По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 575.1 : 597.4 : 639.3.041.2 DOI:10.33920/sel-09-2306-04

Исследования рыбоводно-биологических и генетических показателей потомства севрюги (Acipenser stellatus Pallas, 1771), полученного с использованием нативной и криоконсервированной спермы

Екатерина Павловна Яковлева главный специалист научно-экспериментального комплекса аквакультуры «БИОС», Волжско-Каспийский филиал ФГБНУ «ВНИРО» (КаспНИРХ), 414056, Россия, г. Астрахань, ул. Савушкина, д. 1, E-mail: yakovleva_0912@mail.ru, ORCID: 0009-0005-4941-0785
Анна Александровна Бахарева заведующий кафедрой ихтиологии и рыбоводства факультета биотехнологий и рыбного хозяйства, ФГБОУ ВО «Московский государственный университет технологий и управления имени К.Г. Разумовского (ПКУ)» (109004, Россия, г. Москва, ул. Земляной Вал, д. 73), профессор кафедры «Водные биоресурсы и технологии» филиала ФГБОУ ВО «АГТУ» в Ташкентской области Республики Узбекистан (100164, Республика Узбекистан, Ташкентская область, Кибрайский район, ул. Университетская, д. 2), E-mail: bahareva.anya@yandex.ru, ORCID: 0000-0002-7724-2425
Екатерина Григорьевна Макарова канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярной генетики и физиологии, Волжско-Каспийский филиал ФГБНУ «ВНИРО» (КаспНИРХ), 414056, Россия, г. Астрахань, ул. Савушкина, д. 1, E-mail: for.alissa2015@yandex.ru, ORCID: 0000-0002-9272-3550
Наталья Викторовна Козлова канд. биол. наук, заведующий лабораторией молекулярной генетики и физиологии, Волжско-Каспийский филиал ФГБНУ «ВНИРО» (КаспНИРХ), 414056, Россия, г. Астрахань, ул. Савушкина, д. 1, E-mail: natali19_12@mail.ru, ORCID: 0000-0002-2840-9647
Ольга Борисовна Докина канд. хим. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории криобиологии, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ), 141821, Россия, Московская область, Дмитровский городской округ, п. Рыбное, д. 40a, E-mail: olgadokina@mail.ru, ORCID: 0009-0004-6968-1163
Константин Викторович Ковалев канд. с.-х. наук, заведующий лабораторией криобиологии, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ), 141821, Россия, Московская область, Дмитровский городской округ, п. Рыбное, E-mail: silur5@mail.ru, ORCID: 0000-0002-2837-8430

Представлены сравнительные результаты экспериментальной работы по изучению потомства севрюги, полученного с использованием криоконсервированной (опытной) и нативной (контрольной) спермы, проводимой на научно-экспериментальном комплексе аквакультуры «БИОС» Волжско-Каспийского филиала ФГБНУ «ВНИРО» (КаспНИРХ) (НЭКА «БИОС»). Проведены молекулярно-генетические исследования криоконсервированной спермы, самок и самцов из ремонтно-маточного стада комплекса. С целью подбора оптимальных родительских пар было рассчитано генетическое родство. Проведены выдерживание и выращивание исследуемых групп молоди севрюги до стандартной массы. Исследовано генетическое разнообразие молоди. В результате проведенной работы было установлено, что группа рыб, полученная с использованием криоконсервированной спермы, имела более высокие массовые показатели по сравнению с молодью контрольной группы, полученной от самцов из стада НЭКА «БИОС», в среднем на 16%. Кроме того, опытная группа обладала более высокой однородностью по отношению к контрольной группе, о чем свидетельствовали значения коэффициентов вариации. Выживаемость молоди опытной группы рыб была выше контрольной в среднем на 10%. Севрюга, полученная с использованием криоконсервированной спермы, характеризовалась более высокими значениями общего числа аллелей и отсутствием дефицита гетерозигот по сравнению с контрольной группой молоди, что особенно актуально для сохранения разнообразия этого ценного вида осетровых рыб. Результаты проведенной исследовательской работы помогут разработать предложения по формированию искусственно созданных ремонтно-маточных стад осетровых видов рыб за счет их пополнения молодью, полученной с использованием криоконсервированной спермы и обладающей более высокими рыбоводно-биологическими и генетическими показателями. Это позволит иметь в стаде запас рабочего материала от разных поколений осетровых видов рыб, что является перспективным фактором для сохранения водных биоресурсов и селекции в товарной аквакультуре.

Литература:

1. Баранникова, И.А. Проблема сохранения осетровых России в современный период / И.А. Баранникова, С.И. Никоноров, А.Н. Белоусов // Осетровые на рубеже XXI века: матер. междунар. конф. — Астрахань, 2000. — С. 7–8.

2. Барминцева, А.Е. Использование микросателлитных локусов для установления видовой принадлежности осетровых (Acipenseridae) и выявления особей гибридного происхождения / А.Е. Барминцева, Н.С. Мюге // Генетика. — 2013. — Т. 4 (9). — С. 1093–1105.

3. Докина, О.Б. Эффективные технологии криоконсервации спермы карповых и осетровых рыб / О.Б. Докина, К.В. Ковалев, Н.Д. Пронина, В.А. Миленко // Новейшие генетические технологии для аквакультуры: матер. всерос. науч.-практ. конф. с междунар. уч. — М.: Перо, 2020. — С. 119–134.

4. Ковалев, К.В. Об итогах и перспективах работы крупнейшего в России криобанка спермы рыб / К.В. Ковалев, О.Б. Докина, Н.Д. Пронина, В.А. Миленко // Новейшие генетические технологии для аквакультуры: матер. всерос. науч.-практ. конф. с междунар. уч. — М.: Перо, 2020. — С. 243–246.

5. Ковалев, К.В. Опыт применения криоконсервированной спермы в товарном рыбоводстве / К.В. Ковалев, Н.Д. Пронина, О.Б. Докина // Новейшие генетические технологии для аквакультуры: матер. всерос. науч.-практ. конф. с междунар. уч. — М.: Перо, 2020. — С. 81–91.

6. Козлова, Н.В. Современные подходы к сохранению генетического разнообразия осетровых рыб Волжско-Каспийского рыбохозяйственного бассейна / Н.В. Козлова, Е.Г. Макарова, М.А. Барегамян, А.В. Мирзоян // Генетика — фундаментальная основа инноваций в медицине и селекции: матер. VIII науч.-практ. конф. с междунар. уч. — Таганрог: ЮФУ, 2019. — С. 222–224.

7. Методика генотипирования производителей и молоди осетровых видов рыб с целью проведения генетического мониторинга искусственного воспроизводства. — М.: ВНИРО, 2012. — 28 с.

8. Методические рекомендации. Методики молекулярно-генетического анализа водных биоресурсов и объектов аквакультуры, а также продукции из них. — М.: ВНИРО, 2015. — № 4.2.001. — 23 с.

9. Правдин, И.Ф. Руководство по изучению рыб / И.Ф. Правдин. — М.: Пищевая промышленность, 1966. — 379 с.

10. Чебанов, М.С. Руководство по искусственному воспроизводству осетровых рыб. Технические доклады ФАО по рыбному хозяйству и аквакультуре. № 558 / М.С. Чебанов, Е.В. Галич. — Анкара: ФАО, 2011. — 297 с. — https://www.fao.org/3/i2144r/i2144r.pdf.

11. Чебанов, М.С. Руководство по разведению и выращиванию осетровых рыб / М.С. Чебанов, Е.В. Галич, Ю.Н. Чмырь. — М.: Росинформагротех, 2004. — 148 с.

12. Ivanova, N.V. An inexpensive, automation friendly protocol for recovering high quality DNA / N.V. Ivanova, J. deWaard, P.D.N. Hebert // Mol. Ecology Notes. — 2006. — Vol. 6. — P. 998–1002.

13. Peakall, R. GENALEX 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research / R. Peakall, P.E. Smouse // Mol. Ecology Notes. — 2006. — Vol. 6. — P. 288–295.

1. Barannikova, I.A., Nikonorov, S.I., Belousov, A.N. Problema sohraneniya osetrovyh Rossii v sovremennyj period [The problem of sturgeon conservation in Russia in the modern period]. In: Osetrovye na rubezhe XXI veka: mater. mezhdunar. konf. [Sturgeons at the turn of the XXI]. Astrahkan, 2000, pp. 7–8 (in Russian).

2. Barmintseva, A.E., Mugue, N.S. The Use of Microsatellite Loci for Identification of Sturgeon Species (Acipenseridae) and Hybrid Forms. Russian Journal of Genetics, 2013, vol. 49, no. 9, pp. 950–961 (in Russian). DOI: 10.7868/S0016675813090038.

3. Dokina, O.B., Kovalev, K.V., Pronina, N.D., Milenko, V.A. Effektivnye tekhnologii kriokonservacii spermy karpovyh i osetrovyh ryb [Effective technologies for cryopreservation of cyprinid and sturgeon sperm]. In: Novejshie geneticheskie tekhnologii dlya akvakul’tury: mater. vseross. nauch.-prakt. konf. s mezhdunar. uch. [Latest genetic technologies for aquaculture]. Pero, Moscow, 2020, pp. 119–134 (in Russian).

4. Kovalev, K.V., Dokina, O.B., Pronina, N.D., Milenko, V.A. Ob itogah i perspektivah raboty krupnejshego v Rossii kriobanka spermy ryb [On the results and perspectives of the operation of the largest fish sperm cryobank in Russia]. In: Novejshie geneticheskie tekhnologii dlya akvakul’tury: mater. vseross. nauch.-prakt. konf. s mezhdunar. uch. [Latest genetic technologies for aquaculture]. Pero, Moscow, 2020, pp. 243–246 (in Russian).

5. Kovalеv, K.V., Pronina, N.D., Dokina, O.B. Opyt primeneniya krikonservirovannoj spermy v tovarnom rybovodstve [Experience in the use of cryopreserved sperm in commercial fish farming]. In: Novejshie geneticheskie tekhnologii dlya akvakul’tury: mater. vseross. nauch.prakt. konf. s mezhdunar. uch. [Latest genetic technologies for aquaculture]. Pero, Moscow, 2020, pp. 81–91 (in Russian).

6. Kozlova, N.V., Makarova, E.G., Baregamjan, M.A., Mirzojan, A.V. Sovremennye podhody k sohraneniju geneticheskogo raznoobrazija osetrovyh ryb Volzhsko-Kaspijskogo rybohozjajstvennogo bassejna [Modern approaches to the conservation of the genetic diversity of sturgeon fish of the Volga-Caspian Fishery Basin]. In: Genetika — fundamental’naja osnova innovacij v medicine i selekcii: mater. VIII nauchn.-praktich. konf. s mezhdunar. uch. [Genetics is the fundamental basis of innovations in medicine and breeding]. SFU, Taganrog, 2019, pp. 222–224 (in Russian).

7. Metodika genotipirovanija proizvoditelej i molodi osetrovyh vidov ryb s cel’ju provedenija geneticheskogo monitoringa iskusstvennogo vosproizvodstva. VNIRO, Moscow, 2012. 28 p. (in Russian).

8. Metodicheskie rekomendacii 4.2.001-2015. Metodiki molekuljarno-geneticheskogo analiza vodnyh bioresursov i ob’ektov akvakul’tury, a takzhe produkcii iz nih. VNIRO, Moscow, 2015. 23 p. (in Russian).

9. Pravdin, I.F. Rukovodstvo po izucheniiu ryb [Instructions to fish studying]. Pishchevaia promyshlennost’, Moscow, 1966. 374 p. (in Russian).

10. Chebanov, M.S., Galich, E.V. Sturgeon hatchery manual. FAO Fisheries and Aquaculture Technical Paper. No. 558. Ankara, FAO, 2011. 303 p.

11. Chebanov, M.S., Galich, E.V., Chmyr’, Yu.N. Rukovodstvo po razvedeniyu i vyrashchivaniyu osetrovyh ryb [Instructions for the breeding and cultivation of sturgeon fish]. Rosinformagrotekh, Moscow, 2004. 148 p. (in Russian).

12. Ivanova, N.V., deWaard, J., Hebert, P.D.N. An inexpensive, automation friendly protocol for recovering high quality DNA. Mol. Ecology Notes, 2006, vol. 6, pp. 998–1002.

13. Peakall, R., Smouse, P.E. GENALEX 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research. Mol. Ecology Notes, 2006, vol. 6, pp. 288–295.

В настоящее время пополнение естественных популяций осетровых рыб, а также их товарное выращивание осуществляются за счет эксплуатации созданных на рыбоводных предприятиях маточных стад. В связи с объявленным Российской Федерацией и прикаспийскими государствами мораторием на лов осетровых видов рыб в Волжско-Каспийском рыбохозяйственном бассейне (белуги с 2000 года, осетра и севрюги с 2005 года) заготовка производителей для целей воспроизводства не производится. В связи с этим генетический ресурс существующих маточных стад истощается, а потомство, полученное в результате близкородственного скрещивания, менее жизнеспособно и продуктивно.

Использование криоконсервированной спермы осетровых видов рыб искусственной генерации других поколений (1980-х, 1990-х годов и др.) либо особей, заготовленных в период благополучного состояния естественной популяции, для оплодотворения икры позволит сохранить генофонд редких и исчезающих видов [1; 4; 6]. Особое значение в сохранении генетического разнообразия осетровых имеет севрюга, естественная популяция которой находится в критическом состоянии — на грани исчезновения.

Цель работы: изучение оплодотворяющей способности криоконсервированной и нативной спермы севрюги; изучение рыбоводно-биологических показателей и генетического разнообразия молоди севрюги, полученной с использованием криоконсервированной спермы при выращивании в индустриальных условиях.

До начала эксперимента были проведены молекулярно-генетические исследования. Фрагменты плавников производителей севрюги были отобраны прижизненно на НЭКА «БИОС» в соответствии МР 4.2.001-2015 [8]. Образцы криоконсервированной спермы были отобраны из коллекции низкотемпературного генетического банка филиала по пресноводному рыбному хозяйству ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Все генетические пробы были зафиксированы в 95%-ном этаноле. Выделение и последующую очистку тотальной ДНК проводили на адсорбционных колонках [12]. Препараты ДНК использовали для микросателлитного анализа. Амплификация ДНК, выделенной из образцов, осуществлялась в термоциклерах Thermo Cycler С-1000, S-1000 (Bio-Rad, USA). Образцы ядерной ДНК проанализированы по пяти микросателлитным локусам An20, Afug41, Afug51, AoxD165, AoxD161 с флуоресцентными метками, условия проведения ПЦР оптимизированы для осетровых видов рыб [2]. Амплифицированные продукты подвергали электрофоретическому разделению с помощью системы капиллярного электрофореза ABI-3500 Genetic Аnalyzer (Applied Biosystems, USA), идентифицируя длины фрагментов ДНК в компьютерной программе GeneMapper 4.1. Для самок и образцов криоконсервированной спермы севрюги были рассчитаны коэффициенты генетического родства [7], с учетом которых осуществлялась комплектация родительских пар. Для оценки генетического разнообразия молоди севрюги определяли количество аллелей и их частоты, наблюдаемую и ожидаемую гетерозиготность, используя специализированный макрос GenAlEx 6.41 для MS Excel [13].

Для Цитирования:
Екатерина Павловна Яковлева, Анна Александровна Бахарева, Екатерина Григорьевна Макарова, Наталья Викторовна Козлова, Ольга Борисовна Докина, Константин Викторович Ковалев, Исследования рыбоводно-биологических и генетических показателей потомства севрюги (Acipenser stellatus Pallas, 1771), полученного с использованием нативной и криоконсервированной спермы. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2023;6.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: