. Kid. Dis. 2001; 38: 979–987.

30. Mehta R. L., McDonald B. R., Aguilar M. M. et al. Regional citrate anticoagulation for continuous arterio-venous haemodialysis In critically ill patients. Kid. Int. 1990; 38: 976–981.

31. Davenport A. Anticoagulation in patients with acute renal failure treated with continuous renal replacement therapies. Home Hemodial. Int. 1998; 2: 41–60.

32. Oota-Ishigaki, A., Maruyama, O., Sakota, et al. Quantitative investigation of platelet aggregation under high shear force for anti-platelet aggregation in vitro tests. Int J Artif Organs. 2021 Oct; 44 (10): 687–693. doi: 10.1177/03913988211020765.

33. Marschner CB, Kristensen AT, Spodsberg EH, et al. Evaluation of platelet aggregometry in dogs using the Multiplate platelet analyzer. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio) 2012; 22: 107–115.

34. Dugan G, O’Donnell L, Hanbury DB, et al. Assessment of Multiplate® platelet aggregometry using citrate, heparin or hirudin in Rhesus macaques. Platelets 2015; 26: 730–735.

35. Bosch T, Heinemann O, Durh C, et al. Effect of low-dose citrate anticoagulation on the clinical safety and efficacy of direct adsorption of lipoproteins (DALI apheresis) in hypercholesterolemic patients: A prospective controlled clinical trial. Artif Organs 2000; 24: 790–796.

36. Bianchi N.A., Altarelli M., Eckert P., Schneider A.G. Complications of Regional Citrate Anticoagulation for Continuous Renal Replacement Therapy: An Observational Study. Blood Purif. 2020; 49 (5): 567–575. doi: 10.1159/000506253.

37. Long J., Li Z., Zhang Z., Dong X., Zhu C. Anticoagulant effect of low concentration plasma trisodium citrate in continuous veno-venous hemofiltration. Ann Palliat Med. 2021 Aug; 10 (8): 8900–8908. doi: 10.21037/apm-21–1672

38. Rhee H., Berenger B., Mehta R. L., Macedo E. Replacement Therapy With Calcium-Containing Solutions: A Cohort Study. Am J Kidney Dis. 2021 Oct; 78 (4): 550–559. doi: 10.1053/j.ajkd.2021.01.017.

39. Yessayan L., Sohaney R., Puri V., et.al. Regional citrate anticoagulation «non-shock» protocol with pre-calculated flow settings for patients with at least 6 L/hour liver citrate clearance. BMC Nephrology (2021). 22: 244/ doi: 10.1186/ s12882‑021‑02443‑6.

40. Szamosfalvi B., Puri V., Sohaney R., et.al. Regional Citrate Anticoagulation Protocol for Patients with Presumed Absent Citrate Metabolism. Kidney360. 2020 Dec 18; 2 (2): 192–204. eCollection 2021 Feb 25. doi: 10.34067/KID.0005342020.

41. Zhang C., Lin T., Zhang J., et.al. Safety and efficacy of regional citrate anticoagulation in continuous renal replacement therapy in the presence of acute kidney injury after hepatectomy. Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2018 Aug; 30 (8): 777–782. doi: 10.3760/cma.j.issn.2095–4352.2018.08.013.

42. Hamdi T., Yessayan L., Yee J., Szamosfalvi B. High sodium continuous veno-venous hemodialysis with regional citrate anticoagulation and online dialysate generation in patients with acute liver failure and cerebral edema. Hemodial Int. 2018 Apr; 22 (2): 184–191. doi: 10.1111/hdi.12572.

43. Christiadi D., Mercado C., Singer R. Regional citrate anticoagulation in membrane based plasma exchange: Safety, efficacy and effect on calcium balance. Nephrology (Carlton). 2018 Aug; 23 (8): 744–747. doi: 10.1111/nep.13088.

44. Soshitova N. P., Karamzin S. S., Balandina A.N., et al. Predicting prothrombotic tendencies in sepsis using spatial clot growth dynamics. Blood Coagulation&Fibrinolysis. 2012; 23, 6: 498–507.

45. Luna-Zaizar H., Gonzalez-Moncada A. I., Padilla-Lopez E. L., et al. Thrombin generation and international normalized ratio in inherited thrombophilia patients receiving thromboprophylactic therapy. Thromb Res. 2015 Dec.; 136, 6: 1291–8.

46. Picoli-Quaino S. K., Alves B. E., Faiotto V. B., et al. Impairment of thrombin generation in the early phases of the host response of sepsis. J Crit Care. 2014 Feb; 29, 1: 31–6.

47. Reikvam H., Steien E., Hauge B., et al. Thrombelastography. Transfus Apher Sci. 2009. Apr.; 40, 2: 119–23.

48. Schneider AG, Journois D, Rimmelé T. Complications of regional citrate anticoagulation: accumulation or overload? Crit Care. 2017 Nov; 21 (1): 281.

1. Rovegno M, Vera M, Ruiz A, Benítez C. Current concepts in acute liver failure. Ann Hepatol. 2019 Jul-Aug; 18 (4): 543–552. doi: 10.1016/j.aohep.2019.04.008.

2. Mullhaupt B, Kullak-Ublick GA, Ambühl P, Maggiorini M, Stocker R, Kadry Z, Clavien PA, Renner EL. First clinical experience with Molecular Adsorbent Recirculating System (MARS) in six patients with severe acute on chronic liver failure. Liver. 2002; 22 Suppl 2: 59–62. doi: 10.1034/j.1600–0676.2002.00012.x.

3. Yаmpol’skij A. F., Eremeeva L. F., Men’shikov V. V., Zabolockij I.V. Hemostasis during MARS therapy and hemodiafiltration in patients with acute renal and hepatic failure. Anesteziologiya i reanimatologiya (Anesthesiology and resuscitation). 2012 MayJun; (3): 71–4.

4. Kramer L, Gendo A, Madl C, Ferrara I, Funk G, Schenk P, Sunder-Plassmann G, Hörl WH. Biocompatibility of a cuprophane charcoal-based detoxification device in cirrhotic patients with hepatic encephalopathy.. Am J Kidney Dis. 2000 Dec; 36 (6): 1193–200. doi: 10.1053/ajkd.2000.19834.

5. Mitzner S, Klammt S, Stange J, Nöldge-Schomburg GF, Schmidt R. Extracorporeal blood purification in severe liver failure with the albumin dialysis MARS — impact on relevant intensive care parameters.. Anasthesiol Intensivmed Notfallmed Schmerzther. 2005 Apr; 40 (4): 199–206. doi: 10.1055/s-2004–826116.

6. Krisper P, Tiran B, Fliser D, Haditsch B, Stadlbauer V, Otto R, Ernst T, Kretschmer U, Stauber RE, Haller H, Holzer H, Manns MP, Rifai K. Efficacy and safety of anticoagulation with heparin versus heparin plus epoprostenol in patients undergoing extracorporeal liver support with Prometheus.. Artif Organs. 2010 Jan; 34 (1): 84–8. doi: 10.1111/j.1525–1594.2009.00793.x.

7. Bachli EB, Schuepbach RA, Maggiorini M, Stocker R, Mullhaupt B, Renner EL. Artificial liver support with the molecular adsorbent recirculating system: activation of coagulation and bleeding complications. Liver Int 2007; 27: 475–84.

8. Faybik P, Bacher A, Kozek-Langenecker SA, et al. Molecular adsorbent recirculating system and hemostasis in patients at high risk of bleeding: an observational study. Crit Care 2006; 10: R24.

9. Doria C, Mandala L, Smith JD, et al. Thromboelastography used to assess coagulation during treatment with molecular adsorbent recirculating system. Clin Transplant 2004; 18: 365–71.

10. Yang WS, Tan HK, Lui HF, Chow PK, Choong HL, Wong KS. Albumin dialysis in critically ill patients: use versus omission of intradialytic heparin. Artif Organs 2008; 32: 411–6.

11. Meijers BK, Verhamme P, Nevens F, et al. Major coagulation disturbances during fractionated plasma separation and adsorption. Am J Transplant 2007; 7: 2195–9.

12. Mallet SV, Cox DJ. Thrombelastography. Br J Aaesth 1992; 69: 307–13.

13. Wang Y., Yan Y., Wang Z. Diagnostic Value of Thromboelastography for Acute Disseminated Intravascular Coagulation. Zhongguo Shi Yan Xue Ye Xue Za Zhi. 2020 Oct; 28 (5): 1699–1703. doi: 10.19746/j.cnki.issn.1009–2137.2020.05.045.

14. Hughes RD, Nicolau N, Langley PG, Ellis AJ, Wendon JA, Williams R. Plasma cytokine levels and coagulation and complement activation during use of the extracorporeal liver assist device in acute liver failure. Artif Organs 1998: 22: 854.

15. Rodoman G.V., SHalaeva T. I., Aleksandrov M. I. Methods of extracorporeal detoxification in the treatment of patients with acute necrotizing pancreatitis and developed disseminated intravascular coagulation. Hirurg (Surgeon) 2020; 7–8 (178): 9–21.

16. Baldwin I: Continuous renal replacement therapy. Keeping pace with changes in technology and technique. Blood Purif 2002; 20: 269–274.

17. Van de Wetering J, Westendorp RGJ, Hoeven JG, et al: Heparin use in continuous renal replacement procedures: The struggle between filter coagulation and patient hemorrhage. J Am Soc Nephrol 1996; 7: 145–150.

18. Rifai K, Ernst T, Kretschmer U, et al. Prometheus — a new extracorporeal system for the treatment of liver failure. J Hepatol 2003; 39: 984–90.

19. Herget-Rosenthal S, Lison C, Treichel U, et al. Citrate anticoagulated modified fractionated plasma separation and adsorption: first clinical efficacy and safety data in liver failure. J Am Soc Nephrol 2003; 14: 729A.

20. Krisper P, Haditsch B, Stauber R, et al. In vivo quantification of liver dialysis: comparison of albumin dialysis and fractionated plasma separation. J Hepatol 2005; 43: 451–7.

21. Filippo Mariano a Ciro Tetta d Maurizio Stella b Piera Biolino c Antonio Miletto c Giorgio Triolo a Regional Citrate Anticoagulation in Critically Ill Patients Treated with Plasma Filtration and Adsorption. Blood Purif 2004; 22: 313–319 DOI: 10.1159/000078788

22. Morita Y, Johnson RW, Dorn RE, Hall DS: Regional anticoagulation during hemodialysis using citrate. Am J Med Sci 1961; 242: 32–42.

23. Mounchi M., Berghmans D., Ledoux D., Citrate vs. heparin for anticoagulation in continuous venovenous hemofiltration: a prospective randomized study. Intens. Care Med. 2006; 34: 260–265.

24. Hofbauer R., Moser D., Frass M. et al. Effect of anticoagulation on blood membrane interactions during hemodialysis. Kid. Int. 1999; 56: 1578–1583.

25. Gattas DJ, Rajbhandari D, Bradford C, Buhr H, Lo S, Bellomo R. A Randomized Controlled Trial of Regional Citrate Versus Regional Heparin Anticoagulation for Continuous Renal Replacement Therapy in Critically Ill Adults. Crit Care Med. 2015 Aug; 43 (8): 1622–9.

26. Schilder L, Nurmohamed SA, Bosch FH, Purmer IM, den Boer SS, Kleppe CG, et al.; CASH study group. Citrate anticoagulation versus systemic heparinisation in continuous venovenous hemofiltration in critically ill patients with acute kidney injury: a multi-center randomized clinical trial. Crit Care. 2014 Aug; 18 (4): 472.

27. Stucker F, Ponte B, Tataw J, Martin PY, Wozniak H, Pugin J, et al. Efficacy and safety of citrate-based anticoagulation compared to heparin in patients with acute kidney injury requiring continuous renal replacement therapy: a randomized controlled trial. Crit Care. 2015 Mar; 19 (1): 91.

28. Khadzhynov D, Schelter C, Lieker I, Mika A, Staeck O, Neumayer HH, et al. Incidence and outcome of metabolic disarrangements consistent with citrate accumulation in critically ill patients undergoing continuous venovenous hemodialysis with regional citrate anticoagulation. J Crit Care. 2014 Apr; 29 (2): 265–71.

29. Apsner R., Buchmayer H., Lang T. at al. Simplified citrate anticoagulation for high flux haemodialysis. Am.J. Kid. Dis. 2001; 38: 979–987.

30. Mehta R. L., McDonald B. R., Aguilar M. M. et al. Regional citrate anticoagulation for continuous arterio-venous haemodialysis In critically ill patients. Kid. Int. 1990; 38: 976–981.

31. Davenport A. Anticoagulation in patients with acute renal failure treated with continuous renal replacement therapies. Home Hemodial. Int. 1998; 2: 41–60.

32. Oota-Ishigaki, A., Maruyama, O., Sakota, et al. Quantitative investigation of platelet aggregation under high shear force for anti-platelet aggregation in vitro tests. Int J Artif Organs. 2021 Oct; 44 (10): 687–693. doi: 10.1177/03913988211020765.

33. Marschner CB, Kristensen AT, Spodsberg EH, et al. Evaluation of platelet aggregometry in dogs using the Multiplate platelet analyzer. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio) 2012; 22: 107–115.

34. Dugan G, O’Donnell L, Hanbury DB, et al. Assessment of Multiplate® platelet aggregometry using citrate, heparin or hirudin in Rhesus macaques. Platelets 2015; 26: 730–735.

35. Bosch T, Heinemann O, Durh C, et al. Effect of low-dose citrate anticoagulation on the clinical safety and effi cacy of direct adsorption of lipoproteins (DALI apheresis) in hypercholesterolemic patients: A prospective controlled clinical trial. Artif Organs 2000; 24: 790–796.

36. Bianchi N. A., Altarelli M., Eckert P., Schneider A. G. Complications of Regional Citrate Anticoagulation for Continuous Renal Replacement Therapy: An Observational Study. Blood Purif. 2020; 49 (5): 567–575. doi: 10.1159/000506253.

37. Long J., Li Z., Zhang Z., Dong X., Zhu C. Anticoagulant effect of low concentration plasma trisodium citrate in continuous veno-venous hemofiltration. Ann Palliat Med. 2021 Aug; 10 (8): 8900–8908. doi: 10.21037/apm-21–1672.

38. Rhee H., Berenger B., Mehta R. L., Macedo E. Replacement Therapy With Calcium-Containing Solutions: A Cohort Study. Am J Kidney Dis. 2021 Oct; 78 (4): 550–559. doi: 10.1053/j.ajkd.2021.01.017.

39. Yessayan L., Sohaney R., Puri V., et.al. Regional citrate anticoagulation «non-shock» protocol with pre-calculated flow settings for patients with at least 6 L/hour liver citrate clearance. BMC Nephrology (2021). 22: 244/ doi: 10.1186/ s12882‑021‑02443‑6.

40. Szamosfalvi B., Puri V., Sohaney R., et.al. Regional Citrate Anticoagulation Protocol for Patients with Presumed Absent Citrate Metabolism. Kidney360. 2020 Dec 18; 2 (2): 192–204. eCollection 2021 Feb 25. doi: 10.34067/ KID.0005342020.

41. Zhang C., Lin T., Zhang J., et.al. Safety and efficacy of regional citrate anticoagulation in continuous renal replacement therapy in the presence of acute kidney injury after hepatectomy. Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2018 Aug; 30 (8): 777–782. doi: 10.3760/cma.j.issn.2095–4352.2018.08.013.

42. Hamdi T., Yessayan L., Yee J., Szamosfalvi B. High sodium continuous veno-venous hemodialysis with regional citrate anticoagulation and online dialysate generation in patients with acute liver failure and cerebral edema. Hemodial Int. 2018 Apr; 22 (2): 184–191. doi: 10.1111/hdi.12572.

43. Christiadi D., Mercado C., Singer R. Regional citrate anticoagulation in membrane based plasma exchange: Safety, efficacy and effect on calcium balance. Nephrology (Carlton). 2018 Aug; 23 (8): 744–747. doi: 10.1111/nep.13088.

44. Soshitova N. P., Karamzin S. S., Balandina A. N., et al. Predicting prothrombotic tendencies in sepsis using spatial clot growth dynamics. Blood Coagulation&Fibrinolysis. 2012; 23, 6: 498–507.

45. Luna-Zaizar H., Gonzalez-Moncada A. I., Padilla-Lopez E. L., et al. Thrombin generation and international normalized ratio in inherited thrombophilia patients receiving thromboprophylactic therapy. Thromb Res. 2015 Dec.; 136, 6: 1291–8.

46. Picoli-Quaino S. K., Alves B. E., Faiotto V. B., et al. Impairment of thrombin generation in the early phases of the host response of sepsis. J Crit Care. 2014 Feb; 29, 1: 31–6.

47. Reikvam H., Steien E., Hauge B., et al. Thrombelastography. Transfus Apher Sci. 2009. Apr.; 40, 2: 119–23.

48. Schneider AG, Journois D, Rimmelé T. Complications of regional citrate anticoagulation: accumulation or overload? Crit Care. 2017 Nov; 21 (1): 281.

Методы экстракорпоральной детоксикации (ЭКД) широко используются для лечения хирургических пациентов в условиях интенсивной терапии. Однако значительная часть больных, нуждающихся в ЭКД (в том числе пациенты с острой почечной недостаточностью и печеночной недостаточностью, связанной с сепсисом, тяжелым острым панкреатитом, ожогами, травмами и серьезными хирургическими вмешательствами), исходно имеют различные нарушения систем гемостаза — претромботическое состояние гемостаза, ДВС, нарушения синтеза факторов свертывания, тромбоцитопении и связанные с этим риски. Экстракорпоральное лечение может приводить к прогрессированию патологических состояний гемостаза, в том числе с развитием клинически значимых кровотечений [1–10]. Сложности и риски применения методов экстракорпоральной детоксикации на фоне коагулопатий и необходимость внедрения соответствующих профилактических стратегий обсуждаются в публикациях достаточно давно [1–4].

В работе выполнен анализ современной литературы, освещающей развитие нарушений гемостаза при проведении ЭКД и возможности их предотвращения. Поиск проводился в электронной базе данных PubMed с использованием ключевых слов «экстракорпоральная детоксикация», «нарушения гемостаза», «коагулопатия», «цитратная антикоагуляция».

Продемонстрировано, что некоторые процедуры экстракорпоральной детоксикации сопровождаются значительным снижением уровня отдельных факторов свертывания крови, для факторов II, X, а также для белка C, превышающим 50%, что может провоцировать и кровотечения, и тромбозы [11]. Причиной потери прокоагулянтных и антикоагулянтных факторов при использовании таких методов, как селективная плазмоадсорбция (FPSA — технология сепарации и адсорбции фракционированной плазмы), может являться их адсорбция при контакте плазмы с анионообменником. Однако в ходе таких процедур, как MARS (молекулярная адсорбирующая рециркулярная система, или альбуминовый диализ, применяется при печеночной недостаточности и гепаторенальном синдроме, в качестве диализата используется альбумин, который, связываясь с токсинами пациента, рециркулируется и перфузируется через колонны с древесным углем и анионообменником), связанные с альбумином растворенные вещества подвергаются диализу через пропитанную альбумином полисульфонную мембрану с размером пор 50 кД, а факторы свертывания сохраняются в первичном контуре и не вступают в контакт с картриджами с адсорбентом. В результате механизм их потери отсутствует, хотя наблюдается существенная потеря тромбоцитов и их дисфункция [10, 11].

Для Цитирования:
Шалаева Татьяна Ильинична, Голубева Юлия Юсуповна, Мисиков Заур Феликсович, Нарушения гемостаза при проведении экстракорпоральной детоксикации и возможности их предотвращения. Обзор литературы. Хирург. 2023;1.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: