По всем вопросам звоните:

+7 495 274-22-22

УДК: 639.212:591.391 DOI:10.33920/sel-09-2105-05

Гипотермическое хранение в бессолевом консерванте влияет на продолжительность подвижности спермы стерляди

Дмитрий Александрович Исаев канд. биол. наук, старший научный сотрудник, Всероссийский научно-исследовательский институт интегрированного рыбоводства — филиал ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр животноводства — ВИЖ им. академика Л.К. Эрнста», Россия, 142460, Московская область, Ногинский район, пос. им. Воровского, ул. Сергеева, д. 24, E-mail: dmais@hotmail.ru, ORCID: 0000-0001-6706-8606
Александр Павлович Глебов главный рыбовод, Центральный филиал ФГБУ «Главное бассейновое управление по рыболовству и сохранению водных биологических ресурсов», Россия, 17105, г. Москва, Варшавское шоссе, д. 39а, E-mail: glebov74@rambler.ru, ORCID: 0000-0002-1570-3839
Марина Юрьевна Мартынова канд. биол. наук, доцент кафедры, Московский медицинский университет «Реавиз», Россия, 107564, г. Москва, ул. Краснобогатырская, д. 2, стр. 2, подъезд 22, E-mail: mm122@yandex.ru, ORCID: 0000-0001-6911-619X
Елена Ивановна Шишанова канд. биол. наук, директор, Всероссийский научно-исследовательский институт интегрированного рыбоводства — филиал ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр животноводства — ВИЖ им. академика Л.К. Эрнста», Россия, 142460, Московская область, Ногинский район, пос. им. Воровского, ул. Сергеева, д. 24, E-mail: lena-vniir@mail.ru, ORCID: 0000-0001-6158-1871

Вместе с концентрацией подвижность спермы осетровых рыб является одной из важнейших характеристик, определяющих ее качество и пригодность для оплодотворения. Продолжительность поступательного движения сперматозоидов после активации в воде также важна, и это время не должно быть меньше необходимого для оплодотворения. Подвижность сперматозоидов зависит от их физиологического состояния, степени зрелости, возраста и внутриклеточных запасов макроэргических соединений. На продолжительность подвижности спермы оказывают влияние такие факторы, как осмоляльность, ионный состав среды, pH и температура. При гипотермическом хранении спермы количество сперматозоидов, способных к активации, прогрессивно снижется вследствие истощения запасов АТФ или гибели. Для улучшения гипотермического хранения спермы стерляди мы разработали бессолевой консервирующий раствор ISGT-80 на основе глюкозы и трегалозы. При хранении образцов спермы стерляди от 20 самцов в ISGT-80 в течение 18 суток мы наблюдали вместе с прогрессивным снижением числа подвижных сперматозоидов изменение продолжительности их подвижности. Время полупотери подвижности (τ50) на 3–6-е сутки хранения в среднем достоверно увеличивалось приблизительно на 1 минуту по сравнению со свежими образцами, затем постепенно снижалось, впрочем, не опускаясь до исходного значения. Причины такой пролонгации подвижности не ясны, но мы не исключаем преимущественной гибели в первые дни хранения сперматозоидов с коротким периодом подвижности и отбора в пользу сперматозоидов-«долгожителей». Такой отбор на уровне гамет может приводить к изменению частот аллелей гетерозиготных локусов в потомстве. Таким образом, гипотермическое хранение спермы может стать привлекательным предметом генетических исследований для разработки новых селекционных инструментов в осетроводстве.

Литература:

1. Барулин, Н.В. Оценка подвижности сперматозоидов осетровых рыб в условиях аквакультуры / Н.В. Барулин, Т.П. Юрченко, М.В. Шалак, Н.А. Садомов // Животноводство и ветеринарная медицина. — 2013. — № 4. — C. –15.

2. Бубунец, Э.В. Воспроизводство и выращивание анадромных осетровых рыб Понто-Каспийского бассейна в условиях тепловодных хозяйств: 06.04.01. Рыбное хозяйство и аквакультура: Дис. ... д-ра с.-х. наук / Э.В. Бубунец; Российский государственный аграрный университет — МСХА им. К.А. Тимирязева. — М., 2016. — 393 c.

3. Гинзбург, А.С. Оплодотворение у рыб и проблема полиспермии / А.С. Гинзбург. — М.: Наука, 1968. — 358 с.

4. Елизарова, А.С. Рыбоводная оценка качества спермы стерляди / А.С. Елизарова, А.П. Глебов, Е.И. Шишанова, Д.А. Исаев // Современные достижения и проблемы генетики и биотехнологии в животноводстве: материалы Международной научной конференции, посвященной 90-летию академика Л.К. Эрнста. — Пос. Дубровицы, ВИЖ, 2019. — C. 68–71.

5. Исаев, Д.А. Гипотермическое хранение спермы рыб / Д.А. Исаев // Сельскохозяйственное рыбоводство: возможности развития и научное обеспечение инновационных технологий: материалы Международной научно-практической конференции. — Ногинск, ГНУ «ВНИИР Россельхозакадемии», 2012. — М.: ООО «Типография Шерна», 2012. — C. 144–152.

6. Исаев, Д.А. Гипотермическое хранение спермы осетровых рыб в изотонических растворах / Д.А. Исаев, М.Ю. Мартынова, Е.И. Шишанова, Э.В. Бубунец, И.В. Стародворская // Рыбоводство и рыбное хозяйство. — 2013. — № 10. — C. 41–49.

7. Исаев, Д.А. Криоконсервация спермы осетровых рыб: текущее состояние и перспективы / Д.А. Исаев, Р.А. Шафеи // Рыбоводство и рыбное хозяйство. — 2016. — № 5. — C. 65–73.

8. Исаев, Д.А. Подвижность, сохранность мембран и фрагментация ДНК в сперме стерляди при гипотермическом хранении в безэлектролитном растворе глюкозы и трегалозы / Д.А. Исаев, Е.И. Шишанова, Д.А. Кавтаров, А.П. Глебов // Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство. — 2016. — № 3. — C. 100–108.

9. Исаев, Д.А. Гипотермическое хранение спермы осетровых рыб: методология и история с продолжением / Д.А. Исаев // Рыбоводство и рыбное хозяйство. — 2020. — № 8. — C. 66–74. — DOI: 10.33920/sel-09-2008-06.

10. Исаев, Д.А. Гипотермическая консервация спермы позвоночных: люди, мыши, рыбы... / Д.А. Исаев, И.В. Володяев // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. — 2020. — T. 56, № 7. — C. 820–821. — DOI: 10.31857/S0044452920071882.

11. Чебанов, М.С. Руководство по искусственному воспроизводству осетровых рыб. Технический доклад ФАО по рыбному хозяйству № 558 / М.С. Чебанов, Е.В. Галич. — ФАО, Анкара, 2013. — 325 с.

12. Alavi, S.M. Sperm motility in fishes. (II) Effects of ions and osmolality: a review / S.M. Alavi, J. Cosson // Cell Biol Int. — 2006. — Vol. 30, № 1. — P. 1–14. — DOI: 10.1016/ j.cellbi.2005.06.004.

13. Alavi, S.M.H. Roles of osmolality, calcium — Potassium antagonist and calcium in activation and flagellar beating pattern of sturgeon sperm / S.M.H. Alavi, D. Gela, M. Rodina, O. Linhart // Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. — 2011. — Vol. 160, № 2. — P. 166–174. — DOI: 10.1016/j.cbpa.2011.05.026.

14. Alavi, S.M.H. Sperm biology and control of reproduction in sturgeon: (I) testicular development, sperm maturation and seminal plasma characteristics / S.M.H. Alavi, M. Rodina, D. Gela, O. Linhart // Reviews in Fish Biology and Fisheries. — 2012. — Vol. 22, № 3. — P. 695–717. — DOI: 10.1007/s11160-012-9268-4.

15. Alavi, S.M.H. Sperm biology and control of reproduction in sturgeon: (II) sperm morphology, acrosome reaction, motility and cryopreservation / S.M.H. Alavi, A. Hatef, M. Pšenička, V. Kašpar, S. Boryshpolets, B. Dzyuba, J. Cosson, V. Bondarenko, M. Rodina, D. Gela, O. Linhart // Reviews in Fish Biology and Fisheries. — 2012. — Vol. 22, № 4. — P. 861–886. — DOI: 10.1007/s11160-012-9270-x.

16. Alavi, S.M.H. Sperm motility in fishes: (III) diversity of regulatory signals from membrane to the axoneme / S.M.H. Alavi, J. Cosson, O. Bondarenko, O. Linhart // Theriogenology. — 2019. — V. 136. — P. 143–165. — DOI: 10.1016/j.theriogenology.2019.06.038.

17. Alavioon, G. Haploid selection within a single ejaculate increases offspring fitness / G. Alavioon, C. Hotzy, K. Nakhro, S. Rudolf, D.G. Scofield, S. Zajitschek, A.A. Maklakov, S. Immler // Proceedings of the National Academy of Sciences. — 2017. — Vol. 114, № 30. — P. 8053–8058. — DOI: 10.1073/pnas.1705601114.

18. Alavioon, G. Selection for longer lived sperm within ejaculate reduces reproductive ageing in offspring / G. Alavioon, A. Cabrera Garcia, M. LeChatelier, A.A. Maklakov, S. Immler // Evolution Letters. — 2019. — Vol. 3, № 2. — C. 198–206. — DOI: 10.1002/evl3.101.

19. Aramli, M.S. Effects of short-term storage on the motility, oxidative stress, and ATP content of Persian sturgeon (Acipenser persicus) sperm / M.S. Aramli, M.R. Kalbassi, R.M. Nazari, S. Aramli // Animal Reproduction Science. — 2013. — Vol. 143, № 1. — P. 112–117. — DOI: 10.1016/j.anireprosci.2013.10.010.

20. Billard, R. Short-term preservation of sperm under oxygen atmosphere in rainbow trout (Salmo gairdneri) / R. Billard // Aquaculture. — 1981. — Vol. 23, № 1. — P. 287–293. — DOI: 10.1016/0044-8486(81)90022-3.

21. Cosson, J. Frenetic activation of fish spermatozoa flagella entails short-term motility, portending their precocious decadence / J. Cosson // Journal of Fish Biology. — 2010. — Vol. 76, № 1. — P. 240–279. — DOI: 10.1111/j.1095-8649.2009.02504.x.

22. Dadras, H. In vitro antioxidant enzyme activity and sperm motility at different temperatures in sterlet Acipenser ruthenus and rainbow trout Oncorhynchus mykiss / H. Dadras, V. Dzyuba, A. Golpour, M. Xin, B. Dzyuba // Fish Physiology and Biochemistry. — 2019. — Vol. 45, № 6. — P. 1791–1800. — DOI: 10.1007/s10695-019-00675-w.

23. DiLauro, M.N. Technical Notes: Short-Term Cold Storage of Atlantic Sturgeon Sperm / M.N. DiLauro, W.F. Krise, M.A. Hendrix, S.E. Baker // The Progressive Fish-Culturist. — 1994. — Vol. 56, № 2. — P. 143–144. — DOI: 10.1577/1548-8640(1994)056<0143:TNSTCS>2.3.CO;2.

24. DiLauro, M.N. Short-term cold storage of Atlantic sturgeon sperm / M.N. DiLauro, W.F. Krise, M.A. Hendrix, S.E. Baker // Sturgeon Quarterly. — 1995. — Vol. 3, № 2. — P. 6–8.

25. Immler, S. Sperm variation within a single ejaculate affects offspring development in Atlantic salmon / S. Immler, C. Hotzy, G. Alavioon, E. Petersson, G. Arnqvist // Biology Letters. — 2014. — Vol. 10, № 2. — P. 20131040. — DOI: 10.1098/rsbl.2013.1040.

26. Lahnsteiner, F. Studies on the semen biology and sperm cryopreservation in the sterlet, Acipenser ruthenus L / F. Lahnsteiner, B. Berger, A. Horvath, B. Urbanyi // Aquaculture Research. — 2004. — Vol. V. 35, № 6. — P. 519–528. — DOI: 10.1111/j.1365-2109.2004.01034.x.

27. Sadeghi, A. Cryopreservation of stellate (Acipenser stellatus) sperm: Effect of different concentrations of DMSO and dilution rates on sperm mobility and motility duration after long-term storage / A. Sadeghi, M.R. Imanpoor, R. Shahriari, M. Khalili, M. Abedi // Global Veterinaria. — 2013. — Vol. 10. — P. 26–30. — DOI: 10.5829/idosi.gv.2013.10.1.7195.

28. Shaliutina-Kolešová, A. The influence of cryoprotectants on sturgeon (Acipenser ruthenus) sperm quality, DNA integrity, antioxidant responses, and resistance to oxidative stress / A. Shaliutina-Kolešová, J. Cosson, I. Lebeda, I. Gazo, O. Shaliutina, B. Dzyuba, O. Linhart // Animal Reproduction Science. — 2015. — Vol. 159. — P. 66–76. — DOI: 10.1016/j.anireprosci.2015.05.014.

29. StatSoft, Inc. (2011). STATISTICA (data analysis software system), version 10 // http:// statsoft.ru.

30. Thorogood, J. Factors affecting the activation, motility and cryopreservation of the spermatozoa of the yellowfin bream, Acanthopagrus australis (Günther) / J. Thorogood, A. Blackshaw // Aquaculture Research. — 1992. — Vol. 23, № 3. — P. 337–344. — DOI: 10.1111/j.1365-2109.1992.tb00776.x.

31. Toth, G.P. Objective analysis of sperm motility in the lake sturgeon, Acipenser fulvescens: activation and inhibition conditions / G.P. Toth, A. Ciereszko, S.A. Christ, K. Dabrowski // Aquaculture. — 1997. — Vol. 154, № 3. — P. 337–348. — DOI: 10.1016/S00448486(97)00066-5.

1. Barulin, N.V., Yurchenko, T.P., Shalak, M.V., Sadomov, N.A. Otsenka podvizhnosti spermatozoidov osetrovykh ryb v usloviyakh akvakul’tury [Evaluation of sturgeon sperm motility I aquaculture]. Zhivotnovodstvo i veterinarnaya meditsina [Animal husbandry and veterinary medicine], 2013, no. 4, pp. 10–15 (In Russian).

2. Bubunets, E.V. Vosproizvodstvo i vyrashchivanie anadromnykh osetrovykh ryb PontoKaspiiskogo basseina v usloviyakh teplovodnykh khozyaistv [Reproduction and cultivation of anadromous sturgeons of the Ponto-Caspian basin in warm-water farms]. Doctor Agricultural Sci. diss. Moscow, 2016. 393 p. (in Russian).

3. Ginzburg, A.S. Oplodotvorenie u ryb i problema polispermii [Fertilization in fishes and the problem of polyspermy]. Nauka, Moscow, 1968. 366 p.

4. Elizarova, A.S., Glebov, A.P., Shishanova, E.I., Isaev, D.A. Rybovodnaya otsenka kachestva spermy sterlyadi [Evaluation of sterlet sperm quality for fish breeding]. In: Sovremennye dostizheniya i problemy genetiki i biotekhnologii v zhivotnovodstve: materialy Mezhdunarodnoi nauchnoi konferentsii posvyashchennoi 90-letiyu akademika L.K. Ernsta [Modern achievements and problems of genetics and biotechnology in animal husbandry: materials of the International scientific conference dedicated to the 90th anniversary of academician L.K. Ernst]. VIZh, village Dubrovitsy, 2019, pp. 68–71 (in Russian).

5. Isaev, D.A. Gipotermicheskoe khranenie spermy ryb [Hypothermic liquid storage of fish sperm]. In: Sel’skokhozyaistvennoe rybovodstvo: vozmozhnosti razvitiya i nauchnoe obespechenie innovatsionnykh tekhnologii: materialy Mezhdunarodnoi nauchno-prakticheskoi konferentsii [Agricultural fish farming: development opportunities and scientific support of innovative technologies: materials of the International Scientific and Practical Conference]. Noginsk, GNU VNIIR Rossel’khozakademii [Noginsk, GNU VNIIR Russian Agricultural Academy]. Tipografiya Sherna, Moscow, 2012, pp. 144–152 (in Russian).

6. Isaev, D.A., Martynova, M.Yu., Shishanova, E.I., Bubunets, E.V., Starodvorskaya, I.V. Gipotermicheskoe khranenie spermy osetrovykh ryb v izotonicheskikh rastvorakh [Hypothermic storage of sturgeon fish milt in isotonic extenders]. Fish Breeding and Fisheries, 2013, no. 10, pp. 41–49 (in Russian).

7. Isaev, D.A., Shafei, R.A. Kriokonservatsiya spermy osetrovykh ryb: tekushchee sostoyanie i perspektivy [Sperm cryopreservation in sturgeon: current state and trends]. Fish breeding and fisheries, 2016, no. 5, pp. 65–73 (in Russian).

8. Isaev, D.A., Shishanova, E.I., Kavtarov, D.A., Glebov, A.P. Podvizhnost’, sokhrannost’ membran i fragmentatsiya DNK v sperme sterlyadi pri gipotermicheskom khranenii v bezelektrolitnom rastvore glyukozy i tregalozy [Motility, membrane integrity and DNA fragmentation in sterlet sperm during hypothermic storage in electrolyte-free solution of glucose and trehalose]. Vestnik of Astrakhan State Technical University. Series: Fishing Industry, 2016, no. 3, pp. 100–108 (in Russian).

9. Isaev, D.A. Hypothermic storage of sturgeon sperm: methodology and ongoing history. Fish Breeding and Fisheries, 2020, no. 8, pp. 76–82. DOI: 10.33920/sel-09-2008-06.

10. Isaev, D.A., Volodyaev, I.V. Gipotermicheskaya konservatsiya spermy pozvonochnykh: lyudi, myshi, ryby... [Hypothermic preservation of vertebrate sperm: humans, mice, fish...]. Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology, 2020, Vol. 56, no. 7, pp. 820–821 (in Russian). DOI: 10.31857/S0044452920071882.

11. Chebanov, M.S., Galich, E.V. Sturgeon hatchery manual. FAO Fisheries and Aquaculture Technical Paper №558. FAO, Ankara, 2011. 303 p.

12. Alavi, S.M., Cosson, J. Sperm motility in fishes. (II) Effects of ions and osmolality: a review. Cell Biol Int, 2006, vol. 30, no. 1, pp. 1–14. DOI: 10.1016/j.cellbi.2005.06.004.

13. Alavi, S.M.H., Gela, D., Rodina, M., Linhart, O. Roles of osmolality, calcium — Potassium antagonist and calcium in activation and flagellar beating pattern of sturgeon sperm. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 2011, Vol. 160, no. 2, pp. 166–174. DOI: 10.1016/j.cbpa.2011.05.026.

14. Alavi, S.M.H., Rodina, M., Gela, D., Linhart, O. Sperm biology and control of reproduction in sturgeon: (I) testicular development, sperm maturation and seminal plasma characteristics. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 2012, vol. 22, no. 3, pp. 695–717. DOI: 10.1007/ s11160-012-9268-4.

15. Alavi, S.M.H., Hatef, A., Pšenička, M., Kašpar, V., Boryshpolets, S., Dzyuba, B., Cosson, J., Bondarenko, V., Rodina, M., Gela, D., Linhart, O. Sperm biology and control of reproduction in sturgeon: (II) sperm morphology, acrosome reaction, motility and cryopreservation. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 2012, vol. 22, no. 4, pp. 861–886. DOI: 10.1007/s11160-012-9270-x.

16. Alavi, S.M.H., Cosson, J., Bondarenko, O., Linhart, O. Sperm motility in fishes: (III) diversity of regulatory signals from membrane to the axoneme. Theriogenology, 2019, vol. 136, pp. 143–165. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2019.06.038.

17. Alavioon, G., Hotzy, C., Nakhro, K., Rudolf, S., Scofield, D.G., Zajitschek, S., Maklakov, A.A., Immler, S. Haploid selection within a single ejaculate increases offspring fitness. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2017, vol. 114, no. 30, pp. 8053–8058. DOI: 10.1073/pnas.1705601114.

18. Alavioon, G., Cabrera Garcia, A., LeChatelier, M., Maklakov, A.A., Immler, S. Selection for longer lived sperm within ejaculate reduces reproductive ageing in offspring. Evolution Letters, 2019, vol. 3, no. 2, pp. 198–206. DOI: 10.1002/evl3.101.

19. Aramli, M.S., Kalbassi, M.R., Nazari, R.M., Aramli, S. Effects of short-term storage on the motility, oxidative stress, and ATP content of Persian sturgeon (Acipenser persicus) sperm. Animal Reproduction Science, 2013, vol. 143, no. 1, pp. 112–117. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2013.10.010.

20. Billard, R. Short-term preservation of sperm under oxygen atmosphere in rainbow trout (Salmo gairdneri). Aquaculture, 1981, vol. 23, no. 1, pp. 287–293. DOI: 10.1016/00448486(81)90022-3.

21. Cosson, J. Frenetic activation of fish spermatozoa flagella entails short-term motility, portending their precocious decadence. Journal of Fish Biology, 2010, vol. 76, no. 1, pp. 240–279. DOI: 10.1111/j.1095-8649.2009.02504.x.

22. Dadras, H., Dzyuba, V., Golpour, A., Xin, M., Dzyuba, B. In vitro antioxidant enzyme activity and sperm motility at different temperatures in sterlet Acipenser ruthenus and rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Fish Physiology and Biochemistry, 2019, vol. 45, no. 6, pp. 1791–1800. DOI: 10.1007/s10695-019-00675-w.

23. Dilauro, M.N., Krise, W.F., Hendrix, M.A., Baker, S.E. Technical Notes: Short-Term Cold Storage of Atlantic Sturgeon Sperm. The Progressive Fish-Culturist, 1994, vol. 56, no. 2, pp. 143–144. DOI: 10.1577/1548-8640(1994)056<0143:TNSTCS>2.3.CO;2.

24. Dilauro, M.N., Krise, W.F., Hendrix, M.A., Baker, S.E. Short-term cold storage of Atlantic sturgeon sperm. Sturgeon Quarterly, 1995, vol. 3, no. 2, pp. 6–8.

25. Immler, S., Hotzy, C., Alavioon, G., Petersson, E., Arnqvist, G. Sperm variation within a single ejaculate affects offspring development in Atlantic salmon. Biology Letters, 2014, vol. 10, no. 2, pp. 20131040. DOI: 10.1098/rsbl.2013.1040.

26. Lahnsteiner, F., Berger, B., Horvath, A., Urbanyi, B. Studies on the semen biology and sperm cryopreservation in the sterlet, Acipenser ruthenus L. Aquaculture Research, 2004, vol. 35, no. 6, pp. 519–528. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2004.01034.x.

27. Sadeghi, A., Imanpoor, M. R., Shahriari, R., Khalili, M., Abedi, M. Cryopreservation of stellate (Acipenser stellatus) sperm: Effect of different concentrations of DMSO and dilution rates on sperm mobility and motility duration after long-term storage. Global Veterinaria, 2013, vol. 10, pp. 26–30. DOI: 10.5829/idosi.gv.2013.10.1.7195.

28. Shaliutina-Kolešová, A., Cosson, J., Lebeda, I., Gazo, I., Shaliutina, O., Dzyuba, B., Linhart, O. The influence of cryoprotectants on sturgeon (Acipenser ruthenus) sperm quality, DNA integrity, antioxidant responses, and resistance to oxidative stress. Animal Reproduction Science, 2015, vol. 159, pp. 66–76. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2015.05.014.

29. STATISTICA (data analysis software system), version 10. StatSoft Inc., 2011. Available at: http://statsoft.ru.

30. Thorogood, J., Blackshaw, A. Factors affecting the activation, motility and cryopreservation of the spermatozoa of the yellowfin bream, Acanthopagrus australis (Günther). Aquaculture Research, 1992, vol. 23, no. 3, pp. 337–344. DOI: 10.1111/j.1365-2109.1992. tb00776.x.

31. Toth, G.P., Ciereszko, A., Christ, S.A., Dabrowski, K. Objective analysis of sperm motility in the lake sturgeon, Acipenser fulvescens: activation and inhibition conditions. Aquaculture, 1997, vol. 154, no. 3, pp. 337–348. DOI: 10.1016/S0044-8486(97)00066-5.

Зрелые сперматозоиды осетровых рыб в семенниках и семявыносящих протоках неподвижны, пока они контактируют с тканевыми флюидами или семенной плазмой [14; 15]. Во время нереста сперматозоиды при контакте с пресной водой активируются и становятся подвижными. Для большинства осетровых рыб время активной подвижности составляет не более 2–5 минут, а общее время подвижности — не более 10–15 минут [15]. Вместе с концентрацией подвижность является одной из основных характеристик качества спермы и ее пригодности для искусственного оплодотворения [11]. Несмотря на это, связь между продолжительностью подвижности и фертильностью спермы не столь очевидна, поскольку вся полноценная икра, способная к оплодотворению, оплодотворяется в течение первых 30–60 секунд [11]. Н.В. Барулин и соавт. [1], применяя CASA (computer assisted sperm analyses) для изучения подвижности и других характеристик спермы ленского осетра, доказали нецелесообразность длительности искусственного осеменения более 90 секунд.

Подвижность спермы осетровых рыб зависит от многих факторов [16]. Но в случае применения технологий кратковременного или длительного хранения спермы, таких как гипотермическое хранение или криоконсервация, сперма дополнительно подвергается воздействию неспецифических факторов (криопротекторы, антибиотики и т.п.) или факторов среды, выходящих за пределы физиологических диапазонов (низкие температуры, pH, перепады осмотического давления и т.п.), влияющих не только на жизнеспособность сперматозоидов, но и на характер подвижности [26–28].

Несмотря на большое количество разработок, криоконсервация спермы осетровых рыб не используется в качестве рутинной технологии в осетроводстве [7]. Гораздо чаще для транспортировки или отложенного оплодотворения икры используется краткосрочное гипотермическое хранение без замораживания, при околонулевых температурах. Рекомендуемым ФАО [11] способом гипотермического хранения спермы осетровых рыб является метод Бийяра-ДиЛауро: в пластиковых (полиэтиленовых) пакетах или контейнерах, заполненных атмосферным воздухом или чистым кислородом [20; 23; 24].

Для Цитирования:
Дмитрий Александрович Исаев, Александр Павлович Глебов, Марина Юрьевна Мартынова, Елена Ивановна Шишанова, Гипотермическое хранение в бессолевом консерванте влияет на продолжительность подвижности спермы стерляди. Рыбоводство и рыбное хозяйство. 2021;5.
Полная версия статьи доступна подписчикам журнала
Язык статьи:
Действия с выбранными: