По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 616.24–002.5–083.2 DOI:10.33920/MED-12-2108-07

Иммунитет, микробиота и пробиотики при вирусных инфекциях

Розенсон Рафаил Иосифович НАО «Медицинский университет Астана», Республика Казахстан, г. Нур-Султан, ул. Бейбитшилик, 49 а, профессор кафедры детских болезней № 1, д.м.н, врач педиатр высшей категории, врач аллерголог-иммунолог высшей категории, Ozensonrafail@yandex.ru

Изучение роли микробиоты в реализации противовирусных механизмов является актуальным вопросом в настоящее время, особенно в связи с коронавирусной пандемией. Известно, что микробиота нарушает жизненный цикл вирусов в клетках организма на разных его этапах, а также стимулирует врожденный и специфический иммунный ответ. Такие факторы, как родоразрешение кесаревым сечением, искусственное вскармливание ребенка, раннее применение антибактериальных средств, возрастные изменения, приводят к развитию дисбиотических процессов, что повышает восприимчивость организма к вирусным инфекциям. Однако положительную роль играет применение пробиотиков при различных вирусных инфекциях, включая ВИЧ, ВПЧ-инфекцию, вирусные гепатиты, респираторные инфекции и ряд других заболеваний.

Литература:

1. Li, N., Ma, W. T., Pang, M., Fan, Q. L., and Hua, J. L. (2019). The commensal microbiota and viral infection: A comprehensive review. Front. Immunol. 10, 1551. doi: 10.3389/fimmu.2019.01551

2. Yasmine Belkaid and Oliver J. Harrison. Homeostatic Immunity and the Microbiota. Immunity. 2017 Apr 18;46 (4):562–576. doi: 10.1016/j.immuni.2017.04.008.

3. Schroeder et al. Schroeder, B. O. (2019). Fight them or feed them: How the intestinal mucus layer manages the gut microbiota. Gastroenterol. Rep. 7, 3–12. doi: 10.1093/gastro/ goy052

4. Lieleg et al. Lieleg, O., Lieleg, C., Bloom, J., Buck, C. B., and Ribbeck, K. (2012). Mucin biopolymers as broadspectrum antiviral agents. Biomacromolecules 13, 1724–1732. doi: 10.1021/bm3001292

5. Gonzalez-Ochoa, G., Flores-Mendoza, L. K., Icedo-Garcia, R., Gomez-Flores, R., and Tamez-Guerra, P. (2017). Modulation of rotavirus severe gastroenteritis by the combination of probiotics and prebiotics. Arch. Microbiol. doi: 10.1007/ s00203-017-1400-3

6. Tabata, T., Petitt, M., Puerta-Guardo, H., Michlmayr, D., Wang, C., Fang-Hoover, J., et al. (2016). Zika Virus Targets Different Primary Human Placental Cells, Suggesting Two Routes for Vertical Transmission. Cell Host Microbe 20, 155–166. doi: 10.1016/j.chom.2016.07.002

7. Botić et al. Botić, T., Klingberg, T. D́., Weingartl, H., and Cencič, A. (2007). A novel eukaryotic cell culture model to study antiviral activity of potential probiotic bacteria. Int.J. Food Microbiol. 115, 227–234. doi: 10.1016/j. ijfoodmicro.2006.10.044

8. Su, Y., Zhang, B., and Su, L. (2013). CD4 detected from Lactobacillus helps understand the interaction between Lactobacillus and HIV. Microbiol. Res. 168, 273–277. doi: 10.1016/j.micres.2012.12.004

9. Serkedjieva, J., Danova, S., and Ivanova, I. (2000). Antiinfluenza virus activity of a bacteriocin produced by Lactobacillus delbrueckii. Appl. Biochem. Biotechnol. 88, 285–298. doi: 10.1385/ABAB:88:1–3:285.

10. Torres, N. I., Noll, K. S., Xu, S., Li, J., Huang, Q., Sinko, P. J., et al. (2013). Safety, Formulation and In Vitro Antiviral Activity of the Antimicrobial Peptide Subtilosin Against Herpes Simplex Virus Type 1. Probiotics Antimicrob. Proteins 5, 26–35. doi: 10.1007/s12602-012-9123-x

11. Quintana, V. M., Torres, N. I., Wachsman, M. B., Sinko, P. J., Castilla, V., and Chikindas, M. (2014). Antiherpes simplex virus type 2 activity of the antimicrobial peptide subtilosin. J. Appl. Microbiol. 117, 1253–1259. doi: 10.1111/jam.12618

12. Jounai et al. (2012). Spherical lactic acid bacteria activate plasmacytoid dendritic cells immunomodulatory function via tlr9-dependent crosstalk with myeloid dendritic cells. PLoS One 7 (4), e32588. doi: 10.1371/ journal.pone.0032588

13. Gui et al. (2020). Effects of probiotic supplementation on natural killer cell function in healthy elderly individuals: a meta-analysis of randomized controlled trials. Eur.J. Clin. Nutr. 74 (12), 1630 — l1637. doi: 10.1038/s41430-020-0670-z

14. Suprabhat Mukherjee et al. Gut microbes as future therapeutics in treating inflammatory and infectious diseases: Lessons from recent findings J Nutr Biochem. 2018 Nov; 61: 111–128.

15. Danping Zheng et al. Interaction between microbiota and immunity in health and disease. Cell Res. 2020 Jun; 30 (6): 492–506.

16. Philip P. Ahern et al. Understanding immune — microbiota interactions in the intestine. Immunology. 2020 Jan; 159 (1): 4–14.

17. Wang Y. et al. (2017). An LGG-derived protein promotes IgA production through upregulation of APRIL expression in intestinal epithelial cells. Mucosal Immunol. 10, 373–384. doi: 10.1038/mi.2016.57

18. De Vrese, M., Rautenberg, P., Laue, C., Koopmans, M., Herremans, T., and Schrezenmeir, J. (2005). Probiotic bacteria stimulate virus-specific neutralizing antibodies following a booster polio vaccination. Eur.J. Nutr. 44, 406–413. doi: 10.1007/s00394-004-0541-8

19. Petersen, C., and Round, J. L. (2014). Defining dysbiosis and its influence on host immunity and disease. Cell Microbiol. 16, 1024–1033. doi: 10.1111/cmi.12308

20. Borgdorff, H., Gautam, R., Armstrong, S. D., Xia, D., Ndayisaba, G. F., Van Teijlingen, N. H., et al. (2016). Cervicovaginal microbiome dysbiosis is associated with proteome changes related to alterations of the cervicovaginal mucosal barrier. Mucosal Immunol. 9, 621–633. doi: 10.1038/mi.2015.86

21. Levy, M., Kolodziejczyk, A. A., Thaiss, C. A., and Elinav, E. (2017). Dysbiosis and the immune system. Nat.Rev. Immunol. 17, 219–232. doi: 10.1038/nri.2017.7

22. Robertson, R. C., Manges, A. R., Finlay, B. B., and Prendergast, A. J. (2019). The Human Microbiome and Child Growth — First 1000 Days and Beyond. Trends Microbiol. 27, 131–147. doi: 10.1016/j.tim.2018.09.008

23. Christian Milani et al. The First Microbial Colonizers of the Human Gut: Composition, Activities, and Health Implications of the Infant Gut Microbiota. Microbiol Mol Biol Rev. 2017 Dec; 81 (4): e00036–17.

24. Lu Zhuang et al. Intestinal Microbiota in Early Life and Its Implications on Childhood Health. Genomics Proteomics Bioinformatics. 2019 Feb; 17 (1): 13–25.

25. Fiona Fouhy et al. Perinatal factors affect the gut microbiota up to four years after birth. Nat Commun. 2019; 10: 1517.

26. Tamburini S. et al. (2016). The microbiome in early life: Implications for health outcomes. Nat. Med. 22, 713–722. doi: 10.1038/nm.4142

27. Shao, Y. et al. (2019). Stunted microbiota and opportunistic pathogen colonization in caesarean-section birth. Nature 574, 117–121. doi: 10.1038/s41586-019-1560-1

28. Alessandra Coscia et al. When a Neonate Is Born, So Is a Microbiota. Life (Basel). 2021 Feb; 11 (2): 148.

29. Jakobsson, H. E., Abrahamsson, T. R., Jenmalm, M. C., Harris, K., Quince, C., Jernberg, C., et al. (2014). Decreased gut microbiota diversity, delayed Bacteroidetes colonisation and reduced Th1 responses in infants delivered by Caesarean section. Gut 63, 559–566. doi: 10.1136/gutjnl-2012–303249

30. Sevelsted et al. (2015). Cesarean section chronic immune disorders. Pediatrics 135, e92 — e98. doi: 10.1542/ peds.2014–0596

31. Juhn, Y. J. (2014). Risks for infection in patients with asthma (or other atopic conditions): Is asthma more than a chronic airway disease? J. Allergy Clin. Immunol. 134, 247–257. doi: 10.1016/j.jaci.2014.04.024

32. Li, L. et al. (2019). Probiotic Supplementation for Prevention of Atopic Dermatitis in Infants and Children: A Systematic Review and Meta-analysis. Am.J. Clin. Dermatol. 20, 367–377. doi: 10.1007/s40257-018-0404-3

33. Wei X. et al. (2020). Association between probiotic supplementation and asthma incidence in infants: a metaanalysis of randomized controlled trials. J. Asthma 57, 167–178. doi: 10.1080/ 02770903.2018.1561893

34. Erika Cortes-Macías et al. Maternal Diet Shapes the Breast Milk Microbiota Composition and Diversity: Impact of Mode of Delivery and Antibiotic Exposure. J Nutr. 2021 Feb; 151 (2): 330–340.

35. Emanuele Rinninella et al. What is the Healthy Gut Microbiota Composition? A Changing Ecosystem across Age, Environment, Diet, and Diseases. Microorganisms. 2019 Jan; 7 (1): 14

36. Jost, T. et al. (2015). Impact of human milk bacteria and oligosaccharides on neonatal gut microbiota establishment and gut health. Nutr. Rev. 73, 426–437. doi: 10.1093/nutrit/nuu016

37. Marcobal, A. et al. (2010). Consumption of human milk oligosaccharides by gut-related microbes. J. Agric. Food Chem. 58, 5334–5340. doi: 10.1021/jf9044205

38. Gaëlle Boudry et al. The Relationship Between Breast Milk Components and the Infant Gut Microbiota. Front Nutr. 2021; 8: 629740

39. Veronica Lazar et al. Aspects of Gut Microbiota and Immune System Interactions in Infectious Diseases, Immunopathology, and Cancer. Front Immunol. 2018; 9: 1830.

40. Al Kassaa et al. (2014). Antiviral Potential of Lactic Acid Bacteria and Their Bacteriocins. Probiotics Antimicrob. Proteins 6, 177–185. doi: 10.1007/s12602-014-9162-6

41. Yu, Z. T., Chen, C., and Newburg, D. S. (2013). Utilization of major fucosylated and sialylated human milk oligosaccharides by isolated human gut microbes. Glycobiology 23, 1281–1292. doi: 10.1093/glycob/cwt065

42. Sean P. Spencer et al. Pursuing human-relevant gut microbiota-immune interactions. Immunity. 2019 Aug 20; 51 (2): 225–239.

43. Abt, M. C., Osborne, L. C., Monticelli, L. A., Doering, T. A., Alenghat, T., Sonnenberg, G. F., et al. (2012). Commensal Bacteria Calibrate the Activation Threshold of Innate Antiviral Immunity. Immunity 37, 158–170. doi: 10.1016/j. immuni.2012.04.011

44. Gonzalez-Perez et al. (2016). Maternal Antibiotic Treatment Impacts Development of the Neonatal Intestinal Microbiome and Antiviral Immunity. J. Immunol. 196, 3768–3779. doi: 10.4049/jimmunol.1502322

45. Bradley et al. (2019). Microbiota-Driven Tonic Interferon Signals in Lung Stromal Cells Protect from Influenza Virus Infection. Cell Rep. 28 (1), 245–256.e4. doi: 10.1016/j.celrep.2019.05.105

46. Oh, J. E. et al. (2016). Dysbiosis-induced IL-33 contributes to impaired antiviral immunity in the genital mucosa. Proc. Natl. Acad.Sci. U. S. A. 113, E762 — E771. doi: 10.1073/ pnas.1518589113

47. Vasile Coman et al. Gut microbiota and old age: Modulating factors and interventions for healthy longevity. Exp Gerontol. 2020 Nov; 141: 111095.

48. Przemska-Kosicka et al. (2018). Age-related changes in the natural killer cell response to seasonal influenza vaccination are not influenced by a synbiotic: A randomised controlled trial. Front. Immunol. 8, 1–9. doi: 10.3389/fimmu.2018.00591

49. Bron, P. A. et al. (2017). Can probiotics modulate human disease by impacting intestinal barrier function? Br.J. Nutr. 117, 93–107. doi: 10.1017/ S0007114516004037

50. Rothhammer, V., and Quintana, F. J. (2019). The aryl hydrocarbon receptor: an environmental sensor integrating immune responses in health and disease. Nat.Rev. Immunol. 19, 184–197. doi: 10.1038/s41577-019-0125-8

51. Mangiola, F. et al. (2018). Gut microbiota and aging. Eur.Rev. Med. Pharmacol. Sci. 22 (21), 7404–7413. doi: 10.26355/eurrev_201811_16280

52. Andrea Ticinesi et al. Gut Microbiota, Muscle Mass and Function in Aging: A Focus on Physical Frailty and Sarcopenia. Nutrients. 2019 Jul; 11 (7): 1633.

53. Kim, S., and Jazwinski, S. M. (2018). The Gut Microbiota and Healthy Aging: A Mini-Review. Gerontology 64, 513–520. doi: 10.1159/000490615

54. Pinti, M. et al. (2016). Aging of the immune system: Focus on inflammation and vaccination. Eur.J. Immunol. 46, 2286–2301. doi: 10.1002/eji.201546178

55. Chiba et al. (2010). Well-controlled proinflammatory cytokine responses of Peyer’s patch cells to probiotic Lactobacillus casei. Immunology 130, 352–362. doi: 10.1111/j.1365–2567.2009.03204.x

56. Plaza-diaz, J. et al. (2013). Safety and Immunomodulatory Effects of Three Probiotic Strains Isolated from the Feces of Breast-Fed Infants in Healthy Adults: SETOPROB Study 8 (10), e78111. doi: 10.1371/journal. pone.0078111

57. Allen et al. (2010). Probiotics for treating acute infectious diarrhoea. Cochrane Database Syst. Rev. 2010 (11), CD003048. doi: 10.1002/14651858. CD003048.pub3

58. Rigo-Adrover, M. et al. (2017). A fermented milk concentrate and a combination of short-chain galacto-oligosaccharides/long-chain fructo-oligosaccharides/ pectin-derived acidic oligosaccharides protect suckling rats from rotavirus gastroenteritis. Br.J. Nutr. 117 (2), 209–217. doi: 10.1017/S0007114516004566

59. Vandenplas, Y. (2016). Probiotics and prebiotics in infectious gastroenteritis. Best Pract. Res. Clin. Gastroenterol. 30, 49–53. doi: 10.1016/j.bpg.2015.12.002

60. Szajewska, H. et al. (2020). Use of Probiotics for the Management of Acute Gastroenteritis in Children. An Update. J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. Publish Ah, 261–269. doi: 10.1097/ MPG.0000000000002751

61. Marchand, V. et al. (2012). Using probiotics in the paediatric population. Paediatr. Child Heal. 17, 575. doi: 10.1093/pch/17.10.575

62. Milosevic, I. et al. (2019). Gut-liver axis, gut microbiota, and its modulation in the management of liver diseases: A review of the literature. Int.J. Mol. Sci. 20, 1–16. doi: 10.3390/ijms20020395

63. Wang, Y. et al. (2019). Advances in Gut Microbiota of Viral Hepatitis Cirrhosis. BioMed. Res. Int. 2019, 9726786. doi: 10.1155/2019/ 9726786

64. Zeng, Y. et al. (2020). Gut microbiota dysbiosis in patients with hepatitis B virus — induced chronic liver disease covering chronic hepatitis, liver cirrhosis and hepatocellular carcinoma J. Viral Hepat. 27 (2), 143–155. doi: 10.1111/jvh.13216

65 Lee, D. K., Kang, J. Y., Shin, H. S., Park, I. H., and Ha, N. J. (2013). Antiviral activity of Bifidobacterium adolescentis SPM0212 against Hepatitis B virus. Arch. Pharm. Res. 36, 1525–1532. doi: 10.1007/s12272-013-0141-3

66. Soh, S. E. et al. (2010). Effect of probiotic supplementation in the first 6 months of life on specific antibody responses to infant Hepatitis B vaccination. Vaccine 28, 2577–2579. doi: 10.1016/j.vaccine.2010.01.020

67. Agrawal, A., Sharma, B. C., Sharma, P., and Sarin, S. K. (2012). Secondary prophylaxis of hepatic encephalopathy in cirrhosis: An open-label, randomized controlled trial of lactulose, probiotics, and no therapy. Am.J. Gastroenterol. 107, 1043–1050. doi: 10.1038/ajg.2012.113

68. Lunia, M. K. et al. (2014). Probiotics Prevent Hepatic Encephalopathy in Patients With Cirrhosis: A Randomized Controlled Trial. Clin. Gastroenterol. Hepatol. 12, 1003–1008.e1. doi: 10.1016/j.cgh.2013.11.006

69. Smith, S. B., and Ravel, J. (2017). The vaginal microbiota, host defence and reproductive physiology. J. Physiol. 595, 451–463. doi: 10.1113/JP271694

70. van de Wijgert, J.H. H. M., and Verwijs, M. C. (2020). Lactobacilli-containing vaginal probiotics to cure or prevent bacterial or fungal vaginal dysbiosis: a systematic review and recommendations for future trial designs. BJOG Int.J. Obstet. Gynaecol. 127, 287–299. doi: 10.1111/1471–0528.15870

71. Atashili et al. (2008). Bacterial vaginosis and HIV acquisition: A meta-analysis of published studies. AIDS 22, 1493–1501. doi: 10.1097/QAD.0b013e3283021a37

72. Klatt, N. R. et al. (2017). Vaginal bacteria modify HIV tenofovir microbicide efficacy in African women. Science (80-) 356, 938–945. doi: 10.1126/science.aai9383

73. Verhoeven et al. (2013). Probiotics enhance the clearance of human papillomavirus- related cervical lesions: A prospective controlled pilot study. Eur.J. Cancer Prev. 22, 46–51. doi: 10.1097/CEJ.0b013e328355ed23

74. Ou, Y. C. et al. (2019). The influence of probiotics on genital high-risk human papilloma virus clearance and quality of cervical smear: a randomized placebo-controlled trial. BMC Womens Health 19, 103. doi: 10.1186/ s12905-019-0798-y

75. Palma, E. et al. (2018). Long-term Lactobacillus rhamnosus BMX 54 application to restore a balanced vaginal ecosystem: a promising solution against HPV-infection. BMC Infect. Dis. 18, 13. doi: 10.1186/s12879-017-2938-z

76. Dumas, A. et al. (2018). The role of the lung microbiota and the gut — lung axis in respiratory infectious diseases. Cell. Microbiol 20 (12), e12966. doi: 10.1111/cmi.12966

77. Lijuan Yuan et al. Microbiota in viral infection and disease in humans and farm animals. Prog Mol Biol Transl Sci. 2020; 171: 15–60.

78. Belkacem, N. et al. (2017). Lactobacillus paracasei feeding improves immune control of influenza infection in mice. PLoS One 12, e0184976. doi: 10.1371/ journal.pone.0184976

79. Li Chunxi et al. The Gut Microbiota and Respiratory Diseases: New Evidence. J Immunol Res. 2020; 2020: 2340670

80. Tregoning et al. (2018). Adjuvanted influenza vaccines. Hum. Vaccin. Immunother. 14, 550–564. doi: 10.1080/21645515.2017.1415684

81. Zimmermann and Curtis. (2017). The influence of probiotics on vaccine responses — A systematic review. Vaccine 36 (2), 207–213. doi: 10.1016/ j.vaccine.2017.08.069

82. Yeh et al. (2018). The influence of prebiotic or probiotic supplementation on antibody titers after influenza vaccination: A systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Drug Des. Devel. Ther 12, 217–230. doi: 10.2147/DDDT. S155110

83. Wu et al. (2020). Prolonged presence of SARS-CoV-2 viral RNA in faecal samples. Lancet Gastroenterol. Hepatol. 5, 434–435. doi: 10.1016/S2468–1253 (20) 30083–2

84. Lamers et al. (2020). SARS-CoV-2 productively infects human gut enterocytes. Science (80-) 3, eabc1669. doi: 10.1126/science.abc1669

85. Xu et al. (2020). Management of corona virus disease-19 (COVID-19): the Zhejiang experience. J. Zhejiang Univ.Med. Sci. 49 (1), 147–157. doi: 10.3785/j.issn.1008–9292.2020.02.02

86. Zuo et al., (2020) Alterations in Gut Microbiota of Patients With COVID-19 During Time of Hospitalization. Gastroenterology 159 (3), 944–955.e8. doi: 10.1053/j.gastro.2020.05.048

87. Gu et al. (2020) Alterations of the Gut Microbiota in Patients with COVID-19 or H1N1 Influenza. Clin. Infect. Dis. ciaa709. doi: 10.1093/cid/ciaa709

88. Taha Baghbani et al., 2020. Dual and mutual interaction between microbiota and viral infections: a possible treat for COVID-19. 26;19 (1):217. doi: 10.1186/s12934-020-01483-1.

89. Swati Rajput et al. COVID-19 and Gut Microbiota: A Potential Connection. Indian J Clin Biochem. 2021. doi: 10.1007/s12291-020-00948-9

90. Liu G et al. (2020). Lactobacillus plantarum DR7 modulated bowel movement and gut microbiota associated with dopamine and serotonin pathways in stressed adults. Int.J. Mol. Sci. 21 (13), 4608. doi: 10.3390/ ijms21134608.

91. Jing Gao et al., Impact of the Gut Microbiota on Intestinal Immunity Mediated by Tryptophan Metabolism. Front Cell Infect Microbiol. 2018; 8: 13.

92. Annalisa Bosi et al. Tryptophan Metabolites Along the Microbiota-Gut-Brain Axis: An Interkingdom Communication System Influencing the Gut in Health and Disease. Int J Tryptophan Res. 2020; 13: 1178646920928984. doi: 10.1177/1178646920928984

В последние десятилетия именно вирусные инфекции являются одними из наиболее важных причин возникновения ряда заболеваний человека, что особенно отчетливо стало очевидно в последние полтора года и обусловлено коронавирусной пандемией. Поэтому изучение противовирусных механизмов иммунной защиты и роли микробиоты в их реализации очень актуально в настоящее время. Важно понять, каким образом микробиота организма влияет на состояние иммунной системы, и какие внешние воздействия могут нарушить этот баланс.

На данный момент имеется большое количество данных, подтверждающих роль микробиоты в обеспечении защиты организма человека от вирусных агентов [1]. Так, известно, что микробиота способствует препятствованию проникновения вирусов через слизистые оболочки, влияя на все три линии защиты (слизистой слой, врожденный и приобретенный иммунный ответ соответственно) [2].

По данным Schroeder et al., в желудочно-кишечном тракте (ЖКТ) микроорганизмы индуцируют экспрессию генов, кодирующих муцин 2 — основной компонент гликопротеиновой сети слизистого слоя ЖКТ, который усиливает его защитные свойства [3]. Это подтверждается исследованиями Lieleg et al., доказавших, что муцины, продуцируемые слизистой оболочкой желудка свиней, предотвращают инфицирование эпителиальных клеток различными вирусами, в том числе вирусом папилломы человека типа 16, полиомавирусом клеток Меркеля и другими [4]. Более того, Gonzalez-Ochoa et al. обнаружили, что некоторые виды, включая Lacticaseibacillus casei и Bifidobacterium adolescentis, косвенно регулируют проницаемость слизистого барьера ЖКТ. При этом образуются метаболиты, которые снижают экспрессию ротавирусного токсина NSP4, нарушающего структуру и функцию плотных контактов между эпителиальными клетками [5].

Важными противовирусными свойствами также обладают антимикробные пептиды (АМП). По данным Tabata et al., дурамицин (бактериоцин класса 1), продуцируемый Streptomycetes, предотвращает проникновение вируса Зика, блокируя его ко-рецептор TIM1 [6]. На этапе проникновения вирусов в клетки также действуют не только АМП, но и сами микроорганизмы. К примеру, на модели клеточной культуры Botić et al. показали, что штаммы Lactobacillus spp. (sensu lato) и Bifidobacterium препятствуют прикреплению и проникновению вируса везикулярного стоматита в клетки вследствие возможного эффекта стерической изоляции, когда происходит механическое перекрытие потенциального места взаимодействия вируса с клеткой [7]. Помимо этого, Lactobacillus spp., экспрессирующие рецепторы CD4 на своей поверхности, способны связывать и захватывать псевдовирус ВИЧ-1, тем самым предотвращая его прикрепление и проникновение в клетки CD4 + [8].

Для Цитирования:
Розенсон Рафаил Иосифович, Иммунитет, микробиота и пробиотики при вирусных инфекциях. Терапевт. 2021;8.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: