По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 616.3

Микробиологические аспекты применения антибактериальных препаратов у больных с эпителиальным копчиковым ходом

Родоман Григорий Владимирович доктор мед. наук, профессор, заведующий кафедрой общей хирургии и лучевой диагностики лечебного факультета, ФГБОУ РНИМУ им. Н. И. Пирогова Минздрава РФ (119997, г. Москва, ул. Островитянова, д.1), главный врач ГБУЗ «ГКБ № 24 ДЗМ» (127015, г. Москва, ул. Писцовая, д.10)
Поварихина Ольга Александровна ассистент кафедры общей хирургии и лучевой диагностики лечебного факультета, ФГБОУ РНИМУ им. Н. И. Пирогова Минздрава РФ (119997, г. Москва, ул. Островитянова, д.1), заведующая кабинетом современных перевязочных средства и вакуумной терапии ГБУЗ «ГКБ № 24 ДЗМ» (127015, г. Москва, ул. Писцовая, д.10)
Коротаев Алексей Леонидович доктор мед. наук, заведующий клинико-диагностической лабораторией ГБУЗ «ГКБ № 24 ДЗМ», 127015, г. Москва, ул. Писцовая, д.10
Круглов Александр Николаевич к.б.н, с.н.с., зав. лабораторией клинической микробиологии ГБУЗ «ГКБ № 24 ДЗМ», 127015, г. Москва, ул. Писцовая, д.10

В статье представлены результаты микробиологического исследования проб 146 больных с острым и хроническим воспалением ЭКХ. Изучен микробный пейзаж возбудителей воспалений ЭКХ. Выполнена оценка чувствительности выделенных микроорганизмов к антибактериальным средствам; произведен подбор наиболее рациональных схем эмпирической антибактериальной терапии и антибиотикопрофилактики. При остром воспалении ЭКХ в качестве эмпирической стартовой терапии необходимо использовать фторхинолоны, цефалоспорины 3 и 4 поколения, аминогликозиды, тетрациклины. При хроническом воспалении ЭКХ целесообразно применение стартовой комбинированной терапии антибиотиками группы резерва: Ванкомицин или Линезолид в сочетании с карбапенемами и ингибитор-защищенными пенициллинами или цефалоспоринами.

Литература:

1. Шелыгин Ю. А., Благодарный Л. А. Справочник по колопроктологии. — М.: Литтерра. — 2014. — 608 с.

2. Шелыгин Ю. А. Колопроктология. Клинические рекомендации. — М: Геотар-Медиа. — 2015. — 528 с.

3. Oomen J. W., Spauwen P. H., Bleichrodt R. P., van Goor H. Guideline proposal to reconstructive surgery for complex perineal sinus or rectal fistula // Int J Colorectal Dis. — 2007 — Feb. — V. 22 (2). — P. 225–30.

4. Banasiewicz T., Bobkiewicz A., Borejsza-Wysocki M., Biczysko M., Ratajczak A., Malinger S., Drews M. Portable VAC therapy improve the results of the treatment of the pilonidal sinus--randomized prospective study // Pol Przegl Chir. — 2013. — Jul. — V. 85 (7). — P. 371–6.

5. Moreau I.1, Ripoche S. [Pilonidal sinus and Vac Therapy] // Soins. — 2008. — Sep. — V. (728). — P. 27–30.

6. Gray M. Context for practice: intertriginous dermatitis, NPWT for pilonidal disease, calciphylaxis, and more // J Wound Ostomy Continence Nurs. — 2011. — Jul — Aug. — 38 (4). — P. 335–7.

7. Farrell D., Murphy S. Negative Pressure Wound Therapy for recurrent Pilonidal Disease. A Review of the Literature. Wound Ostomy Contience Nurs. — 2011. — V. 38 (4). — P. 373–378.

8. Irkoren S., Sivrioglu N., Karaca H. Rare complication after VAC therapy in the treatment of tissue defect due to surgical excision of pilonidal sinus // J Wound Ostomy Continence Nurs. — 2013. — Nov — Dec. — V. 40 (6). — P. 641–3.

9. Родоман Г. В., Поварихина О. А., Сумеди И. Р., Коротаев А. Л. Послеоперационная реабилитация больных эпителиальным копчиковым ходом с применением локального отрицательного давления // Вестник Всероссийского общества специалистов по медико-социальной экспертизе, реабилитации и реабилитационной индустрии. — 2017. — Июнь (2). — С. 63–70.

10. Родоман Г. В., Поварихина О. А., Сумеди И. Р., Коротаев А. Л. Применение локального отрицательного давления в местном лечении открытых послеоперационных ран у больных с хроническим воспалением эпителиального копчикового хода // Колопроктология. — 2016. — № 4 (58) — С. 42.

11. Ardelt M.1, Dittmar Y.1, Kocijan R. Microbiology of the infected recurrent sacrococcygeal pilonidal sinus // Int Wound J. — 2016. — Apr. — V. 13 (2). — P. 231–7.

12. Miocinović M.1, Horzić M., Bunoza D. The prevalence of anaerobic infection in pilonidal sinus of the sacrococcygeal region and its effect on the complications // Acta Med Croatica. — 2001. — V. 55 (2). — P. 87–90.

13. Brook I. Microbiology of infected epidermal cysts // Arch Dermatol. — 1989. — Dec. — V. 125 (12). — P. 1658–61.

14. Velitchkov N.1, Djedjev M., Kirov G. Toxic shock syndrome and necrotizing fasciitis complicating neglected sacrococcygeal pilonidalsinus disease: report of a case // Dis Colon Rectum. — 1997. — Nov. — V. 40 (11). — P. 1386–90.

15. Денисенко В. Л., Римжа М. И., Воробей А. В. Микрофлора раневого содержимого и перифокальное воспаление клетчатки у больных с абсцедирующим эпителиальным копчиковым ходом // Вестник ВГМУ. — 2006. — Т. 5. — № 2. — С. 70–72.

16. Приказ Министерства здравоохранения СССР от 22.04.1985 № 535 «ОБ унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений».

17. Bauer A. W., W. M. M. Kirby, J. C. Sherris and M. Turck. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method // Am. J. Clin. — 1966. — Pathol. — 45. — 493–496.

18. European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters Version 8.0, valid from 2018-01-01.

19. Клинические рекомендации «Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам», 2015, изд-е 2.

REFERENCES

1. Shely`gin Yu.A., Blagodarny`j L. A. Spravochnik po koloproktologii. (Handbook of Coloproctology) — M.: Litterra. — 2014. — 608.

2. Shely`gin Yu.A., Koloproktologiya. Klinicheskie rekomendacii. (Coloproctology. Clinical guidelines.) — M: Geotar-Media. — 2015–528.

3. Oomen JW, Spauwen PH, Bleichrodt RP, van Goor H. Guideline proposal to reconstructive surgery for complex perineal sinus or rectal fistula. Int J Colorectal Dis. 2007 Feb; 22 (2):225–30.

4. Banasiewicz T, Bobkiewicz A, Borejsza-Wysocki M, Biczysko M, Ratajczak A, Malinger S, Drews M. Portable VAC therapy improve the results of the treatment of the pilonidal sinus--randomized prospective study. Pol Przegl Chir. 2013 Jul;85 (7):371–6.

5. Moreau I1, Ripoche S. [Pilonidal sinus and Vac Therapy]. Soins. 2008 Sep; (728):27–30.

6. Gray M. Context for practice: intertriginous dermatitis, NPWT for pilonidal disease, calciphylaxis, and more. J Wound Ostomy Continence Nurs. 2011 Jul-Aug;38 (4):335–7.

7. Farrell D., Murphy S., Negative Pressure Wound Therapy for recurrent Pilonidal Disease. A Review of the Literature. Wound Ostomy Contience Nurs. — 2011; 38 (4): 373–378.

8. Irkoren S1, Sivrioglu N, Karaca H. Rare complication after VAC therapy in the treatment of tissue defect due to surgical excision of pilonidal sinus. J Wound Ostomy Continence Nurs. 2013 Nov-Dec;40 (6):641–3.

9. Rodoman G. V., Povarixina O. A., Sumedi I. R., Korotaev A. L. Posleoperacionnaya reabilitaciya bol`ny`x e`pitelial`ny`m kopchikovy`m xodom s primeneniem lokal`nogo otriczatel`nogo davleniya (Postoperative rehabilitation of patients with epithelial coccygeal course using local negative pressure) Vestnik Vserossijskogo obshhestva specialistov po mediko-social`noj e`kspertize, reabilitacii i reabilitacionnoj industrii. 06.2017; — (2):63–70.

10. Rodoman G. V., Povarixina O. A., Sumedi I. R., Korotaev A. L. Primenenie lokal`nogo otriczatel`nogo davleniya v mestnom lechenii otkry`ty`x posleoperacionny`x ran u bol`ny`x s xronicheskim vospaleniem e`pitelial`nogo kopchikovogo xoda (Application of local negative pressure in local treatment of open postoperative wounds in patients with chronic inflammation of the epithelial coccygeal course). Koloproktologiya, 2016: 4 (58) — 42.

11. Ardelt M1, Dittmar Y1, Kocijan R. Microbiology of the infected recurrent sacrococcygeal pilonidal sinus. Int Wound J. 2016 Apr;13 (2):231–7.

12. Miocinović M1, Horzić M, Bunoza D. The prevalence of anaerobic infection in pilonidal sinus of the sacrococcygeal region and its effect on the complications. Acta Med Croatica. 2001;55 (2):87–90.

13. Brook I, Microbiology of infected epidermal cysts. Arch Dermatol. 1989 Dec;125 (12):1658–61.

14. Velitchkov N1, Djedjev M, Kirov G. Toxic shock syndrome and necrotizing fasciitis complicating neglected sacrococcygeal pilonidalsinus disease: report of a case. Dis Colon Rectum. 1997 Nov;40 (11):1386– 90.

15. Denisenko V. L., Rimzha M. I., Vorobej A. V. Mikroflora ranevogo soderzhimogo i perifokal`noe vospalenie kletchatki u bol`ny`x s abscediruyushhim e`pitelial`ny`m kopchikovy`m xodom (Microflora content of the wound and perifocal inflammation of the tissue in patients with abscessed epithelial coccygeal course). Vestnik VGMU, 2006, Tom 5, N2. — 70–72.

16. MINISTERSTVO ZDRAVOOXRANENIYA SSSR, PRIKAZ N 535 ot 22 aprelya 1985 g. «OB UNIFIKACII MIKROBIOLOGICHESKIX (BAKTERIOLOGICHESKIX) METODOV ISSLEDOVANIYA, PRIMENYAEMY`X V KLINIKO — DIAGNOSTICHESKIX LABORATORIYAX LECHEBNO — PROFILAKTICHESKIX UCHREZHDENIJ» (ORDER No. 535 of April 22, 1985 «ON the unification of MICROBIOLOGICAL (BACTERIOLOGICAL) RESEARCH METHODS USED IN CLINICAL DIAGNOSTIC LABORATORIES of MEDICAL INSTITUTIONS»).

17. Bauer, A. W., W. M. M. Kirby, J. C. Sherris, and M. Turck. 1966. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. Am. J. Clin. Pathol. 45:493–496.

18. European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters Version 8.0, valid from 2018-01-01

19. Klinicheskie rekomendacii «Opredelenie chuvstvitel`nosti mikroorganizmov k antimikrobny`m preparatam», 2015, izdanie 2 (Clinical guidelines «Determination of microbial sensitivity to antimicrobial agents», 2015, edition 2).

Введение

Проблема лечения и реабилитации больных с эпителиальным копчиковым ходом (ЭКХ) остается актуальной до настоящего времени. С одной стороны, это связано с частотой развития заболевания. Пациенты с воспалениями ЭКХ в среднем составляют 1–2 % от всех хирургических больных, причем в общей популяции заболевание встречается у 26 на 100 000 человек населения [1, 2]. С другой стороны, данное заболевание проявляется в активном трудоспособном возрасте, наиболее часто страдают лица мужского пола в возрасте до 30 лет.

Несмотря на многолетнее изучение вопросов лечения и реабилитации данной категории больных и наличие множества вариантов оперативных вмешательств [3–9], до сих пор сохраняются длительные сроки заживления ран крестцово-копчиковой области, которые составляют от 14 до 80 суток, а количество послеоперационных раневых осложнений остается высоким и достигает 50 % [10]. Одной из причин этого является отсутствие единой общепринятой тактики назначения антибактериальных препаратов у данной категории больных. В доступной научной литературе этому вопросу практически не уделяется должного внимания [11, 12, 13, 14, 15].

Таким образом, вопросы антибиотикопрофилактики и лечения больных с воспалениями ЭКХ остаются весьма актуальными. С учетом изложенного задачами исследования являлись:

• изучение микробного пейзажа возбудителей воспалений ЭКХ;

• оценка чувствительности выделенных микроорганизмов к антибактериальным средствам;

• подбор наиболее рациональных схем эмпирической антимикробной терапии на основе полученных данных.

Материалы и методы

Были проанализированы результаты микробиологического исследования проб 146 больных с воспалениями эпителиальных копчиковых ходов, находившихся на лечении в университетской клинике общей хирургии и колопроктологии РНИМУ имени Н. И. Пирогова на базе ГБУЗ ГКБ № 24 в 2014–2017 годах.

Все 146 больных перенесли оперативное пособие в крестцово-копчиковой области и находились на лечении с диагнозом «Острое или хроническое воспаление ЭКХ». Распределение пациентов по возрасту, полу и стадии процесса представлено в таблице 1. В исследованной группе преобладали лица мужского пола. Соотношение мужчин и женщин составило примерно 4:1. Средний возраст пациентов — 29 ± 6,4 лет. В 72 случаях (49,3 %) пациентам было произведено вскрытие абсцесса в крестцово-копчиковой области. У остальных 74 (50,6 %) больных произведены радикальные иссечения основного источника хронического воспаления вместе с вторичными гнойными свищами. У всех больных ведение ран в послеоперационном периоде осуществлялось открытым способом.

Микробиологические исследования раневого биоматериала проводили в соответствии с требованиями приказа МЗ РФ № 535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений» [16].

Из исследования было исключено 12 пациентов, у которых не удалось выделить культуры возбудителей инфекции, что, возможно, связано с облигатно-анаэробной природой микроорганизмов либо с самостоятельным несанкционированным применением антимикробных средств до момента взятия биологического материала на бактериологическое исследование.

Идентификацию выделенных микроорганизмов и определение чувствительности к антимикробным препаратам проводили с помощью тест-систем анализаторов autoSCAN фирмы BECMAN COULTER и SENSITITRE ARIS фирмы TREK Diagnostic. Материалом для идентификации служили изолированные колонии на чашке или чистые культуры в пробирках, из которых готовили микробную суспензию в концентрации 0,5 оптические единицы по Мак Фарланду (стандарт оптической плотности). Инокулюм вносили в лунки с субстратами данных тест-систем и в лунки, содержащие антимикробные препараты в определенных концентрациях (break point). Планшеты инкубировали при температуре 36 °С в течение 24 часов. Учет осуществляли автоматически, используя аналитический блок анализаторов с последующей компьютерной обработкой данных. Гемолитическую, плазмокоагулазную, лецитиназную, фибринолитическую активность возбудителей выявляли по общепринятым методикам [17, 18].

Данные о чувствительности интерпретировали в соответствии с российскими клиническими рекомендациями «Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам», версия-2015–02, и международным стандартом EUCAST, версия 8.0, 2018 [19].

Результаты и обсуждение

При бактериологическом исследовании раневого биоматериала пациентов с острыми воспалениями ЭКХ наиболее часто высевалась грамположительная микрофлора. Результаты показали явное превалирование грампозитивной микрофлоры (рис. 1). На долю грамположительных культур стафилококков, стрептококков, энтерококков приходилось в сумме 66,9 % выделенных микробных культур. Грамнегативные культуры — энтеробактерии и неферментирующие грамотрицательные бактерии (НГОБ), были выделены в 31,8 % случаев. На долю прочих возбудителей приходилось 1,35 % от всех исследований.

Микробные ассоциации определялись у 10 пациентов (7 % случаев). У остальных 127 (93 %) больных флора была представлена в монокультуре. Во встретившихся ассоциациях микроорганизмов St. aureus сочетался с Enterococcus faecalis и в 2 случаях с E. сoli; St. epidermidis — с Enterococcus faecalis и с E. coli. Наиболее часто в ассоциациях встречалась E. сoli (8 случаев из 10–80 %): в 2 случаях в сочетании с St. aureus, в 2 случаях — с St. epidermidis, по 1 случаю — в сочетании с Corynebacterium spp, Enterococcus durans, Str. equi, Enterococcus faecium.

Следует отметить, что в то время как у пациентов, обратившихся по поводу острого воспаления ЭКХ, высевалась преимущественно грамположительная флора, у пациентов с хроническим воспалением ЭКХ чаще высевалась грамотрицательная флора.

При изучении резистентности основных возбудителей воспалений ЭКХ было обнаружено, что стафилококковая микрофлора обладала относительно высокой устойчивостью к макролидам и проявляла высокую чувствительность к большинству исследованных препаратов (рис. 2). Из приведенных данных следует, что наиболее эффективными антистафилококковыми препаратами при этой патологии являются оксазолидиноны (Линезолид), гликопептиды (Ванкомицин) и ансамицины (Рифампицин). Макролиды, фторхинолоны и хлорамфеникол были наименее эффективными против стафилококков in vitro. В то же время E. coli демонстрировала резистентность (≥ 30 %) к группе пенициллинов, включая ингибиторзащищенные формы, к цефалоспоринам первой и второй генерации, аминогликозидам и тетрациклинам (рис. 3). Таким образом, их использование в эмпирической терапии воспалений ЭКХ можно считать нецелесообразным. Стрептококки проявляли наиболее высокую чувствительность к большинству из исследованных групп препаратов, за исключением макролидов и фторхинолонов.

В группе пациентов хроническим воспалением ЭКХ зачастую выделялись бактериальные штаммы с множественной и экстремальной резистентностью к антибактериальным препаратам: E. сoli, продуцирующая бета-лактамазы расширенного спектра (БЛРС), обеспечивающие резистентность к антибиотикам бета-лактамной группы (пенициллинам, цефалоспоринам 1–4 генераций). Такие штаммы в 70 % случаев имели ассоциированную резистентность к фторхинолонам и аминогликозидам. В одном случае выделена E. сoli с фенотипом продуцента карбапенемаз, обеспечивающим ее резистентность к ингибитор-защищенным пенициллинам и цефалоспоринам и к карбапенемам (имипенему, меропенему, дорипенему, эртапенему).

Среди популяции изолированных стафилококков зафиксировано 8 штаммов (14 %) МРСА и МРС когулазонегативных стафилококков, что гарантировало неуспех клинического применения любых бета-лактамных антибиотиков, начиная с пенициллинов и кончая карбапенемами. Такие штаммы также зачастую имеют ассоциированную резистентность к фторхинолонам, аминогликозидам, макролидам и тетрациклинам.

Заключение

Таким образом, при остром воспалении ЭКХ в качестве эмпирической стартовой терапии необходимо использовать фторхинолоны, цефалоспорины 3 и 4 поколения, аминогликозиды, тетрациклины. Комбинированная терапия данными группами препаратов позволит добиться более гарантированного эффекта лечения и профилактики рецидива инфекции. При хроническом воспалении ЭКХ целесообразно применение стартовой комбинированной терапии антибиотиками группы резерва: Ванкомицин или Линезолид в сочетании с карбапенемами и ингибитор-защищенными пенициллинами или цефалоспоринами.

Следует подчеркнуть, что консервативная терапия воспалений ЭКХ никоим образом не исключает необходимость хирургического вмешательства. Основным методом лечения острого и хронического воспаления ЭКХ остается оперативное вмешательство, направленное на ликвидацию гнойного очага. В то же время в комплексном лечении данной категории больных должна быть использована рациональная антибактериальная терапия.

Язык статьи:
Действия с выбранными: