По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.3.09: 597.556.334.7 DOI:10.33920/sel-09-2506-04

Ихтиопатологическое обследование гигантского змееголова (Channa micropeltes Cuvier, 1831)

Евгений Алексеевич Мельченков д-р биол. наук, старший научный сотрудник, заведующий лабораторией осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ), Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40А, E-mail: innovazii-vniiprh@mail.ru, ORCID: 0000-0002-3336-165Х, SPIN: 1413-2567
Наталья Николаевна Романова канд. биол. наук, доцент, заведующий лабораторией ихтиопатологии, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ), Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40А, E-mail: romanova@vniiprh.vniro.ru, ORCID: 0000-0003-3154-7132, SPIN: 9568-2700
Александр Павлович Воробьев канд. биол. наук, главный специалист лаборатории осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ), Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40А, E-mail: innovazii-vniiprh@mail.ru, ORCID: 0000-0002-0025-4292, SPIN: 4294-7323
Ольга Васильевна Сехина главный специалист лаборатории ихтиопатологии, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ), Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40А, E-mail: sekhina@vniiprh.vniro.ru, SPIN: 2838-2961
Антонина Александровна Вишторская специалист лаборатории ихтиопатологии, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ), Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40А, E-mail: vishtorskaya@vniiprh.vniro.ru, SPIN: 7554-4139
Максим Сергеевич Гельфанов специалист лаборатории ихтиопатологии, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ), Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40А, E-mail: m.gelfanov@vniiprh.vniro.ru, SPIN: 6475-2076
Вера Вениаминовна Калмыкова канд. биол. наук, главный специалист лаборатории осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ), Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40А, E-mail: innovazii-vniiprh@mail.ru, ORCID: 0000-0002-6949-9335, SPIN: 9876-4698

Представлены результаты ихтиопатологического обследования молоди гигантского змееголова, завезенного из Индонезии. При бактериологическом анализе в паренхиматозных органах (печени и почках) у рыб обнаружили Aeromonas sp., Acinetobacter sp., Acinetobacter baumannii, Pseudomonas alcaligenes, Moraxella sp., Staphylococcus sp. Наиболее подвержены контаминации бактериями почки. У выделенных 22 штаммов бактерий чувствительность к 13 тестируемым антибиотикам отсутствовала. Высокий уровень контаминации органов и выявленный видовой состав бактерий характеризуют у змееголова наличие комплекса микроорганизмов, способных вызвать бактериальную геморрагическую септицемию (бактерионосительство). При паразитологическом обследовании в слизи с поверхности тела и жабр у рыб обнаружены жгутиконосцы Ichthiobodo sp. и моногенеи Silurodiscoides sp., в кишечнике, печени и желчном пузыре — цестоды Polyoncobothrium ophiocephalinum. Наиболее интенсивно змееголовы были заражены цестодами. Экстенсивность инвазии составляла 100% при средней интенсивности инвазии 8 экз./рыбу, минимальное отмеченное количество паразитов — 1 экз./рыбу, максимальное — 17 экз./рыбу. Длина цестод, извлеченных из кишечника змееголовов, достигала от 140 до 220 мм. Тело цестоды членистое, в члениках расположены половые комплексы с уже зрелыми яйцами. Яйца тонкостенные, при выходе из полового комплекса находились на разных стадиях эмбрионального развития. Проведенные лечебные обработки рыб солью и хлорамином оказывали кратковременный эффект, дегельминтизация феномиксом привела к частичному освобождению кишечников, но не повлияла на цестод в печени и желчном пузыре. Механическое и токсическое воздействие гельминтов привело к гибели всей партии завезенного змееголова. Учитывая высокую зараженность паразитами и бактериями молоди гигантского змееголова и сложность разработки лечебно-профилактических мероприятий, следует осуществлять завоз личинок на ранних стадиях развития, до перехода на смешанное питание. Завоз змееголовов, зараженных цестодой P. ophiocephalinum, может привести к распространению этого гельминта на территории России.

Литература:

1. Быховская-Павловская, И.Е. Паразиты рыб: руководство по изучению / И.Е. Быховская-Павловская. — Л.: Наука, 1985. — 123 с.

2. Головина, Н.А. Практикум по ихтиопатологии: учебное пособие / Н.А. Головина, Е.В. Авдеева, Е.Б. Евдокимова, О.В. Казимирченко, М.Ю. Котлярчук / Под ред. Н.А. Головиной. — М.: МОРКНИГА, 2016. — 417 с.

3. Ермоленко, А.В. Фауна паразитов змееголова (Сhanna argus warpachowskii) Приморского края / А.В. Ермоленко, В.В. Беспрозванных // Паразитология. — 2008. — Т. 42, № 4. — С. 325–329.

4. Кабдылманап, С.К. Оценка состояния популяции змееголова в озере Балхаш / С.К. Кабдылманап, Е.Е. Куматаев // Central Asian Sсientific Journal. — 2024. — № 5. — С. 23–26.

5. Методические указания по определению патогенности аэромонад по степени ДНКазной активности // Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. — М.: Отдел маркетинга «АМБ-агро», 1998. — Ч. 1. — С. 150–151.

6. Мирзоев, Н.М. Современное состояние ихтиофауны озер заповедника «Тигровая балка» / Н.М. Мирзоев // Известия АН Респ. Таджикистан. Отд. биол. и мед. наук. — 2010. — № 4 (173). — С. 40–45.

7. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т. 1. Паразитические простейшие. — Л.: Наука, 1984. — 428 с.

8. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т. 2. Паразитические многоклеточные (первая часть). — Л.: Наука, 1985. — 425 с.

9. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т. 3. Паразитические многоклеточные (вторая часть). — Л.: Наука, 1987. — 583 с.

10. Полякова, Т.А. Senga sharpiloi sp. nov. (cestoda: ptychobothriidae) — новый вид цестод от Channa micropeltes (pisces: Channidae) из Сингапура / Т.А. Полякова, М.П. Кирин // Экология моря. — 2005. — Т. 68. — С. 68–75. — EDN UMCMFX.

11. Собиров, Ж.Ж. Размерно-возрастной состав основных промысловых видов рыб Айдар-Арнасайской системы озер Узбекистана / Ж.Ж. Собиров, Д.Р. Дехконова, С.М. Намозов // Вестник Ошского государственного университета. Сельское хозяйство: агрономия, ветеринария и зоотехния. — 2024. — № 4 (9). — С. 227–235. — DOI https//doi.org/10.52754/16948696_2024_4(9)_29.

12. ФАО. 2024. Состояние мирового рыболовства и аквакультуры — 2024. «Голубая трансформация» в действии. Рим. — DOI: 10.4060/cd0683ru; https://openknowledge. fao.org/handle/20.500.14283/cd0683ru.

13. Hassan, M. Histopathological changes in the intestine of Channa micropeltes infected with the cestode Senga rostellarae / M. Hassan, M.S.I.A. Hadi, M.F.H. Abd Aziz et al. IOP Conf. Ser.: Earth Environ. Sci., 2019, 370 012055. DOI 10.1088/1755-1315/370/1/012055.

14. Herlina, S. Tingkat infeksi ektoparasit pada ikan toman (Channa micropeltes) / ZIRAA AH MAJALAH ILMIAH PERTANIAN 2021, 46 (3): 393–397. DOI 10.31602/zmip.v46i3.5381.

15. Liu, J.Y. First case of Aeromonas schubertii infection in the freshwater cultured snakehead fish, Ophiocephalus argus (Cantor), in China / J.Y. Liu, A.H. Li // Journal of Fish Diseases. — 2012. — Vol. 35, is. 5. — Р. 335–342. — DOI 10.1111/j.1365-2761.2012.01350.x.

16. Novita, H. Parasitic and bacterial diseases in aquarium-reared Indonesian snakehead (Channa micropeltes) / H. Novita, S. Andriyanto, D. Sugiani, A.M. Lusiastuti, D. Caruso // IOP Conf. Ser.: Earth Environ. Sci. — 2020. — № 521. — P. 012019. — DOI 10.1088/17551315/521/1/012019.

17. Pulpipat, T. Concurrent infections of Streptococcus iniae and Aeromonas veronii in farmed Giant snakehead (Channa micropeltes) / T. Pulpipat, T.I. Heckman, V. Boonyawiwat [et al]. // Journal of Fish Diseases. — 2023. — № 46. — P. 629–641. — DOI 10.1111/jfd.13774.

1. Bykhovskaya-Pavlovskaya, I.E. Parasites of fish: a study guide. Nauka, Leningrad, 1985. 123 p. (in Russian).

2. Golovina, N.A., Avdeeva, E.V., Evdokimova, E.B., Kazimirchenko, O.V., Kotlyarchuk, M.Y. Practicum on ichthyopathology: a textbook. Ed. by N.A. Golovina. MORKNIGA, Moscow, 2016. 417 p. (in Russian).

3. Ermolenko, A.V., Besprozvanikh, V.V. Fauna of snakehead parasites (Channa argus warpachowskii) Primorsky Krai. Parasitology, 2008, vol. 42, no. 4, pp. 325–329 (in Russian).

4. Kabdylmanap, S.K., Kumataev, E.E. Assessment of the state of the snakehead population in Lake Balkhash. Central Asian Scientific Journal, 2024, no. 5, pp. 23–26 (in Russian).

5. Methodological guidelines for determining the pathogenicity of aeromonads by the degree of DNase activity. In: Collection of instructions for combating fish diseases. Marketing Department AMB-agro, Moscow, 1998, part 1, pp. 150–151 (in Russian).

6. Mirzoev, N.M. The current state of the ichthyofauna of the lakes of the Tigrovaya Balka Reserve. Izvestiya AN Rep. Tadjikistan. Department of Biology and medical sciences, 2010, no. 4 (173), pp. 40–45 (in Russian).

7. Key to the parasites of freshwater fish of the USSR. Vol. 1. Parasitic protozoa. Nauka, Leningrad, 1984. 428 p. (in Russian).

8. Key to the parasites of freshwater fish of the USSR. Vol. 2. Parasitic Metazoa (part 1). Nauka, Leningrad, 1985. 425 p. (in Russian).

9. Key to the parasites of freshwater fish of the USSR. Vol. 3. Parasitic Metazoa (part 2). Nauka, Leningrad, 1987. 583 p. (in Russian).

10. Polyakova, T.A., Kirin, M.P. Senga sharpiloi sp. nov. (cestoda: ptychobothriidae) — a new species of cestoda from Channa micropeltes (pisces: Channidae) from Singapore. Ecology of the Sea, 2005, vol. 68, pp. 68–75 (in Russian).

11. Sobirov, J.J., Dekhkonova, D.R., Namozov, S.M. The size and age composition of the main commercial fish species of the Aidar-Arnasai lake system of Uzbekistan. Bulletin of Osh State University. Agriculture: agronomy, veterinary and animal science, 2024, no. 4 (9), pp. 227–235. DOI 10.52754/16948696_2024_4(9)_29 (in Russian).

12. FAO. 2024. The State of World Fisheries and Aquaculture 2024 — Blue Transformation in action. Rome. DOI 10.4060/cd0683en.

13. Hassan, M., Hadi, M.S.I.A., Abd Aziz, M.F.H., et al. Histopathological changes in the intestine of Channa micropeltes infected with the cestode Senga rostellarae. IOP Conf. Ser.: Earth Environ. Sci., 2019, 370 012055. DOI 10.1088/1755-1315/370/1/012055.

14. Herlina, S. Tingkat infeksi ektoparasit pada ikan toman (Channa micropeltes) / ZIRAA AH MAJALAH ILMIAH PERTANIAN 2021, no. 46(3), pp. 393-397. DOI 10.31602/zmip.v46i3.5381.

15. Liu, J.Y., Li, A.H. First case of Aeromonas schubertii infection in the freshwater cultured snakehead fish, Ophiocephalus argus (Cantor), in China. Journal of Fish Diseases, 2012, vol. 35, Is. 5, pp. 335–342.

16. Novita, H., Andriyanto, S, Sugiani, D., Lusiastuti, A.M., Caruso, D. Parasitic and bacterial diseases in aquarium-reared Indonesian snakehead (Channa micropeltes). IOP Conf. Ser.: Earth Environ. Sci., 2020, 521 012019. DOI 10.1088/1755-1315/521/1/012019.

17. Pulpipat, T., Heckman, T.I., Boonyawiwat, V., Kerddee, P., Phatthanakunanan, S., Soto, E., Surachetpong, W. Concurrent infections of Streptococcus iniae and Aeromonas veronii in farmed Giant snakehead (Channa micropeltes). Journal of Fish Diseases, 2023, no. 46, pp. 629–641. DOI 10.1111/jfd.13774.

Змееголовы обладают многими привлекательными качествами как объекты товарного выращивания в индустриальной аквакультуре: быстрый рост, раннее созревание, включая высокую плодовитость, превосходное качество мяса и высокую пищевую ценность. Эти объекты получили широкое распространение в аквакультуре Юго-Восточной Азии (Вьетнам, Филиппины, Индонезия) и Китая. Объем мирового товарного выращивания змееголова, по данным ФАО, в 2022 году оценивался в 690 тыс. В результате «стихийной» интродукции змееголов успешно акклиматизировался в Узбекистане, Таджикистане, Казахстане и США [4; 6; 11; 12]. В настоящее время в России возрастает интерес к разведению новых объектов аквакультуры, обладающих высокой пищевой ценностью и рыбопродуктивностью, в частности змееголова.

В водоемах Приморского края обитает амурский змееголов (Channa argus warpachowskii). Этот объект сильно подвержен заражению паразитами из-за своего пелагического образа жизни. По данным А.В. Ермоленко и В.В. Беспрозванных, у амурского змееголова отмечен 31 вид паразитов [3]. Паразитофауна представлена практически всеми характерными для костистых рыб таксонами паразитов. У амурского змееголова были выявлены паразиты, относящиеся к следующим типам: Sarcomastigophora, Myxozoa, Ciliophora, Plathelminthes (кл. Monogenea, Cestoda, Trematoda), Nemathelminthes (кл. Nematoda) и Arthropoda (кл. Crustacea). Наибольшую встречаемость зараженных змееголовов отмечали моногенеей Gyrodactylus ophiocephali и нематодой Pingis sinensis в реке Мельгуновка [3].

В списке паразитов амурского змееголова отсутствует специфичный для змееголовов из стран Юго-Восточной Азии и Китая паразит — цестода Polyoncobothrium ophiocephalinum (син. Senga ophiocephalina), которая паразитирует в кишечнике. При завозе из этих стран змееголовов возможны проникновение на территорию России цестод и их распространение. К заражению Polyoncobothrium ophiocephalinum восприимчивы пресноводные рыбы из отрядов Polypteriformes, Cypriniformes, Ophiocephaliformes, Perciformes и др. Имеются сведения о заражении гигантских змееголовов в Малайзии цестодами Senga rostellarae [13]. Известен случай обнаружения заражения гигантского змееголова, завезенного из Сингапура, цестодами р. Senga, изучение строения которых привело исследователей к обнаружению нового вида Senga sharpiloi sp. nov [10].

Для Цитирования:
Евгений Алексеевич Мельченков, Наталья Николаевна Романова, Александр Павлович Воробьев, Ольга Васильевна Сехина, Антонина Александровна Вишторская, Максим Сергеевич Гельфанов, Вера Вениаминовна Калмыкова, Ихтиопатологическое обследование гигантского змееголова (Channa micropeltes Cuvier, 1831). Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2025;6.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: