По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.371.2

Криоконсервация спермы осетровых рыб: текущее состояние и перспективы

Д. А. Исаев канд. биол. наук, ФГБНУ «Всероссийский НИИ ирригационного рыбоводства ФАНО», Россия, Московская область, Ногинский р-н, пос. им. Воровского, e-mail: isaev@hotmail.ru
Р. А. Шафеи канд. биол. наук, МГУ им. М. В. Ломоносова, Россия, Москва

В работе представлен краткий обзор подходов и методов криоконсервации спермы некоторых видов осетровых рыб. Несмотря на длительную историю экспериментальных исследований, большинство этих методов все еще недостаточно эффективны для рутинного применения в осетроводстве. Целью нашего обзора было выявить наиболее эффективные существующие методики криоконсервации спермы осетровых рыб, а также отметить новые тенденции, позволяющие улучшить или даже заменить «классические» подходы.

Литература:

1. Богатырева М. М. Оптимизация методов криоконсервации спермы для сохранения генофонда осетровых рыб: дисс… канд. биол. наук. — Астрахань, 2010. — 126 с.

2. Бубунец Э. В. и др. Качество спермы анадромных осетровых в условиях культивирования // Рыбное хозяйство. — 2015. — № 5. — С. 61–67.

3. Васильева Л. М. и др. Технологии и нормативы по товарному осетроводству в VI рыбоводной зоне / под ред. Н. В. Судаковой. — М.: Изд-во ВНИРО, 2006. — 100 с.

4. Васильева Л. М. и др. Биотехнологические нормативы по товарному осетроводству. — Астрахань: ИД «Астраханский университет», 2010. — 78с.

5. Земков Г. В., Акимочкина Т. И. Цитоморфологические и функциональные изменения спермиев у русского осетра Acipenser guldenshtadti после криоконсервации // Цитология. — 2009. — Т. 51, № 11. — С. 945–952.

6. Красильникова А. А., Тихомиров А. М. Альтернативные способы подготовки сперматозоидов рыб к замораживанию при сверхвысоких значениях скорости охлаждения // Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство. — 2014. — № 2. — С. 72–78.

7. Персов Г. М. Дозирование спермиев как способ управления оплодотворением яйцеклеток осетровых: доклады АН СССР. — Т. 90. — М., 1953 — С. 1183–1185.

8. Пономарева Е. Н. и др. Оптимизация процесса криоконсервации спермы осетровых рыб при использовании различных сред // Изв. Самарского научного центра Российской академии наук. — 2009. — Т. 11, № 1 (2). — С. 132–134.

9. Пономарева Е. Н. и др.Криоконсервация репродуктивного материала рыб: разработки Южного научного центра Российской академии наук // Современные рыбохозяйственные и экологические проблемы Азово-Черноморского региона: материалы VII Международной конференции (Керчь, 20–23 июня 2012 г.). — Керчь: ЮгНИРО, 2012. — Т. 2. — C. 55–58.

10. Тихомиров А. М., Пономарева Е. Н. Электростимуляция мембран спермиев русского осетра облегчает проникновение криопротекторов внутрь клеток // Криоконсервация как способ сохранения биологического разнообразия: биофизика живой клетки. Консервация генетических ресурсов: материалы конференции (Пущино, 28–30 октября 2008 г.). — Пущино, 2008. — Т. 9. — С. 129–130.

11. Чебанов М. С., Галич Е. В. Руководство по искусственному воспроизводству осетровых рыб / Технический доклад ФАО по рыбному хозяйству. — Анкара, 2013. — 370 с.

12. Черепанов В. В., Желтоножко С. В., Желтоножко В. В. Криоконсервация спермы реофильной нерки // Проблемы криобиологии. — 2000. — № 2. — С. 64–70.

13. Чипинов В. Г., Джаригазов Е. С., Болонина Н. В. Оценка качества спермы осетровых рыб различными методами и опыт ее низкотемпературной консервации // Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство. — 2010. — № 1. — С. 140–143.

14. Шишанова Е. И., Тренклер И. В., Мамонова А. С. Влияние криоконсервации спермы на выживаемость и генетический полиморфизм личинок русского осетра // Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство. — 2012. — № 2. — С. 105–111.

15. Штайн Г. Криоконсервация гамет рыб // Проблемы криобиологии. — 1991. — № 3. — С. 42–46.

16. Abed-Elmdoust A. et al. Novel droplet vitrification combined with fish antifreeze protein type III enhances cryoprotection of semen in wild endangered Persian sturgeon Acipenser persicus (Borodin, 1897) // Aquaculture Research. — 2015. — V. 46. — P. 2392–2397.

17. Aramli M. S., Nazari R. M. Motility and fertility of cryopreserved semen in Persian sturgeon, Acipenser persicus, stored for 30–60 min after thawing // Cryobiology. — 2014. — V. 69. — P. 500–502.

18. Aramli M. S. et al. Effectiveness of glucose-methanol extender for cryopreservation of Huso huso spermatozoa // Anim. Reprod. Sci. — 2015. — V. 162. — P. 37–42.

19. Aramli M. S., Nazari R. M., Gharibi M. R. Effect of post-thaw storage time on motility and fertility of cryopreserved beluga sturgeon (Huso huso) sperm // Reprod. Domest. Anim. — 2015а. — V. 50. — P. 349–352.

20. Aramli M. S. et al. Effect of freezing rate for cryopreservation of Persian sturgeon (Acipenser persicus) spermatozoa // Theriogenology. — 2016. — V. 85. — P. 734–739.

21. Boryshpolets S. et al. Cryopreservation of sterlet (Acipenser ruthenus) spermatozoa using different cryoprotectants // Journal of Applied Ichthyology. — 2011. — V. 27. — P. 1147–1149.

22. Dzyuba B. et al. Spermatozoa motility, cryoresistance, and fertilizing ability in sterlet Acipenser ruthenus during sequential stripping // Aquaculture, 2012. — V. 356–357. — P. 272–278.

23. Dzyuba B. et al. Motility and fertilization ability of sterlet Acipenser ruthenus testicular sperm after cryopreservation // Cryobiology. — 2014. — V. 69. — P. 339–341.

24. Glogowski J. et al. Fertilization rate of Siberian sturgeon (Acipenser baeri, Brandt) milt cryopreserved with methanol // Aquaculture. — 2002. — V. 211. — P. 367–373.

25. Horvath A., Chеvre P., Urbanyi B. Sperm cryopreservation in sturgeon with a special focus on A. sturio: chap. 35 // In: Biology and conservation of the European sturgeon Acipenser sturio L. 1758: the reunion of the European and Atlantic sturgeons. Ed. by Williot P., Rochard E., Desse Berset N., Kirschbaum F., Gessner J. / Heidelberg, NLD: Springer, 2011. — P. 465–476.

26. Huang B. X.-R. et al. Effect of cryopreservation on the enzyme activity of Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii Brandt & Ratzeburg, 1833) semen // J. Appl. Ichthyol. — 2014. — V. 30. — P. 1585–1589.

27. Judycka S. et al. New extender for cryopreservation of Siberian sturgeon (Acipenser baerii) semen // Cryobiology. — 2015. — Feb 25. pii: S0011–2240 (15) 00 033–4.

28. Manual on sturgeon reproduction / Coppen International bv, Helmont, The Netherlands, 2007. — Special Issue. — 40 p.

29. Sadeghi A. et al. Cryopreservation of stellate (Acipenser stellatus) sperm: Effect of different concentrations of DMSO and dilution dates on sperm mobility and motility duration after longterm storage // Global Veterinaria. — 2013. — V. 10. — P. 26–30.

30. Sadeghi A. et al. Cryopreservation of beluga (Huso huso) sperm: Effect of different concentrations of DMSO and dilution rates on sperm mobility and motility duration after shortterm storage // Global Veterinaria, 2013а. — V. 10. — P. 46–50.

31. Shaliutina-Kolešová A. et al. The influence of cryoprotectants on sturgeon (Acipenser ruthenus) sperm quality, DNA integrity, antioxidant responses, and resistance to oxidative stress // Anim. Reprod. Sci. — 2015. — V. 159. — P. 66–76.

32. Stein H. Zur Gefrierkonservierung von Fischsperma // Tierzuchter, 1976. — B. 28. — S. 498.

33. Stein H., Bayrle H. Cryopreservation of the sperm of some freshwater teleosts // Ann. Biol. anim. Bioch. Biophys. — 1978. — V. 18, № 4. — P. 1073–1076.

34. Tsvetkova L. I. et al. Motility and fertilizing capacity of fresh and frozen-thawed spermatozoa in sturgeons Acipenser baeri and A. ruthenus // J. Appl. Ichthyol. — 1996. — V. 12. — P. 107–112.

Искусственное оплодотворение в осетроводстве подразумевает определенные стандарты качества используемой спермы, обеспечивающие достаточный производственный выход [4]. Наиболее популярна оценка качества спермы по пятибалльной шкале Персова, учитывающей цветность (приблизительная оценка концентрации), консистенцию и подвижность [7]. Вместе с тем, важнейшими показателями качества спермы являются способность к активации, дающая необходимую концентрацию подвижных сперматозоидов в момент оплодотворения — «фертильный титр», а также время сохранения сперматозоидами подвижности. Эти показатели определяются в дополнительных лабораторных исследованиях и дают более адекватную оценку фертильного потенциала спермы [2]. Тем не менее, руководства по осетроводству не рекомендуют использовать сперму с концентрацией менее 1 млрд/мл и подвижностью после активации менее 75% [3, 4, 11, 28]. Показатели качества дефростированной спермы заведомо снижены по сравнению со свежей, поэтому технологии криоконсервации спермы не используются рутинно в производстве и по-прежнему остаются главным образом экспериментальными.

В нашем обзоре рассмотрены технологии криоконсервации спермы осетровых рыб, включая новые, описанные в литературе последних 5 лет (2010–2015 гг.), с целью выявить наиболее эффективные на сегодняшний день традиционные, а также новые перспективные методики. Более ранние работы приведены в качестве первоисточников для обоснования выбора тех или иных подходов. Мы также не рассматриваем применение различных добавок (антибиотиков, антиоксидантов, витаминов и пр.) и технологических ухищрений (например, электростимуляции [10]), повышающих выживаемость сперматозоидов при использовании базовых методик.

Криоконсервация биологических объектов предполагает определенный состав консервирующего раствора и режимы замораживания и размораживания. В отечественных работах по криоконсервации спермы рыб консервирующий раствор обычно называют криозащитной средой. Криозащитная среда представляет собой раствор криопротектора в разбавителе. Готовую криозащитную среду перед замораживанием смешивают со спермой в определенном соотношении, обычно 1:1. Под криопротектором подразумевают проникающие через клеточную мембрану криопротекторы, такие как глицерин, этиленгликоль, диметилсульфоксид (ДМСО), метанол, диметилацетамид и др., в то время как непроникающие криопротекторы (чаще всего это сахароза, в некоторых случаях — глюкоза [27] и маннитол [9]) входят в состав разбавителя. Horvath и соавт. [25] указывают, что разбавитель должен быть изоосмотическим по отношению к семенной плазме. В настоящее время наиболее часто используют разбавитель Цветковой (таблица) и реже — среду Штайна.

Для Цитирования:
Д. А. Исаев, Р. А. Шафеи, Криоконсервация спермы осетровых рыб: текущее состояние и перспективы. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2016;5.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: