По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.3 DOI:10.33920/sel-09-2210-04

Характеристика репродуктивной активности впервые созревших производителей австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) и их потомства первой генерации, полученного в индустриальных условиях

Бибигуль Махаббатовна Анкешева специалист группы искусственного воспроизводства, Волжско-Каспийский филиал ФГБНУ «ВНИРО» (КаспНИРХ), 414056, Россия, г. Астрахань, ул. Савушкина, д. 1, Е-mail: kurkembaevab@mail.ru, ORCID: 0000-0001-7854-3820
Ирина Николаевна Бедрицкая канд. биол. наук, ведущий специалист сектора товарной аквакультуры, Волжско-Каспийский филиал ФГБНУ «ВНИРО» (КаспНИРХ), 414056, Россия, г. Астрахань, ул. Савушкина, д. 1, Е-mail: bin-68@yandex.ru, ORCID: 0000-0002-4734-9918
Ольга Викторовна Пятикопова канд. биол. наук, заведующий сектором товарной аквакультуры, Волжско-Каспийский филиал ФГБНУ «ВНИРО» (КаспНИРХ), 414056, Россия, г. Астрахань, ул. Савушкина, д. 1, Е-mail: piatikopova.olga@yandex.ru, ORCID: 0000-0003-4974-6623
Ралина Расимовна Тангатарова специалист группы искусственного воспроизводства, Волжско-Каспийский филиал ФГБНУ «ВНИРО» (КаспНИРХ), 414056, Россия, г. Астрахань, ул. Савушкина, д. 1, Е-mail: ralina.batalova@bk.ru, ORCID: 0000-0002-0066-4101

Культивирование объектов аквакультуры в контролируемых условиях состоит из нескольких этапов: формирование маточного стада, получение потомства, выращивание товарной продукции. Продолжительность каждого этапа зависит от биологических особенностей того или иного объекта аквакультуры и факторов среды. В аквакультуре тропических видов, как правило, используются установки с замкнутым циклом водоснабжения, что дает возможность круглогодично создавать условия для их содержания в зависимости от поставленных задач [2]. При этом организация необходимых оптимальных температурного и гидрохимического режимов, режима кормления на каждом технологическом этапе позволяет контролировать, воздействовать и регулировать жизненные функции гидробионтов, особенно продолжительность репродуктивного цикла. Воспроизводству объектов уделяется особое внимание. Изучение биолого-технологических особенностей и создание технологии воспроизводства и получения потомства австралийского красноклешневого рака в индустриальных условиях — вопрос достаточно актуальный. Целью данной работы было изучить ремонтно-маточные группы раков, их репродуктивную активность, а также некоторые особенности получения и подращивания молоди австралийского красноклешневого рака в условиях УЗВ. Научно-исследовательскую работу осуществляли на базе научно-экспериментального комплекса аквакультуры «БИОС» Волжско-Каспийского филиала ФГБНУ «ВНИРО» («КаспНИРХ»). Были изучены температурные условия содержания производителей раков, получения, подращивания и выращивания молоди раков в УЗВ и осуществлен контроль их биологических показателей. В ходе исследования определяли возраст производителей, впервые проявивших репродуктивную активность и выход личинок с самки, а также размерно-массовые показатели ремонтно-маточных групп и подращенной молоди (масса тела, длина тела, абсолютный прирост и т.д.).

Литература:

1. Анкешева, Б.М. Формирование ремонтно-маточного стада австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) в индустриальной аквакультуре / Б.М. Анкешева, Р.Р. Тангатарова, О.В. Пятикопова // Известия ТИНРО. — 2021. — Т. 201. — Вып. 4. — С. 948–959. — DOI: 10.26428/1606-9919-2021-201-948-959.

2. Арыстангалиева, В.А. Отработка технологии выращивания молоди австралийского красноклешневого рака в циркуляционной установке / В.А. Арыстангалиева, А.В. Жигин // Роль молодых ученых в решении актуальных задач АПК: сборник научных трудов межд. науч.практ. конференции молодых ученых. — СПб. — Пушкин: СПбГАУ, 2017. — С. 113–116.

3. Борисов, Р.Р. Биология, воспроизводство и культивирование речных раков / Р.Р. Борисов, Н.П. Ковачева, Е.С. Чертопруд. — М.: Изд-во ВНИРО, 2011. — 96 с.

4. Борисов, Р.Р. Биология и культивирование австралийского красноклешневого рака Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1868) / Р.Р. Борисов, Н.П. Ковачева, М.Ю. Акимова, А.В. ПаршинЧудин. — М.: Изд-во ВНИРО, 2013. — 48 с.

5. Купинский, С.Б. Радужная форель — предварительные параметры стандартной модели массонакопления / С.В. Купинский, С.А. Баранов, В.Ф. Резников // Индустриальное рыбоводство в замкнутых системах: сб. науч. тр. ВНИИПРХ. — 1986. — Вып. 46. — С. 109–115.

6. Купинский, С.Б. Продукционные возможности рыбохозяйственных водоемов и объектов рыбоводства / С.Б. Купинский. — СПб.: Лань, 2019. — 232 с.

7. Патент № 2525334 РФ, МПК А 01 К 61/00 (2006.01). Способ непрерывного разведения тропических раков. № 2012148106/13. Заявл. 12.11.2012. Опубл. 20.05.2014 / А.И. Хорошко, В.Н. Крючков: Общество с ограниченной ответственностью «Эко-тропик» (RU). — Бюлл. 2012. — № 14. — С. 7.

8. ПНД Ф 14.1:2:3:4.121-97. Количественный химический анализ вод. МВИ pH в водах потенциометрическим методом. Федеральный научно-методический центр анализа и мониторинга окружающей среды МПР России. — М.: ФГУ «ФЦАМ», 2016. — 18 с.

9. ПНД Ф 14.1:2:3.1-95. Методика измерений массовой концентрации ионов аммония в природных и сточных водах фотометрическим методом с реактивом Несслера. — М., 2017. — 24 с.

10. Пономарев, С.В. Технологии выращивания и кормления объектов аквакультуры юга России / С.В. Пономарев, Е.А. Гамыгин, С.И. Никоноров, Е.Н. Пономарева, Ю.Н. Грозеску, А.А. Бахарева. — Астрахань: Нова плюс, 2002. — 264 с.

11. Резников, В.Ф. Стандартная модель массонакопления рыбы / В.Ф. Резников, С.А. Баранов, Е.А. Стариков, Г.И. Толчинский // Механизация и автоматизация рыбоводства и рыболовства во внутренних водоемах: сб. науч. тр. ВНИИПРХ. — 1978. — Вып. 77. — С. 12–14.

12. РД 52.24.496-2018. Методика измерений температуры, прозрачности и определения запаха воды. — Ростов-на-Дону: ФГБУ «Гидрохимический институт», 2018. — 14 с.

13. РД 52.24.419-2019. Массовая концентрация растворенного кислорода в водах. Методика выполнения измерений йодометрическим методом. — Ростов-на-Дону: Федеральная служба России по гидрометеорологии и мониторингу окружающей среды, 2004. — 34 с.

14. РД 52.24.381-2017. Массовая концентрация нитритов в водах. Методика выполнения измерений фотометрическим методом с реактивом Грисса. — Ростов-на-Дону: ФГБУ «Гидрохимический институт», 2017. — 25 с.

15. РД 52.24.380-2017. Массовая концентрация нитратов в водах. Методика выполнения измерений фотометрическим методом с реактивом Грисса после восстановления в кадмиевом редукторе. — Ростов-на-Дону: ФГБУ «Гидрохимический институт», 2017. — 34 с.

16. Сыздыкова, К.Н. Опыт воспроизводства австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) в установке замкнутого водоснабжения / К.Н. Сыздыкова, С.Е. Мусин, Ж.Б. Куанчалеев, А.Д. Мусина // Путь науки. — 2021. — № 10 (92). — С. 25–30.

17. Castell, J.D. Report of the EIFAC, IUNS and ICES Working Group on the standardization of the methodology in fish nutrition research / J.D. Castell, K. Tiews // Hamburg (Federal Republic of Germany, March 21–23, 1979). EIFAC Tech. — pap. 36. — 1979. — P. 1–24.

18. Meade, M.E. Effects of temperature and salinity on weight gain, oxygen consumption rate, and growth efficiency in juvenile red-claw crayfish Cherax quadricarinatus / M.E. Meade, J.E. Doeller, D.W. Kraus, S.A. Walls // Journal of the World Aquaculture Society. — 2002. — Vol. 33, № 2. — P. 188–198. — DOI: 10.1111/j.1749-7345.2002.tb00494.x.

19. Xiaoxuan, C. Effects of water temperature on ingestion and growyh of Cherax quadricarinatus / C. Xiaoxuan, W. Zhixin, H. Liaci // Journal of Huazhong (Central China) Agricultural University. — 1995. — Vol. 14 (5). — P. 477–480.

20. Westin, L. The Proportion of mature females of the Noble crayfish A. astacus under Natural and culture conditions / L. Westin, R. Gydemo // Reproduction and Growth in the Noble Grayfish. — Stockholm, 1989. — 12 p.

1. Ankesheva, B.M., Tangatarova, R.R., Pyatikopova, O.V. Growing of replacement broodstock for australian red-claw crayfish (Cherax quadricarinatus) in industrial aquaculture. Izvestija TINRO, 2021, vol. 201, is. 4, pp. 948–959. DOI: 10.26428/1606-9919-2021-201-948-959 (in Russian).

2. Arystangalieva, V.A., Zhigin, A.V. Otrabotka tehnologii vyrashhivanija molodi avstralijskogo krasnokleshnevogo raka v cirkuljacionnoj ustanovke [Development of technology for growing young Australian red-lobed crayfish in a circulation unit]. In: Sbornik nauchnyh trudov mezhd. nauch.-prakt. konferencii molodyh uchenyh: Rol’ molodyh uchenyh v reshenii aktual’nyh zadach APK [Collection of scientific papers of the international scientific.-practical conferences of young scientists: The role of young scientists in solving urgent problems of the agro-industrial complex]. SPbGAU, St. Petersburg — Pushkin, 2017, pp. 113–116 (in Russian).

3. Borisov, R.R., Kovacheva, N.P., Chertoprud, E.S. Biologija, vosproizvodstvo i kul’tivirovanie rechnyh rakov [Biology, reproduction and cultivation of river crayfish]. VNIRO Publishing House, Moscow, 2011. 96 p. (in Russian).

4. Borisov, R.R., Kovacheva, N.P., Akimova, M.Yu., Parshin-Chudin, A.V. Biologiya I kul’tivirovaniye avstraliyskogo krasnokleshnevogo raka Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) [Biology and cultivation of the Australian red-lobed cancer Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868)]. VNIRO Publishing House, Moscow, 2013. 48 p. (in Russian).

5. Kupinskij, S.V. Baranov, S.A., Reznikov, V.F. Raduzhnaya forel’ — predvaritel’nye parametry standartnoj modeli massonakopleniya [Rainbow trout-preliminary parameters of the standard mass accumulation model]. In: Industrial’noe rybovodstvo v zamknutyh sistemah: sb. nauch. tr. VNIIPRH [Industrial fish farming in closed systems: collection of scientific works. Tr. VNIIPRKH], 1986, is. 46, pp. 109–115 (in Russian).

6. Kupinskij, S.B. Produkcionnye vozmozhnosti rybohozyajstvennyh vodoemov i ob”ektov rybovodstva [Production capabilities of fishery reservoirs and fish farming facilities]. Lan’, Sankt-Petersburg, 2019. 232 p. (in Russian).

7. Khoroshko, A.I., Kryuchkov, V.N. Sposob nepreryvnogo razvedenija tropicheskih rakov [Method of continuous breeding of tropical crayfish]. Russian Federation patent no. 2525334. 2012 (in Russia).

8. PND F 14.1:2:3:4.121-97. Kolichestvennyy khimicheskiy analiz vod. Metodika vypolneniya izmereniy pH v vodakh potentsiometricheskim metodom [PND F 14.1:2:3:4.121-97. Quantitative chemical analysis of waters. Measurement procedure pH in waters by the potentiometric method]. Federal’nyy tsentr analiza i otsenki tekhnogennogo vozdeystviya, Moscow, 2016. 18 p. (in Russia).

9. PND F 14.1:2:3.1-95. Kolichestvennyy khimicheskiy analiz vod. Metodika izmereniy massovoy kontsentratsii ionov ammoniya v prirodnykh i stochnykh vodakh fotometricheskim metodom s reaktivom Nesslera [PND F 14.1:2:3.1-95. Quantitative chemical analysis of waters. Method of measuring the mass concentration of ammonium ions in natural and wastewater by photometric method with Nessler reagent]. Federal’nyy tsentr analiza i otsenki tekhnogennogo vozdeystviya, Moscow, 2017. 24 p. (in Russia).

10. Ponomarev, S.V., Gamygin, E.A., Nikonorov, S.I., Ponomareva, E.N., Grozescu, Yu.N., Bakhareva, A.A. Tehnologii vyrashhivanija i kormlenija ob’ektov akvakul’tury juga Rossii [Technologies of cultivation and feeding of aquaculture objects of the South of Russia]. Nova pljus, Astrakhan, 2002. 264 p. (in Russian).

11. Reznikov, V.F., Baranov, S.A., Starikov, E.A., Tolchinskij, G.I. Standartnaya model’ massonakopleniya ryby [Standard model of fish mass accumulation]. In: Mekhanizaciya i avtomatizaciya rybovodstva i rybolovstva vo vnutrennih vodoemah: sb. nauch. tr. VNIIPRH [Mechanization and automation of aquaculture and fisheries in inland waters: collection of scientific works VNIIPRH], 1978, is. 77, pp. 12–14 (in Russian).

12. RD 52.24.496-2018. Metodika izmereniy temperatury, prozrachnosti i opredeleniya zapakha vody [RD 52.24.496-2018. Method of measuring temperature, transparency and determination of the smell of water]. Gidrokhimicheskiy institut, Rostov-na-Donu, 2018. 14 p. (in Russian).

13. RD 52.24.419-2019. Massovaya kontsentratsiya rastvorennogo kisloroda v vodakh. Metodika vypolneniya izmereniy yodometricheskim metodom [RD 52.24.419-2005. Mass concentration of dissolved oxygen in water. The method of performing measurements by the iodometric method]. Federal’naya sluzhba Rossii po gidrometeorologii i monitoringu okruzhayushchey sredy, Rostov-naDonu, 2004. 34 p. (in Russian).

14. RD 52.24.381-2017. Massovaya kontsentratsiya nitritnogo azota v vodakh. Metodika izmereniy fotometricheskim metodom s reaktivom Grissa [RD 52.24.381-2017. Mass concentration of nitrites in waters. The method of performing measurements by the photometric method with the Griss reagent]. Gidrokhimicheskiy institut, Rostov-na-Donu, 2017. 25 p. (in Russian).

15. RD 52.24.380-2017. Massovaya kontsentratsiya nitratnogo azota v vodakh. Metodika izmereniy fotometricheskim metodom s reaktivom Grissa posle vosstanovleniya v kadmiyevom reduktore [RD 52.24.380-2017. Mass concentration of nitrate nitrogen in waters. Measurement technique by photometric method with Griss reagent after reduction in a cadmium reducer]. Gidrokhimicheskiy institut, Rostov-na-Donu, 2017. 34 p. (in Russian).

16. Syzdykova, K.N., Musin, S.E., Kuanchaleev, Zh.B., Musina, A.D. Opyt vosproizvodstva avstralijskogo krasnokleshnevogo raka (Cherax quadricarinatus) v ustanovke zamknutogo vodosnabzhenija [The experience of reproduction of the Australian red-lobed cancer (Cherax quadricarinatus) in the installation of a closed water supply]. Put’ nauki, 2021, no. 92, pp. 25–30 (in Russian).

17. Castell, J.D., Tiews, K. Report of the EIFAC, IUNS and ICES Working Group on the standardization of the methodology in fish nutrition research, Hamburg (Federal Republic of Germany, March 21–23, 1979). EIFAC Tech, 1979, pap. 36, pp. 1–24.

18. Meade, M.E., Doeller, J.E., Kraus, D.W., Walls, S.A. Effects of temperature and salinity on weight gain, oxygen consumption rate, and growth efficiency in juvenile red-claw crayfish Cherax quadricarinatus. Journal of the World Aquaculture Society, 2002, vol. 33, no. 2, pp. 188–198. DOI: 10.1111/j.17497345.2002.tb00494.x.

19. Xiaoxuan, C., Zhixin, W., Licai, H. Effects of water temperature on ingestion and growth of Cherax quadricarinatus. J. Huazhong (Central China) Agricultural University, 1995, vol. 14 (5), pp. 477–480.

20. Westin, L., Gydemo, R. The Proportion of mature females of the Noble crayfish A. astacus under Natural and culture conditions. Stockholm, Reproduction and Growth in the Noble Grayfish, 1989. 12 p.

Культивирование объектов аквакультуры в контролируемых условиях состоит из нескольких этапов: формирование маточного стада, получение потомства, выращивание товарной продукции. Продолжительность каждого этапа зависит от биологических особенностей того или иного объекта аквакультуры и факторов среды. В аквакультуре тропических видов используются установки с замкнутым циклом водоснабжения (далее — УЗВ), что дает возможность круглогодично создавать условия для их содержания в зависимости от поставленных задач [2]. При этом организация необходимых оптимальных температурного и гидрохимического режимов, режима кормления на каждом технологическом этапе позволяет контролировать, воздействовать и регулировать жизненные функции гидробионтов, особенно репродуктивный цикл. Воспроизводству объектов уделяется особое внимание.

Шведские ученые L. Westin, R. Gydemo [20], изучая процессы спаривания широкопалых раков (Astacus astacus) в аквариумах с плотностью посадки производителей 63–75 шт./м2, отмечают, что в искусственных условиях достигается 100%-ное спаривание, в естественных — нет. В целом процесс спаривания зависит от температуры воды, времени линьки самки и наличия пищи [20].

В исследованиях К.Н. Сыздыкова и др. [16] для стимулирования одновременного получения потомства самцов и самок австралийского рака разделяли на 7–10 дней при температуре 17–18 °С с освещенностью 10/14 часов (день/ночь). При создании условий для размножения температура воды составляла 28 °С, освещенность — 14/10 часов (день/ночь). Соотношение самцов и самок изменялось от 1:1 до 1:4 [16].

Способ непрерывного разведения тропических раков, содержащихся в индустриальных условиях, был предложен А.И. Хорошко и В.Н. Крючковым [7]. На протяжении всего годового цикла получали две-три генерации жизнестойкой молоди. Плотность посадки составляла не более четырех семейных групп на 1 м2. Сформированные семейные группы раков в ходе эксперимента не разделяли. Температура воды находилась в пределах 26–28 °С. При этом создавали световой режим «день-ночь» 14/10 часов в течение двух месяцев и 10/14 часов в течение одного месяца при четырехкратном повторении этого цикла в течение всего года. Кормление осуществляли ежедневно в вечернее время, используя натуральные корма животного или растительного происхождения поочередно. Количество внесения корма определялось интенсивностью потребления. Молодь, подросшую до 10–20 мг, отлавливали с периодичностью раз в неделю [7].

Для Цитирования:
Бибигуль Махаббатовна Анкешева, Ирина Николаевна Бедрицкая, Ольга Викторовна Пятикопова, Ралина Расимовна Тангатарова, Характеристика репродуктивной активности впервые созревших производителей австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) и их потомства первой генерации, полученного в индустриальных условиях. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2022;10.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: